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.2016年3月16日6:23103。
doi:10.1038/srep23103。

TLR3-/4启动不同程度促进hMSCs中Ca(2+)信号转导和细胞因子表达及Ca(2+)依赖性增加细胞因子释放

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TLR3-/4启动不同程度促进hMSCs中Ca(2+)信号转导和细胞因子表达及Ca(2+)依赖性增加细胞因子释放

京山公园等。 科学代表. .

摘要

在人类间充质干细胞(hMSCs)中,类toll受体3(TLR3)和TLR4通过识别其配体并刺激包括细胞因子释放在内的下游过程,在组织修复过程中发挥关键作用。人骨髓间充质干细胞释放TLR3-和TLR4-介导的细胞因子的机制尚不明确。在这里,我们表明,暴露于TLR3激动剂聚肌苷-多囊藻酸(poly(I:C))或与TLR4激动剂脂多糖(LPS)孵育可增加hMSCs中TLR3、TLR4和细胞因子的mRNA表达水平。聚(I:C)暴露而非LPS孵育不仅提高了肌醇1,4,5-三磷酸受体(IP3R)的表达和IP3R介导的Ca(2+)释放,还促进了Orai和STIM的表达以及储存操作的Ca的进入hMSCs。此外,通过RNA测序分析,我们还观察到21个Ca(2+)信号基因在hMSCs TLR3启动后显著上调。poly(I:C)和LPS暴露均增强hMSCs释放细胞因子。siRNA敲除和细胞内Ca(2+)螯合后,增强的细胞因子释放消失。这些数据表明TLR3-和TLR4-priming可不同程度地增强Ca(2+)信号和细胞因子的表达,Ca(2+)依赖性增强hMSCs中细胞因子的释放。

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数字

图1
图1。TLR4-primed hMSCs的特性。
()流式细胞术分析显示hMSC的免疫表型。hMSCs表达CD44、CD29、CD90、CD105和CD73。(b条)使用干细胞标记基因进行RT-PCR确认。RT-PCR分析使用干细胞标记物OCT4、SOX2、OPN、CXCR4和COL10A1。GAPDH被用作内源性对照。(c(c))正常条件下的hMSC形态(左),放大100倍。放大400倍显示分化为脂肪细胞(中间)或成骨细胞(右侧)的潜能。脂肪细胞或成骨细胞用FABP4或骨钙素抗体(绿色)染色,细胞核用DAPI(蓝色)复染。
图2
图2。基底[Ca2+]图案和Ca2+hMSCs的释放和进入途径。
()hMSCs根据其基础[Ca分为两类2+]剖面图,其中一个显示自发[Ca2+]振荡(下面板),另一个显示出稳定的静止状态[Ca2+](上面板)。(b条)代表[Ca2+]细胞外钙存在和不存在时hMSCs对150 mM KCl和50μM卡巴胆碱(CCH)的反应2+. (c(c))代表[Ca2+]SERCA抑制剂CPA(10μM)对hMSCs的影响2+. (d日)代表[Ca2+]显示[Ca的记录道2+]在缺乏细胞外钙的情况下接触10μM CPA后的情况2+.加州2+细胞外添加4 mM Ca引起的内流2+hMSCs中膜透性SOCE拮抗剂2APB(50μM)对其消除作用。(e(电子))[加利福尼亚州2+]在缺乏细胞外钙的情况下,用咖啡因(10 mM)处理的hMSCs的轮廓2+.
图3
图3。暴露于LPS或Poly(I:C)可提高hMSCs中TLR3和细胞因子的mRNA表达。
(,b条)传统和实时RT-PCR分析和定量结果表明,TLR3和TLR4 mRNA表达水平在接触LPS或poly(I:C)后以浓度和时间依赖性的方式增加。LPS(10 ng/ml)提高TLR3 mRNA的表达。聚(I:C)浓度依赖性地增加TLR3 mRNA的表达。用两种配体孵育4小时,TLR3和TLR4 mRNA水平最好升高。β-肌动蛋白起内部控制作用。(c(c))实时RT-PCR分析显示,LPS和poly(I:C)孵育4 h后,hMSCs中细胞因子(包括IL4、IL6、IL8和IP10)的mRNA表达上调。LPS最好能促进IL6、IL8和IP10 mRNA的表达,而poly(I:C)只提高IL4的mRNA水平。显著性水平设定为*p<0.05。
图4
图4。使用LPS或Poly(I:C)治疗可增加IPR表达和IPR介导的钙2+不影响二氢吡啶敏感钙的动员2+hMSCs中的条目。
()代表[Ca2+]卡巴胆碱诱发的痕迹2+]在四个沐浴在没有Ca的细胞外溶液中的单个细胞中记录的瞬态2+(左侧面板)。平均值[Ca2+]描绘平均值的迹线[Ca2+]对照细胞(CTL;n=26细胞)和经LPS(n=43细胞)或poly(I:C)(n=61细胞)处理的细胞在缺乏细胞外钙的情况下对卡巴胆碱激发的反应2+. (b条)上图显示了[Ca的平均净增长2+]由对照组(CTL;n=9)、LPS-(n=9,poly(I:C)治疗组(n=8)获得的平均δF340/F380比值反映。下图显示了接受对照治疗(n=19)、暴露于LPS(n=18)和与poly(I:C)孵育的carbachol-responsive细胞的平均百分比。其中,n表示实验次数。(c(c))代表性RT-PCR印迹显示三种IP的mRNA表达对照细胞中的R亚型(ITPR1、ITPR2和ITPR3)和两种RyR亚类型(RYR1和RYR2)。GAPDH作为内部控制。NC表示阴性对照,即蒸馏水。实时RT-PCR定量显示三种IP的不同mRNA表达谱对照组、LPS组和poly(I:C)组中的R亚型(ITPR1、ITPR2和ITPR3)。实验进行了三次。(d日)显示IP不同强度的共焦图像对照细胞(左侧面板)和暴露于LPS(中间面板)或poly(I:C)(右侧面板)的细胞中的R3免疫荧光。(e(电子))IP的典型western印迹对照细胞和暴露于LPS或poly(I:C)(左侧面板)的细胞中的R3。显示IP规范化水平的汇总图指示条件下的R(右侧面板)。Pan-Cadherin用作负荷控制。实验进行了六次。显著性水平设定为*p<0.05或**p<0.005。
图5
图5。用Poly(I:C)而不是LPS孵育可以增强hMSCs中Orai和STIM的表达和SOCE。
()平均值[Ca2+]显示[Ca的记录道2+]CPA刺激诱发的瞬变(第一次)和细胞外Ca添加诱发的瞬变2+(第二)对照组(n=40个细胞)、LPS-(n=79个细胞)和poly(I:C)处理的细胞(n=30个细胞)浸泡在Ca中2+-游离细胞外液。(b条)图解[Ca平均净增长的汇总图2+]由对照组、LPS或聚(I:C)治疗组记录的平均δF340/F380比值反映。实验进行了16次。(c(c))显示[Ca平均净增长的汇总图2+]通过胞外应用4 mM Ca后的平均δF340/F380比率反映2+在对照中,LPS或poly(I:C)处理的具有细胞内Ca的细胞2+CPA预先清空的门店。实验进行了16次。(d日)代表性RT-PCR印迹(上图)显示了对照细胞中三种Orai亚型和两种STIM亚型的mRNA表达水平。NC表示使用蒸馏水的阴性对照。实时RT-PCR定量(下面板)显示了对照组(n=3)、LPS组(n=3)和poly(I:C)组(n=2)中三种Orai亚型(Orai1、Orai2和Orai3)和两种STIM亚型的不同mRNA表达谱。(e(电子))共聚焦图像显示对照细胞(上面板)和暴露于LPS(中面板)或poly(I:C)(下面板)的细胞中Orai1和Orai2免疫荧光的不同强度。((f))对照细胞和暴露于LPS或poly(I:C)的细胞中Orai2的代表性western blot(左面板)。汇总图显示了所示条件下Orai2的标准化水平。β-actin作为负荷对照。实验进行了四次(右侧面板)。()显示基础[Ca的汇总图2+]通过在对照细胞和暴露于LPS或poly(I:C)的细胞中应用CPA之前记录的平均F340/F380比率反映。实验进行了19次。显著性水平设定为*p<0.05或**p<0.005。
图6
图6。LPS或Poly(I:C)刺激促进Ca中细胞因子释放2+hMSCs中的依赖方式。
()ELISA分析显示,与对照细胞相比,暴露于LPS或poly(I:C)的细胞释放IL6、IL8、IP10和RANTES更为明显。实验进行了三次。(b条d日)ELISA分析证明细胞内钙螯合作用对IL6、RANTES和IFN-α释放的消融2+使用BAPTA/AM(5μM)和来自LPS或poly(I:C)处理细胞的siRNA。实验进行了三次。(e(电子))实时RT-PCR定量显示了对照组和poly(I:C)中ITPR3、Orai2和Stim1 mRNA的表达情况,包括BAPTA/AM和不含BAPTA/AM。实验进行了三次。((f))ELISA分析证明ITPR3敲除(ITPR3-siRNA)消融IL6释放。实验进行了六次。显著性水平设定为*p<0.05或**p<0.005。

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引用人

参考文献

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