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.2016年11月28日;5(11):e271。
doi:10.1038/oncsis.2016.68。

FOXK1与FHL2相互作用促进结直肠癌的增殖、侵袭和转移

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FOXK1与FHL2相互作用促进结直肠癌的增殖、侵袭和转移

M Wu先生等。 肿瘤发生. .

摘要

转录因子Forkhead框k1(FOXK1)是FOX家族的成员。FOXK1的异常表达可能在肿瘤的发展中起重要作用。我们之前的研究表明,四个半LIM蛋白2(FHL2)是上皮-间充质转化(EMT)和侵袭的关键诱导剂。然而,FOXK1协同FHL2肿瘤增殖、EMT和转移的分子机制尚不明确。我们通过定量RT-PCR、western blot、免疫荧光和免疫组织化学(IHC)分析评估信使RNA(mRNA)和蛋白表达水平。利用短发夹RNA(shRNA)介导的体内外抑制作用评估结直肠癌(CRC)细胞的迁移和侵袭能力。我们发现,与匹配的正常组织相比,CRC中FOXK1的表达上调。FOXK1在CRC中与FHL2发生物理交互。此外,这两种蛋白的高表达水平与分化、淋巴结转移、AJCC分期和预后不良显著相关。此外,FOXK1在CRC细胞中的过度表达与EMT、侵袭和转移有关。然而,在FOXK1过度表达细胞中,siRNA-介导的FHL2阻遏逆转了EMT以及体外和体内的增殖和转移表型。这些数据表明,FOXK1和FHL2的共同表达通过EMT的诱导增强了细胞增殖和转移。因此,FOXK1和FHL2可能是CRC联合治疗的潜在靶点。

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数字

图1
图1
FOXK1在人CRC组织中的表达较高。()的表达式模式福克斯K1正常组织和肿瘤组织中的mRNA。福克斯K1在GENT数据库(可在http://medical-genomics.kribb.re.kr/GENT/). 方框表示中位数以及第25和75个百分位;点表示异常值。红色方框代表肿瘤组织;绿色方框代表正常组织。红色和绿色虚线分别表示所有肿瘤和正常组织的平均值。星号表示福克斯K1与正常组织相比,结肠肿瘤中的表达。福克斯K1结肠组织mRNA表达:蓝色虚线。(b条)通过qRT-PCR在10对结肠癌(肿瘤)和匹配的非癌结肠组织(正常)中表达FOXK1。所有这些实验都重复了三次,得到了相同的结果。(c(c))平均而言福克斯K1发现于肿瘤中,而非正常组织中(n个=10). ****<0.001. (d日)在八个选定的案例中福克斯K1在肿瘤组织中通过免疫组织化学证实(n个=8). 标尺,200μm ind日.
图2
图2
CRC细胞中FHL2和FOXK1蛋白之间的相互作用。()共聚焦显微镜下用Hoechst对SW480细胞中的FHL2和FOXK1进行双重染色。(b条)所示CRC细胞中FOXK1和FHL2表达的Western blotting分析。(c(c))将PCI-flag-FHL2质粒转染SW480和SW620细胞。用抗旗帜抗体进行免疫沉淀,以免疫前正常小鼠免疫球蛋白G(nm-IgG)作为对照。用抗FOXK1抗体进行Western blotting。用指示的抗体检测IP印迹,以显示全细胞裂解物的输入。免疫沉淀;Wb,western blot。(d日)SW480和SW620细胞的细胞裂解物被抗FOXK1抗体或对照抗体正常兔免疫球蛋白G(nr-IgG)免疫沉淀。用抗FHL2抗体进行Western blotting。用指示的抗体检测IP印迹以显示输入。所有这些实验都重复了两到三次,结果相似。比例尺代表20μm in.
图3
图3
FHL2和FOXK1在大肠癌中的表达呈正相关。()通过IHC分析检测正常或癌性结直肠组织标本中FHL2(a和c)和FOXK1(b和d)的表达。这些数字代表了87名癌症和非癌症患者的结肠组织。使用正常小鼠IgG作为第一抗体(a和b)的同型对照。(b条)正常和癌性CRC组织中两种蛋白的平均得分****正常组织和癌组织之间<0.001。(c(c))对FHL2和FOXK1阳性染色进行量化,并进行Spearman相关分析****<0.001. (d日)卡普兰-迈耶CRC患者总体生存分析。分别根据FHL2(a)、FOXK1(b)的表达状态以及FHL2和FOXK1(c)的联合表达状态进行生存分析。比例尺代表100μm in.
图4
图4
FOXK1和FHL2促进CRC细胞的增殖和EMT。()通过western blot分析检测FHL2在SW480细胞中的表达水平,这些细胞转染FOXK1过表达质粒,然后转染FHL2 siRNA或Scr siRNA作为阴性对照。(b条)通过转染FHL2 siRNA或Scr siRNA 48 h,对FOXK1的SW480稳定转染体进行EdU掺入试验****<0.001. (c(c))用相控显微镜分析了转染FHL2 siRNA或src siRNA的SW480细胞中稳定表达FOXK1的异常形态。(d日)在荧光显微镜下观察用罗丹明-鬼臼毒素染色48小时的SW480细胞,以确定F-肌动蛋白丝。(e(电子))载体、FOXK1 src siRNA和FOXK1-FHL2-siRNA细胞中E-cadherin(红色)和vimentin(绿色)染色的免疫荧光和显微镜显示。((f))转染48 h后,western blot检测EMT生物标志物,包括E-cadherin、vimentin、Snail、MMP2、MMP9、FOXK1和FHL2。所有实验都重复了三到四次,结果相似。比例尺代表100μm inb条,20μm英寸c(c)d日,10μm英寸e(电子).
图5
图5
FOXK1和FHL2的共表达与人CRC的转移表型相关。()在伤口愈合实验中,用活细胞显微镜对细胞进行分析。原始放大倍数,×10***<0.01, ****<0.001. (b条)载体、稳定的FOXK1转染体在48小时后转染FHL2 siRNA,细胞的侵袭能力下降****<0.001. 实验至少重复了三次。(c(c))淋巴结转移癌组织中FHL2和FOXK1表达的典型IHC图像。标尺,100μm inc(c)这些图片代表了三个具有相同结果的独立实验。
图6
图6
FOXK1与FHL2协同促进肿瘤增殖和转移体内试验。()皮下注射SW480-Vector、SW480-FOXK1和SW480-FOXK1–FHL2-shRNA细胞的裸鼠肿瘤发生评估。注射后第30天拍摄图像。(b条)各组在接种肿瘤细胞5天后测量肿瘤大小**<0.05, ****<0.001,载体vs FOXK1和FOXK1vs FOXK1–FHL2-shRNA。(c(c))FHL2敲除显著抑制FOXK1诱导的增殖(Ki-67****<0.001,载体vs FOXK1和FOXK1vs FOXK1–FHL2-shRNA),肿瘤血管密度显著降低(CD105****<0.001,通过IHC观察到载体vs FOXK1和FOXK1-FHL2-shRNA)。(d日)用指定的细胞对小鼠进行原位移植(n个每组=3)。肺或肝转移灶的典型图像显示为蓝色虚线。(e(电子))处死小鼠,用苏木精和伊红(H&E)对转移癌组织进行染色。((f))用qPCR检测E-cadherin在SW480细胞来源的肿瘤中的表达****<0.001,矢量vs FOXK1;FOXK1与FOXK2-FHL2-siRNA。比例尺表示100μm inc(c)和200μm英寸d日.

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