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.2020年8月7日;369(6504):718-724.
doi:10.1126/science.abc6027。 Epub 2020年7月13日。

严重新型冠状病毒肺炎患者I型干扰素活性受损和炎症反应

附属公司

严重新型冠状病毒肺炎患者I型干扰素活性受损和炎症反应

杰罗姆·哈贾杰等。 科学类. .

摘要

2019年冠状病毒病(COVID-19)以不同的疾病进展模式为特征,表明宿主免疫反应不同。我们对50名不同疾病严重程度的新型冠状病毒肺炎患者进行了综合免疫分析。在重症和危重患者中观察到一种独特的表型,包括高度受损的干扰素(IFN)I型反应(特征是无干扰素β和低干扰素α生成和活性),这与持续的血液病毒载量和加剧的炎症反应有关。炎症部分由转录因子核因子-κB驱动,其特征是肿瘤坏死因子-α和白细胞介素-6的生成和信号转导增加。这些数据表明,血液中I型干扰素缺乏可能是严重新型冠状病毒肺炎的标志,并为联合治疗方法提供了理论依据。

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数字

图1
图1。SARS-CoV-2感染患者外周血白细胞表型分析。
(A类)根据疾病严重程度,在首次症状出现后第8天至第12天,对新冠肺炎患者全血中的淋巴细胞计数进行分析。(B类)排除粒细胞后的血白细胞viSNE图,用30个标记物染色并用质谱仪测量。根据细胞表达的标记的组合,细胞被自动分割成空间上不同的子集。LTgd、γδT细胞;MAIT,黏液相关不变T细胞;LB、B淋巴细胞。(C类)viSNE图根据疾病严重程度的细胞密度进行着色(分为健康对照组、轻度至中度、重度和危重)。红色表示细胞密度最高。(D类)CD3绝对数+T细胞,CD8+T细胞和CD3CD56型+根据疾病严重程度,新冠肺炎患者外周血中的NK细胞。(E类F类)新冠肺炎患者淋巴细胞亚群比例(频率)。(E) CD3比例+淋巴细胞中的T细胞,CD8+CD3中的T细胞+T细胞和淋巴细胞中的NK细胞。(F) CD19的比例+淋巴细胞中的B细胞和CD19中的CD38hi CD27hi血浆消融剂+B细胞。(G公司)基于活化(CD38,HLA-DR)和衰竭(PD-1,Tim-3)标记物的表达分析特定T细胞亚群和NK细胞的功能状态。在(D)至(G)中,数据表示中值。每个点代表一名患者。P(P)数值采用Kruskal-Wallis检验确定,然后采用Dunn的后验进行多组比较,并与报告的中值进行比较*P(P)< 0.05; **P(P)< 0.01; ***P(P)< 0.001.
图2
图2。SARS-CoV-2感染的免疫转录特征。
使用Nanostring nCounter Human Immunology_v2试剂盒,通过直接探针杂交法测定患者全血中提取的RNA和574个基因的RNA计数。(A类)所有基因的热图表示,按层次聚类排序。健康对照(n个=13名患者),轻度至中度(n个=11名患者),严重(n个=10名患者),危重(n个=11名患者)。上调基因显示为红色,下调基因显示为蓝色。(B类)描绘log10的火山图(P(P)值)和log2(折叠变化),以及z(z)每组比较的值(补充材料、材料和方法)。基因表达比较可以鉴定不同严重程度之间显著差异表达的基因(健康对照组与轻度至中度,216个基因;轻度至中度与重度,43个基因;重度与危重症,0个基因)。(C类)(左)转录数据的PCA。(中间和右侧)动力学图,显示每个基因和严重程度等级的平均标准化值,其中每条灰色线对应一个基因。每个严重程度等级的基因中值以黑色绘制。PC1和PC2富集途径的基因集富集分析在相应的动力学图中描述。
图3
图3。严重SARS-CoV-2感染患者的I型干扰素应答受损。
(A类)使用反转录和无PCR-free Nanostring计数器技术显示轻度至中度患者I型干扰素相关基因表达的热图(n个=11),严重(n个=10),且至关重要(n个=11)SARS-CoV2感染和健康控制(n个= 13). 上调基因显示为红色,下调基因显示为蓝色。(B类)基于六个基因表达的ISG评分(IFI44L,国际单项体育联合会27,RSAD2号机组,SIGLEC1信号,国际单项体育联合会1,以及IS15标准)用定量RT-PCR测定轻度至中度全血细胞(n个=14),严重(n个=15),且至关重要(n个=17)患者和健康对照(n个= 18). (C类)使用Simoa和(D类)根据临床严重程度,血浆中的干扰素活性。(E类)轻度到中度(n个=14)和重症患者(n个=16)根据临床结果分为两组,即严重恶化需要机械通气(表示严重状态)。显示(左)ISG评分和(右)IFN-α2血浆浓度。(F类)根据严重程度组显示时间依赖性IFN-α2浓度。(G公司)浆细胞样树突状细胞(pDC)的定量,以PBMC的百分比和细胞/毫升为单位,根据严重程度分组。(H(H))IFN-α刺激全血细胞前后ISG评分(10UI/ml持续3小时)。()用RT-PCR估计鼻拭子中的病毒载量,用周期阈值(Ct)表示,用数字PCR评估血液病毒载量。在(B)和(E)中,ISG评分结果表示与未刺激对照组的平均值相比表达增加了一倍,并将其标准化为GAPDH公司(甘油醛磷酸脱氢酶)。在(B)至(I)中,数据表示中位数。每个点代表一名患者。P(P)采用Kruskal-Wallis检验确定数值,然后采用Dunn的多组比较后验和Mann-Whitney检验确定两组比较的中值*P(P)< 0.05; **P(P)< 0.01; ***P(P)< 0.001.
图4
图4。重症SARS-CoV-2感染患者的免疫分析。
(A类)热图显示严重和危重患者中细胞因子和趋化因子的表达有显著差异,按层次聚类排序。包括健康对照组(n个=13)和轻度至中度(n个=11),严重(n个=10),且至关重要(n个=11)名患者。上调基因显示为红色,下调基因显示为蓝色。(B类)IL-6(C类)肿瘤坏死因子-α(D类)IL-1β,和(E类)使用Simoa技术或临床级ELISA检测(补充材料、材料和方法)定量患者血浆中的IL-10蛋白。每组包括n个=10至18名患者。虚线表示检测限(LOD)。(F类)动力学图显示每个基因的平均标准化值和严重程度等级。每条灰色线对应一个属于NF-κB通路的基因。每个严重程度等级的基因中值以黑色绘制。(G公司)RIPK-3的血浆定量。包括每个组n个=10名患者。(H(H))的绝对RNA计数(左)CXCR2型、(中)使用Luminex技术测量的CXCL2蛋白血浆浓度,以及(右)血液中性粒细胞计数(取决于严重程度组)。虚线表示正常上限。每组包括n个=10至13名患者。()的绝对RNA计数(左)中央控制室2; (左中)Luminex技术测定CCL2蛋白血浆浓度;和(右中)血液单核细胞计数取决于严重程度组。虚线表示正常范围。(右)非经典单核细胞百分比,取决于严重程度。每组显示n个=10至18名患者。RNA数据从纳米线计数器分析中提取(补充材料、材料和方法)。在(B)至(I)中,数据表示中值。每个点代表一个病人。P(P)数值采用Kruskal-Wallis检验确定,然后采用Dunn的后验进行多组比较,并与报告的中值进行比较*P(P)< 0.05; **P(P)< 0.01; ***P(P)< 0.001.

中的注释

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