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.2017年10月30日:8:841。
doi:10.3389/fphys.2017.00841。 2017年电子收集。

SR-BI介导的脑微血管内皮细胞中高密度脂蛋白的转录作用与Caveolin、氯氰菊酯和PDZK1无关

附属公司

SR-BI介导的脑微血管内皮细胞中HDL的细胞吞噬与Caveolin、Clathrin和PDZK1无关

冯凯伦等人。 前生理学. .

摘要

供应大脑的血管内皮表现出极低的细胞旁和跨细胞通透性,是血脑屏障的主要组成部分。高密度脂蛋白(HDL)通过细胞转染跨越血脑屏障,但技术限制使其难以阐明其调控。采用旋转圆盘共焦和全内反射荧光显微镜相结合的方法,我们检测了人类原代脑微血管内皮细胞单层对HDL的摄取和跨细胞作用。使用这些方法,我们报告HDL内化需要动力蛋白而不是氯氰菊酯重链,并且其内化和转染是饱和的。内源性高密度脂蛋白部分与清道夫受体BI(SR-BI)共定位,SR-BI的敲除显著减弱了高密度脂素的内源性。然而,我们观察到,在其他组织中对HDL-SR-BI信号传导至关重要的衔接蛋白PDZK1并不需要在这些细胞中摄取HDL。此外,虽然这些细胞表达小窝蛋白,但该组织中小窝蛋白的丰度可以忽略不计,我们发现SR-BI和小窝蛋白不会共分。此外,小窝蛋白-1的直接沉默对HDL的摄取没有影响。最后,抑制内皮型一氧化氮合酶增加HDL内化,而增加一氧化氮水平没有影响。总之,这些数据表明,脑微血管内皮细胞中SR BI介导的转运与其他细胞类型中该受体的摄取和信号通路不同。

关键词:血脑屏障;细胞内吞;内皮细胞;内皮型一氧化氮合酶;高密度脂蛋白转染;SR-BI;小窝蛋白;氯菊酯。

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数字

图1
图1
建立在体外原代人脑微血管内皮模型。(A)HCCMEC紧密连接蛋白ZO-1(左)和粘附连接蛋白VE-cadherin(右)染色。比例尺=45μm。(B)荧光-HDL脉冲相的定量。n个= 3; 每个n的每个时间点大约观察到15个细胞。***第页<0.0001(学生)-测试0与30分钟。(C)允许HDL在4°C下结合HCCMCs 10分钟,然后冲洗以去除未结合的HDL。细胞中心附近的代表性yz轴图像(比例尺=4μm)。顶端膜用凝集素(绿色)标记,细胞核用DAPI(蓝色)染色。在时间零点,在顶端细胞表面可以看到含有HDL的小泡(白色箭头);37°C下5分钟后,内化明显。30分钟后,大部分HDL内化并出现在基底膜附近(虚线)。(D)显示了HCCMEC根尖膜的典型xy图像(比例尺=6μm)。
图2
图2
HDL内化需要动态蛋白,但不需要网格蛋白或小窝蛋白-1。(A)Alexa 568标记HDL的内化被40倍的未标记HDL和400 ug重组ApoA1蛋白显著抑制。量化可以在中找到(B);n个=6,对于未标记的HDL和n个=3对于未标记的重组ApoA1,每个复制条件下观察到约40个细胞。(C)用动力学抑制剂(Dyngo4a)和胆固醇抑制剂(制霉菌素)预处理30分钟后,HDL内化显著降低。量化可以在中找到(D);n个= 6; 每个n处理中观察到大约32个细胞。(E)siRNA对高密度脂蛋白内化无影响。n个= 4; 观察到约25个细胞的非靶向控制(NTC)siRNA和网格蛋白siRNA,每个n。比例尺=15μm。(F)通过western blot证实,与对照siRNA相比,网格蛋白重链蛋白表达的变化约为0.27±0.065倍。(G)siRNA对Cav-1的消耗对HDL内化也没有影响。n个= 4; 观察到约40个细胞的非靶向控制(NTC)siRNA和网格蛋白siRNA,每个n。比例尺=15μm。(H)通过蛋白质印迹证实了Cav-1缺失,其显示与对照siRNA相比,Cav-1蛋白表达的变化约为0.29±0.027倍。*第页< 0.05;**第页< 0.005;***第页< 0.0001.
图3
图3
用于量化HDL细胞转化的单细胞分析。(A)TIRF分析示意图。将荧光标记的HDL添加到HCCMEC融合单层的顶部表面,并在其进入细胞底部的光照场时通过TIRF显微镜进行检测。(B)TIRF代表视频中的静态图像。白色箭头表示不融合的小泡,而红色箭头表示含有HDL的小泡在胞吐过程中消失。比例尺=0.60μm。(C)使用Dyngo4a预处理30分钟或在允许HDL与心尖膜结合后添加N-乙基马来酰亚胺(NEM)均减少了HDL细胞转移事件的数量。n个=6(对于Dyngo4a和n个对于NEM,=3;每个n细胞约有8个。(D)通过TIRF测量,40倍的过量未标记HDL在很大程度上消除了HDL转归。n个= 4; 每个n细胞约有8个。(E)高密度脂蛋白(HDL)转染是可饱和的。n个= 4; 每个n细胞约有8个。**第页< 0.005,***第页<0.0001与对照组。
图4
图4
清除剂受体BI与HDL共存,但不存在于耐洗涤剂膜中(A)在37°C下添加Alexa 568-HDL(白色箭头)5分钟后,对内源性SR-BI(绿色)进行免疫染色。合并图像中的白色箭头表示共定位区域;HDL与SR-BI的曼德斯系数=0.247。n个= 3; 每个n观察到大约24个细胞。与偶然观察到的共定位(即HDL ROI旋转180°)相比。(B)标记细胞表面SR-BI(绿色),并在37°C下孵育细胞30分钟。图像显示受体随时间内化(白色箭头);顶端膜用凝集素(红色)染色。(C)HCCMEC裂解物的密度梯度分级显示,内源性SR-BI随VE-cadherin亚组分(30–52.5%optiprep)迁移,而不从富含小窝蛋白-1的组分(20%optiprep)中迁移。所示为代表性斑点;n个=4个实验。
图5
图5
高密度脂蛋白内化需要SR-BI。(A)添加与SR-BI的细胞外结构域结合的未标记的抗SR-BI纳米体部分阻断HDL的内化。n个= 3; 每种情况下观察到约40个细胞。(B)将GFP和siRNA与SR-BI或非靶向对照(Ctrl)联合转染HCCMEC(摩尔比1:100),以测试SR-BI对HDL内化的影响。(C)转染48小时后,SR-BI siRNA转染细胞显示HDL内化减少。n个= 5; 每种情况下观察到大约25个转染细胞。比例尺=15μm。*第页< 0.01.(D)免疫荧光(绿色为SR-BI,红色为mCherry)验证了联合转染细胞中SR-BI的有效敲除。
图6
图6
在HCCMEC中HDL内化不需要PDZK1。(A)Western blot显示内源性PDZK1在HCCMEC中的表达与阳性对照相比,HCCMEC过度表达PDZK1。(B)单独转染GFP或GFP-PDZK1后48小时,DiI-HDL内化10分钟,这表明过度表达的GFP-PDZK1对DiI-HDL内化没有显著影响。量化可以在中找到(C);n个= 5; 每种情况下观察到大约25个转染细胞。比例尺=15μm。
图7
图7
抑制一氧化氮合酶并不影响HCCMEC的HDL内化。(A)NO供体非酸精胺显著增加了DAF荧光,证实了HCCMEC中的这种NO-传感器。n个= 5; 每个治疗组16个随机字段n个每幅图像约有100个细胞。(B)非酸精胺不影响HDL内化。n个= 5; 每个实验每个条件下至少检查40个细胞。(C)通过DAF-FM(HCCMEC,n个= 5; HAEC、,n个= 3.**第页< 0.005,*第页< 0.05),(D)L-NNA显著增加HCCMEC中HDL内化约2.5倍,但HAEC中仅增加1.4倍(E)(HCCMEC,n个= 5; HAEC、,n个= 3.*第页< 0.05). 比例尺=15μm。
图8
图8
HCCMEC高密度脂蛋白转运的示意图。

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