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.1998年4月28日;95(9):4997-5002.
doi:10.1073/pnas.95.9.4997。

Bax直接诱导线粒体释放细胞色素c

附属公司

Bax直接诱导线粒体释放细胞色素c

J Mürgensmeier先生等。 美国国家科学院程序. .

摘要

Bax是位于线粒体外膜的Bcl-2蛋白家族的促凋亡成员。Bax是通过其作为通道蛋白的假定功能直接促进细胞死亡,还是通过抑制细胞死亡蛋白酶(caspases)的细胞调节器间接促进细胞死亡。我们在这里表明,向分离的线粒体中添加亚摩尔数量的重组Bax蛋白可以诱导细胞色素c(Cyt c)释放,而代表Bax BH3结构域的肽是不活跃的。当放入纯化的细胞液中时,线粒体和Bax均未单独诱导蛋白水解过程和半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶的激活。相反,Bax和线粒体的结合触发了线粒体Cyt c的释放,并诱导了胞浆中caspase的激活。Bax处理线粒体的上清液也诱导caspase的处理和激活。重组Bcl-XL蛋白可消除Bax诱导的线粒体Cyt c释放,并阻止caspase激活。相反,广谱caspase抑制剂苄氧羰基-缬氨酸-丙氨酸-天冬氨酸-(0-甲基)-氟甲基酮(zVAD-fmk)和caspase抑制蛋白X-IAP对Bax诱导的体外线粒体Cyt c释放没有影响,但阻止了胞质提取物中caspase的后续激活。与线粒体通透性转变的经典诱导剂Ca2+不同,Bax在体外不会诱导线粒体肿胀。由于通透性转变引起的细胞器肿胀导致外膜破裂,因此,研究结果将这两个事件分离开来,这意味着Bax使用另一种机制触发线粒体释放Cyt c。

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数字

图1
图1
Bax诱导Cytc(c)从分离的线粒体中释放A类,线粒体在30°C下与1μM Bax、150μM Ca孵育1小时2+两种或两种试剂都没有。然后通过离心法造粒线粒体,并使用抗Cyt抗体对所得上清液进行SDS/PAGE免疫印迹分析c(c)抗体。在每次实验中,通过使用完整内膜蛋白F的抗体对颗粒和上清液组分进行免疫印迹分析,验证线粒体的完整丸化和输入等量的线粒体1-β-ATPase(车道7和8,未显示数据)。作为对照,还用0.2%(vol/vol)的Triton X-100处理线粒体,其释放所有Cytc(c)来自这些细胞器。数据代表了使用3种Bax蛋白独立制剂进行的12次以上实验。B类用5μg pcDNA3或pcDNA3-Bax转染293T细胞。1天后收集细胞,处理以获得细胞溶质和细胞器(颗粒)亚组分,并使用Cyt特异性抗体通过SDS/PAGE分析等分(25μg总蛋白)c(c)β-肌动蛋白(细胞溶质蛋白)和F1-β-ATPase(线粒体基质蛋白)。否F1-在细胞溶质部分检测到β-ATPase(数据未显示)。C类,线粒体同样与不同浓度的重组Bax蛋白和Cyt孵育c(c)通过免疫印迹法(代表两个实验)测量释放。D类,线粒体与1μM Bax蛋白、50μM BH3肽或两者均不与这些试剂孵育。塞浦路斯c(c)如上所述,1小时后测量释放(n个= 2).
图2
图2
Bax诱导线粒体因子的释放,触发细胞溶质半胱天冬酶的处理和激活。A类将线粒体的上清液与1μM Bax或稀释液对照(C)孵育1小时后添加到纯化的胞浆中。或者,将1μM Bax或稀释剂对照直接添加到细胞液中。在30°C培养0.5小时后,通过DEVD-AFC水解测定半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶活性。数据表示每次释放的AFC的微摩尔量,其中样品的总细胞溶质蛋白含量进行了标准化。B类,将线粒体添加到含有或不含1μM Bax的细胞溶质提取物中。在30°C下孵育1小时后,通过离心将线粒体制成颗粒,并在产生的上清液中测量caspase活性。C类,通过使用抗Cyt对细胞溶质级分的等分试样进行SDS/PAGE免疫印迹分析c(c)抗体。作为附加控制(左侧),胞浆用10μM Cyt处理c(c),如所述(25)。闭合箭头和开放箭头分别表示caspase-3的未加工酶原和与活性酶相关的加工形式。
图3
图3
Bax不诱导线粒体通透性转变。将线粒体放入试管中,在520 nm处使用双光束分光光度计测量吸光度。在某些情况下,样品用10μM CsA进行预处理。1μM Bax或150μM Ca2+添加(箭头所示),并在随后的75分钟内监测光密度(代表五个实验的数据)。
图4
图4
Bcl-X的影响L(左)、CsA和zVAD-fmk对Bax诱导的Cyt释放的影响c(c)用1μM Bax或稀释剂对照(C)处理线粒体(有时重复),无论是否使用其他试剂,以及Cytc(c)1小时后通过免疫印迹法测定上清液中的释放。A类,12μM Bcl-XL(左)如图所示,与Bax同时添加到一些样品中。B类在Bax前5分钟添加10μM CsA或10μM zVAD-fmk。C类除上清液(25μg)外,还分析了线粒体颗粒。用抗Bax抗体通过SDS/PAGE免疫印迹分析测定Bax与线粒体的结合。
图5
图5
Bcl-X公司L(左)抑制Bax和线粒体诱导的caspase-3的处理。将线粒体添加到细胞溶质提取物中,然后添加1μM Bax或稀释剂对照(C),添加或不添加不同浓度的Bcl-XL(左)蛋白质或zVAD-fmk。通过离心法去除线粒体后,通过SDS/PAGE免疫印迹法分析小份细胞液,并用caspase-3抗体进行特异性分析(上部)或Cytc(c)(下部). 图中显示了caspase-3的未加工原型(填充箭头)和caspase-2的加工≈17-kDa大亚基(开放箭头)的位置。稍慢的迁移带代表半胱天冬酶-3大亚基的部分加工形式(25,51)。
图6
图6
Bcl-X的影响L(左)和CsA对Bax+线粒体诱导的半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶激活的影响。细胞溶胶在30°C下用线粒体、1μM Bax、稀释剂对照(C)或在有或无(A类)3–12μM Bcl-XL(左)或(B类)10μM CsA。通过DEVD-AFC水解测定半胱氨酸天冬氨酸酶活性。

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