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.2014年6月19日;157(7):1685-97.
doi:10.1016/j.cell.2014.04.038。

Hsp90和Hsp70伴侣周期协同作用调节糖皮质激素受体功能

附属公司

Hsp90和Hsp70伴侣周期协同作用调节糖皮质激素受体功能

伊莱恩·柯斯克等。 单元格. .

摘要

糖皮质激素受体(GR)与许多信号蛋白一样,在体内功能依赖于Hsp90分子伴侣。虽然体内配体结合需要Hsp90,但纯化的载脂蛋白GR能够结合配体,而Hsp90没有增强作用。我们发现,已知Hsp70可以促进客户传递到Hsp90,它通过部分去折叠使GR失活,而Hsp90可以逆转这种失活。配体结合的完全恢复需要在Hsp90和Hop和p23共纸酮上进行ATP水解。令人惊讶的是,Hsp90 ATP水解似乎通过两个伴侣的ATP循环的耦合来调节来自Hsp70的客户转移。这种耦合体现在低温电子显微镜成像的GR:Hsp70:Hsp90:Hop复合体中Hsp90和Hsp70之间的接触中。虽然从Hsp70释放的GR易于聚集,但从Hsp90释放可以保护GR免受聚集并增强其配体亲和力。总之,这说明了协同伴侣相互作用如何增强稳定性、功能和调节。

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数字

图1
图1。GR配体结合活性体外试验Hsp90是否独立
A) 通过荧光偏振测量20nM F-dex与GRLBD的平衡结合(±SD)。绑定曲线拟合K154±14nM(±SEM)。B) 与5mM ATP/MgCl的平衡结合2单独使用GRLBD(蓝色)和5µM Hsp90(红色)(±SD)。
图2
图2。Hsp70抑制GR配体结合
A) F-dex与GRLBD(蓝色)、Hsp40(黄色)、Hps70和ATP(黑色)以及Hsp40、Hsp70和ATP的关联动力学(红色)。分析条件:5mM ATP/MgCl2、50nM F-dex、1µM MBP-GRLBD、2µM Hsp40和15µM Hsp70。B) Hsp70的伴侣循环。ATP结合的NBD打开SBD,使底物结合较弱。底物和Hsp40刺激ATP水解,导致高亲和力底物结合状态,盖子被锁住。底物释放发生在ADP:核苷酸交换因子(NEF)促进的ATP交换。C) 1µM MBP-GRLBD与20nM F-dex(含2µM Hsp40)平衡结合的Hsp70浓度依赖性(±SD)。拟合合作竞争绑定模型会产生IC504.6±0.4µM,希尔系数1.6±0.4μM(±SEM)。D) 100nM F-dex与MBP-GRLBD(含2µM Hsp40)的解离是由过量(100µM)的未标记dex(蓝色)和15µM的Hsp70(红色)引发的,符合单指数衰减。插图显示平均关闭率;0.029±0.002分钟−1和0.066±0.005分钟−1使用Hsp70(±SEM)。另请参见图S1。
图3
图3。氢交换质谱法检测Hsp70对GRLBD部分展开的影响
GRLBD和Hsp70结合的GRLBD之间的差异HDX映射到GRLBD(1M2Z)的dex和辅激活肽结合的晶体结构上。平均HDX的差异以百分比变化表示,并根据键进行着色,Hsp70使用橙色更快。括号内的数字是3个重复之间的标准偏差。图中显示了发生最显著构象变化的区域的相应氘积累曲线(±SD)。右上角显示放大dex,以及螺旋3形成的三个氢键。另请参见图S2。
图4
图4。Hsp90系统从Hsp70抑制中恢复GR配体结合并增强配体结合
A) 没有核苷酸,Hsp90处于扩展开放状态。在ATP稳定关闭状态下,NTD二聚化需要绕MD界面旋转NTD。HOP用旋转的NTD绑定中间开放状态,p23绑定闭合ATP绑定状态。B) 图4的实验方案。C) 20nM F-dex与1µM MBP-GRLBD与不同伴侣成分的平衡结合(±SD)。检测条件;50µM 17AAG、2µM Hsp40和15µM Hsp70、Hsp90、HOP和p23。D) 用2µM Hsp40将20nM F-dex与1µM MBP-GRLBD结合的饱和度图,以及15µM(M)Hsp70、HOP和p23,随着Hsp90 WT(红色)的增加,水解死亡的Hsp90;E47A(黑色)和D93N(蓝色)(±SD)。WT-Hsp90结合曲线符合半最大有效浓度方程。E) 20nM F-dex与300nM MBP-GRLBD单独(蓝色)以及2µM Hsp40、15µM Hsp70、Hsp90、HOP和p23(红色)的结合动力学符合单相结合。F) 100nM F-dex与1µM MBP-GRLBD(蓝色)和15µM Hsp70、2µM Hesp40和10µM Hsp90、HOP和p23(红色)结合的归一化解离动力学。关闭速度分别为0.041±0.004 min−1和0.059±0.002分钟−1(±SEM)(图S4D)。G) 平均k光突发事件与GRLBD(蓝色)和15µM Hsp70、2µM Hsp40和10µM H sp90、HOP和p23(红色)的3-5个单独实验中的GRLBD浓度的关系(±SEM)。根据线性拟合的斜率确定的速率为0.165±0.008和0.304±0.072µM−1最小值−1带伴侣(±斜率加权误差)(图S4C)。H) 20nM F-dex与GRLBD的归一化平衡结合(蓝色),以及与15µM Hsp70、2µM Hsp40和10µM H sp90、HOP和p23(红色)的归一性平衡结合(2个单独实验的平均值(±SD)。一) 平均配体K有无伴侣的GRLBD由5个单独的实验测定(如图4H所示)。K(K)伴随伴侣从201±42nM降至66±12nM(±SEM)。另请参见图S3和S4。
图5
图5。Hsp90、Hsp70、HOP、GRLBD复合物的冷冻电镜重建
A) Hsp90、Hsp70、HOP、GRLBD复合物的冷冻EM重建,过滤至38℃。B) A中的低温EM重建,Hsp70 NTD(3ATU)和SBD(1DKX)放置在青色中,Hsp90 NTD旋转HOP模型放置在洋红中(Southworth和Agard,2011)。客户绑定站点残留物大肠杆菌热休克蛋白90;E466、W467、N470显示为红色,M546、M550、L553、F554显示为蓝色(Genest等人,2013年)。C) 俯视图显示Hsp70域(青色)之间链接器的密度。D) 顶视图显示Hsp70 NTD在Hsp90 NTD之间的定位。另请参见图S5和S6。
图6
图6。Hsp90的水解非依赖性伴侣功能对维持活性GR群体至关重要
A) Hsp70和Hsp40预抑制B.GRLBD的实验方案,并与F-dex平衡。配体结合由Bag-1或Hsp90系统启动。B) 配体结合由Bag-1(黑色)、Hsp90与HOP和p23(红色)、Hsp90(E47A)与HOP和p23(绿色)、Bag-1加Hsp90与HOP和p23(紫色)以及Bag-1与Hsp90(E47A)与HOP和p23(黄色)启动。同样显示,GRLBD单独与F-dex(蓝色)预孵育。分析条件:50nM F-dex,1µM MBP-GRLBD,2µM Hsp40,15µM(M)Hsp70、Hsp90、HOP、p23和Bag-1。C) GRLBD(蓝色)的光散射时间过程,以及与Hsp40和Hsp70预孵育的GRLBD的(A),时间过程由Bag-1(黑色)启动。条件与B相同,但没有F-dex。另请参见图S7。
图7
图7。GR配体结合模型
载脂蛋白GRLBD本身主要是折叠的,暂时采样一种更非结构化的状态,在这种状态下,蛋白质核心的结合囊是可接近的,允许配体结合和分离。在需要ATP水解和Hsp40的过程中,Hsp70与GRLBD结合,并通过稳定部分未折叠的非活性状态促进配体释放。当NEF Bag-1刺激Hsp70释放GRLBD时,GRLBD以部分未折叠状态快速释放,虽然能够结合配体,但容易聚集。在Hsp90存在下,GRLBD结合的Hsp70通过HOP与Hsp90结合在一起,形成一个非活性络合物。Hsp90上的后续ATP水解需要释放Hsp70(和HOP),允许进入闭合状态和p23结合。Hsp90和Bag-1一起协同促进Hsp70的释放,从而不需要Hsp90 ATP水解。与Hsp90和p23形成成熟复合物导致高亲和力配体结合。

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