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.1997年4月15日;94(8):3668-72.
doi:10.1073/pnas.94.8.3668。

细胞凋亡过程中Bax和Bcl-X(L)的细胞膜再分布

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细胞凋亡过程中Bax和Bcl-X(L)的细胞膜再分布

Y T Hsu先生等。 美国国家科学院程序. .

摘要

Bcl-2、Bcl-X(L)和Bax是Bcl-2家族的成员,在细胞凋亡的调节中起着关键作用。这些蛋白被认为是膜结合的,它们能够同时进行同二聚和异二聚来调节细胞凋亡。在此,我们报告,在小鼠胸腺细胞中,Bcl-2仅与膜结合,而Bax主要存在于胞浆中,而Bcl-X(L)以可溶性和膜结合形式存在。地塞米松或γ射线诱导小鼠胸腺细胞凋亡可将Bax和Bcl-X(L)的亚细胞位置从可溶性形式转移到膜结合形式。在星形孢菌素诱导HL-60白血病细胞凋亡后,观察到Bax从胞浆到细胞膜的定位发生了类似的变化。用放线菌酮抑制凋亡可抑制胸腺细胞中Bax和Bcl-X(L)在地塞米松处理诱导下从胞浆向细胞膜的移动。这些运动可能是该家族成员调控细胞凋亡途径中的一个重要步骤。

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数字

图1
图1
Bax和Bcl-X的差异定位L(左)以及地塞米松诱导细胞凋亡时与细胞膜的关系。地塞米松可诱导小鼠胸腺细胞凋亡。用地塞米松低渗溶解未经处理的细胞(a–c道)和孵育2 h(d–f道)和4 h(g–i道)的细胞,用Dounce均质器均质,并通过差速离心分离成可溶性细胞(a、d和g道)、高速膜球(b、e和h道)和核组分(c、f和i道)。蛋白质样品用SDS/PAGE在考马斯蓝(CB)染色的凝胶上分析,或用抗mBax 5B7、抗mBcl-2 10C4和抗uBcl-X的Western印迹法分析L(左)2H12单克隆抗体。
图2
图2
Bax和Bcl-X协会L(左)膜对γ射线诱导的细胞凋亡作出反应。γ射线照射诱导小鼠胸腺细胞凋亡。未经处理的细胞(a–c道)和照射后2 h(d–f道)和4 h(g–i道)收集的细胞被低渗溶解,在Dounce均质器中均质,并通过差速离心分离成可溶性(a、d和g道)、高速膜颗粒(b、e和h道)和核组分(c、f和i道)。通过用考马斯蓝(CB)染色的凝胶上的SDS/PAGE或通过用抗mBax 5B7、抗mBcl-2 10C4和抗uBcl-X的蛋白质印迹来分析蛋白质样品L(左)2H12单克隆抗体。
图3
图3
环己酰亚胺抑制地塞米松诱导的细胞凋亡阻断Bax和Bcl-X的迁移L(左)进入膜中。在不存在或存在环己酰亚胺、地塞米松或环己酰亚胺和地塞米松的组合的情况下,将小鼠胸腺细胞在培养基中孵育2小时。收集细胞,低渗裂解,在Dounce匀浆器中匀浆,并分级为可溶性(泳道a、d、g和j),通过差速离心法获得高速膜颗粒(通道b、e、h和k)和核组分(通道c、f、i和l)。样品在考马斯蓝(CB)染色的凝胶上通过SDS/PAGE进行分析,或通过抗mBax 5B7、抗mBcl-2 10C4和抗uBcl-X的Western印迹进行分析L(左)2H12单克隆抗体。
图4
图4
Staurosporine处理HL-60细胞促进Bax的膜结合。HL-60细胞在不存在(a–c道)或存在1μM staurosporine的情况下处理2 h(d–f道)和4 h(g–i道)。收集细胞,低渗裂解,用Dounce匀浆器匀浆,并通过差速离心分离为可溶性(泳道a、d和g)、高速膜沉淀(泳道b、e和h)和核级分(泳道c、f和i)。样品用抗hBax 2D2和抗hBcl-2124单克隆抗体进行Western blotting分析。
图5
图5
Bax和Bcl-X膜插入示意图L(左)在小鼠胸腺细胞中,Bax是胞质的,Bcl-2主要是膜结合的,而Bcl-XL(左)以可溶性和膜结合形式存在(). 在地塞米松或γ射线照射诱导细胞凋亡后,几乎所有的细胞溶质Bcl-XL(左)大量Bax变成膜结合。尚不清楚Bax在其膜相关状态下是否发生异二聚或同二聚(ii(ii)). 或者,Bax、Bcl-2和Bcl-X可能L(左)在膜结合状态下,可能会竞争膜中未知蛋白质的结合,以促进细胞死亡或存活().

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