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.2014年6月;9(6):2145-51.
doi:10.3892/mmr.2014.2099。 Epub 2014年4月1日。

β-catenin在肝纤维化中过度表达,Wnt/β-catentin信号通路阻断抑制肝星状细胞活化

附属公司

β-catenin在肝纤维化中过度表达,Wnt/β-catentin信号通路阻断抑制肝星状细胞活化

文松阁等。 分子医学代表. 2014年6月.

摘要

β-catenin是Wnt/β-catening信号传导的核心成分,已被证明是细胞增殖和分化的重要调节因子。Wnt/β-catenin信号的异常激活促进组织纤维化。本研究分析了β-catenin在肝纤维化形成中的作用,并利用小干扰RNA研究了β-catanin基因沉默对肝星状细胞(HSC)功能的影响。采用免疫组织化学方法检测β-catenin在不同级别的人肝纤维化组织和正常人肝组织中的表达。为了抑制Wnt/β-catenin信号通路,开发了β-catentin的siRNA,并使用Lipofectamine 2000瞬时转染HSC-T6细胞。通过定量聚合酶链反应(qPCR)和western blot分析评估β-catenin的表达。用qPCR和免疫荧光染色检测Ⅰ型和Ⅲ型胶原的表达。使用甲基噻唑四氮唑分析法分析细胞增殖和细胞周期。Annexin V染色检测细胞凋亡。与正常对照组相比,高度肝纤维化患者的β-catenin表达水平较高。此外,β-连环蛋白siRNA分子成功转染到HSC中,并以时间依赖的方式诱导β-连环蛋白表达的抑制。β-连环蛋白siRNA处理也抑制转染HSC中Ⅰ型和Ⅲ型胶原的合成。此外,与对照组相比,siRNA介导的HSC-T6细胞β-catenin敲除抑制细胞增殖,导致细胞凋亡。这项研究表明β-连环蛋白在肝纤维化的发展中具有重要的功能作用,并证明Wnt/β-连环素信号通路的下调抑制了HSC的激活。因此,本研究为肝纤维化的治疗提供了一种新的策略。

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数字

图1
图1
β-catenin在肝纤维化过程中上调。(A–E)肝纤维化标本中β-catenin分布和表达的免疫组织化学分析(原始放大倍数,×400)。棕色表示积极的表达。(A) 正常肝组织未见免疫反应;(B) F1肝纤维化组织弱染色;F2和F3肝纤维化组织(C和D)中度染色;(E) F4肝纤维化组织强染色。(F–J)苏木精和伊红用于检查病理改变和胶原沉积。图像F–J分别指示纤维化阶段F0、F1、F2、F3和F4。网状纤维(K-O)银染色用于检查病理改变和胶原沉积。图像K–O分别表示纤维化阶段F0、F1、F2、F3和F4。F0,无纤维化;F1,肝纤维化门管区扩大;F2,门脉周围或门脉间隔,但结构完整;F3,纤维化伴建筑变形,但无明显肝硬化;F4,肝硬化。
图2
图2
(A) β-catenin在不同程度肝纤维化中的表达水平。F0,无纤维化;F1,肝纤维化门管区扩大;F2,门脉周围或门脉间隔,但结构完整;F3,纤维化伴建筑变形,但无明显肝硬化;F4,肝硬化。β-catenin免疫反应发生率:高,>80%的细胞阳性;中间,25-80%的细胞阳性;低,<25%的阳性和阴性细胞,<5%的阳性细胞。与NG和CG细胞相比,(B–E)β-连环蛋白siRNA抑制HSC-T6细胞中β-连环蛋白mRNA和蛋白的表达。β-actin作为内负荷控制。(B) β-catenin-siRNA转染后HSC-T6细胞中β-catentin mRNA表达的qPCR分析。(C) qPCR结果的半定量分析。(D) 转染后β-catenin蛋白表达的Western blot分析。(E) 蛋白质印迹结果的半定量分析。(F–H)β-catenin siRNA抑制HSC-T6细胞中I型和III型胶原mRNA的表达。(F) siRNAβ-catenin转染后HSC-T6细胞I型和III型胶原mRNA表达的qPCR分析。β-actin作为内负荷控制。(G和H)qPCR结果的半定量分析。P<0.05,b与NG和CG相比,P<0.01。n、 样品数量;小干扰RNA;NG,正常组;CG,对照组;定量聚合酶链反应。siRNA1,转染后24小时;siRNA2,转染48小时后。
图3
图3
(A和B)β-catenin siRNA抑制HSC-T6细胞中I型和III型胶原mRNA的表达。siRNAβ-catenin转染后HSC-T6细胞中I型胶原和III型胶原表达的免疫荧光染色分析。(C) β-catenin siRNA抑制HSC-T6细胞增殖。用MTT法分析转染β-连环蛋白siRNA的HSC-T6细胞的生长曲线。每个样品分析三份,包括误差条。与对照组和非转染组相比,转染后3、4和5天β-catenin siRNA组的增殖显著降低(P<0.05)。(D和E)Annexin V分析β-catenin siRNA诱导HSC-T6细胞凋亡。(D) HSC-T6细胞中β-catenin siRNA的凋亡作用示例。(E) 与对照组相比,β-catenin siRNA治疗后凋亡细胞的百分比增加。与对照siRNA组相比,P<0.01。误差线表示标准偏差。小干扰RNA;MTT,3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基四唑溴化铵。

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