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.2020年2月18日:13:1507-1518。
doi:10.2147/OTT。S231249。 eCollection 2020。

HNF1A-AS1通过调节miR-124/MYO6调节结肠癌细胞的迁移、侵袭和糖酵解

附属公司

HNF1A-AS1通过调节miR-124/MYO6调节结肠癌细胞的迁移、侵袭和糖酵解

熊国等。 Onco目标Ther. .

摘要

背景:越来越多的证据表明,lncRNAs在结直肠癌(CRC)的细胞进展中发挥着多重作用。长非编码RNA(lncRNA)肝细胞核因子1同源异型盒A(HNF1A)-反义RNA 1(AS1)已被确定影响各种癌症的细胞生长和疾病诊断,包括CRC。然而,HNF1A-AS1在细胞进展和糖酵解中的潜在调节机制尚未在CRC中得到充分探索。

材料和方法:采用逆转录定量聚合酶链反应(RT-qPCR)检测HNF1A-AS1、microRNA-124(miR-124)和VI类肌球蛋白(MYO6)的表达。葡萄糖消耗、乳酸生成和己糖激酶2(HK2)蛋白水平的分析用于评估细胞内的糖酵解。Western blot检测HK2和MYO6蛋白水平。细胞迁移和侵袭通过跨阱分析进行评估。HNF1A-AS1、miR-124和MYO6之间的关系通过荧光素酶报告子和RNA免疫沉淀(RIP)测定来确定。

结果:在本研究中,我们发现HNF1A-AS1在CRC组织和细胞系中上调。功能实验确定HNF1A-AS1的减少或miR-124的促进抑制了CRC细胞的细胞迁移和侵袭以及糖酵解。此外,荧光素酶报告基因检测表明,miR-124是HNF1A-AS1的靶基因,MYO6是CRC细胞中miR-124mRNA的靶基因。此外,反向实验表明,抗miR-124可削弱si-HNF1A-AS1对结直肠癌细胞的作用,上调MYO6可缓解miR-124-高表达对CRC细胞的影响。HNF1A-AS1通过靶向miR-124调节CRC细胞中MYO6的表达。

结论:在本研究中,我们首次发现HNF1A-AS1通过调节CRC细胞中的miR-124/MYO6来调节细胞迁移、侵袭和糖酵解。

关键词:HNF1A-AS1;MYO6;大肠癌;miR-124。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者报告称,这项工作没有任何利益冲突。

数字

图1
图1
HNF1A-AS1在CRC组织和细胞系中上调。(A、 B类)HNF1A-AS1在结直肠癌组织和正常组织中的表达(A类)RT-qPCR检测CRC细胞(SW620、HT-29、HCT116和SW480)和永生化结肠细胞(NCM460)**P(P)< 0.01. ***P(P)< 0.001.
图2
图2
HNF1A-AS1基因敲除抑制CRC细胞的细胞迁移和侵袭以及糖酵解。用si-NC或si-HNF1A-AS1转染SW620和HCT116细胞。(A类)通过RT-qPCR监测转染SW620和HCT116细胞中HNF1A-AS1的表达。(B类)利用葡萄糖测定试剂盒测量转染细胞中的葡萄糖消耗(C类)转染后用乳酸检测试剂盒检测SW620和HCT116细胞中的乳酸生成。(D类)Western blot检测转染SW620和HCT116细胞中HK2蛋白水平。(E类F类)细胞迁移(E类)和细胞侵袭(F类)在SW620和HCT116细胞中进行跨孔分析**P(P)< 0.01. ***P(P)< 0.001.
图3
图3
miR-124是HNF1A-AS1的靶标。(A类)显示了HNF1A-AS1的3ʹUTR中预测的野生型和突变型miR-124结合位点。(B类C类)在SW620中测量荧光素酶活性(B类)和HCT116(C类)通过荧光素酶报告分析,联合转染HNF1A-AS1-WT或HNF1A-AS1-MUT和miR-124或miR-NC的细胞。(D类E类)进行RIP测定以确保SW620中HNF1A-AS1和miR-214之间的关系(D类)和HCT116(E类)单元格。(F类G公司)在SW620中检测到miR-124的表达(F类)和HCT116(G公司)转染pcDNA、HNF1A-AS1、si-NC或si-HNF1A-ASC1的细胞***P(P)< 0.001.
图4
图4
抗miR-124可削弱si-HNF1A-AS1对CRC细胞迁移、侵袭和糖酵解的抑制作用。(A类)采用RT-qPCR检测miR-124在大肠癌细胞组织和正常组织中的表达。(B类)通过RT-qPCR分析miR-124在CRC细胞系(SW620、HT-29、HCT116和SW480)和永生化结肠细胞(NCM460)中的表达。(C类——M(M))用si-NC、si-HNF1A-AS1、si-HNF1A-AS1+miR-NC或si-HNF1A-AS1+miR-124转染SW620和HCT116细胞。(C类D类)在SW620中检测到miR-124的表达(C类)和HCT116(D类)细胞使用RT-qPCR。(D类E类)在SW620中测量葡萄糖消耗(E类)和HCT116(F类)转染后的细胞。(G公司H(H))在SW620中测试了乳酸产量(G公司)和HCT116(H(H))转染后的细胞。()在转染的SW620和HCT116细胞中评估HK2的表达。(J型K(K))在处理过的SW620中检测到细胞迁移(J型)和HCT116(K(K))单元格。(L(左)M(M))在SW620中分析细胞侵袭(L(左))和HCT116(M(M))转染后的细胞**P(P)< 0.01. ***P(P)< 0.001.
图5
图5
miR-124直接靶向MYO6。(A类)显示了MYO6的3′UTR中预测的miR-124结合位点的野生型和突变型。(B类C类)在SW620中测量荧光素酶活性(B类)和HCT116(C类)通过荧光素酶报告基因测定用MYO6-WT Luc或MYO6-MUT和miR-124或miR-NC共转染的细胞。(D类E类)进行RIP分析以确定SW620中MYO6和miR-214之间的关系(D类)和HCT116(E类)单元格。(F类G公司)SW620中MYO6的蛋白表达(F类)和HCT116(G公司)用蛋白质印迹分析检测用miR-NC、miR-124、抗-miR-NC或抗-miR-124转染的细胞***P(P)< 0.001.
图6
图6
上调的MYO6挽救了miR-124过度表达对CRC细胞迁移、侵袭和糖酵解的抑制作用。(A类)采用RT-qPCR方法分析MYO6在大肠癌组织和正常组织中的表达。(B类)采用RT-qPCR分析MYO6在CRC细胞(SW620、HT-29、HCT116和SW480)和永生化结肠细胞(NCM460)中的表达。(C类——M(M))用miR-NC、miR-124、miR-24+pcDNA或miR-124+MYO6转染SW620和HCT116细胞。(C类D类)转染SW620的MYO6蛋白表达(C类)和HCT116(D类)用蛋白质印迹法检测细胞。(E类F类)在SW620中测量葡萄糖消耗(E类)和HCT116(F类)转染后的细胞。(G公司H(H))对处理过的SW620中的乳酸产量进行了检测(G公司)和HCT116(H(H))单元格。()通过Western blot分析转染SW620和HCT116细胞中HK2的表达。(J型——M(M))转染SW620和HCT116细胞后,通过跨阱检测细胞迁移和侵袭*P(P)< 0.05. **P(P)< 0.01. ***P(P)< 0.001.
图7
图7
HNF1A-AS1通过miR-124在CRC细胞中介导MYO6表达。(A类B类)在SW620中进行荧光素酶报告试验(A类)和HCT116(B类)导入miR-124或miR-124+HNF1A-AS1后,转染MYO6-WT-Luc的细胞。(C类D类)在SW620中检测到MYO6的蛋白表达(C类)和HCT116(D类)利用Western blot分析将pcDNA、HNF1A-AS1、HNF1A AS1+miR-NC和HNF1A AS1+miR-124转染细胞**P(P)< 0.01. ***P(P)< 0.001.

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引用人

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