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2014年9月;60(3):1044-53.
doi:10.1002/hep.27137。 Epub 2014年5月9日。

乙醇脱氢酶III通过增强小鼠星状细胞活化和抑制自然杀伤细胞而加重肝纤维化

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乙醇脱氢酶III通过增强小鼠星状细胞活化和抑制自然杀伤细胞而加重肝纤维化

Hyon-Seung Yi先生等人。 肝病学 2014年9月

摘要

近年来,视黄醇及其代谢产物在肝星状细胞(HSC)和自然杀伤(NK)细胞之间的相互作用中发挥着重要作用。然而,视黄醇代谢酶在这两种细胞类型中的表达和作用尚待阐明。因此,我们研究了视黄醇代谢酶的表达及其在肝纤维化中的作用。在几种视黄醇代谢酶中,仅在分离的HSC和NK细胞中检测到乙醇脱氢酶(ADH)3的表达,而肝细胞表达所有这些酶。体外用广泛的ADH抑制剂4-甲基吡唑(4-MP)处理或耗尽ADH3基因下调胶原和转化生长因子-β1(TGF-β1)基因表达,但不影响培养HSC中α-平滑肌肌动蛋白基因的表达。此外,在体外,视黄醇治疗抑制了NK细胞的活性,而ADH3的抑制增强了干扰素-γ(IFN-γ)的产生和NK细胞对HSC的细胞毒性。在体内,ADH3基因的基因缺失改善了胆管结扎和四氯化碳诱导的肝纤维化,其中检测到大量凋亡的HSC和NK细胞的激活增强。与对照小鼠相比,从ADH3缺乏小鼠新分离的HSC显示胶原和TGF-β1的表达降低,但在这些小鼠的NK细胞中检测到IFN-γ的表达增强。通过对野生型和ADH3缺陷小鼠进行相互骨髓移植,我们证明了HSC和NK细胞中的ADH3缺陷有助于抑制肝纤维化。

结论:ADH3通过增强HSC活化和抑制NK细胞活性,在促进肝纤维化中发挥重要作用,可作为治疗肝纤维化的潜在靶点。

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数字

图1
图1
4-MP治疗抑制HSC的激活。(A) 野生型肝细胞和4-MP处理的野生型HSC的RT-PCR分析。(B)野生型HSCs中ADH3、α-SMA和COL1A1的实时PCR分析。(C) 培养HSC中α-SMA、ADH3和TGF-β1的蛋白质印迹。(D) 流式细胞术检测培养HSC中Rae1的表达。(E) 培养HSC中视黄醇和atRA的细胞内浓度。(F) 4-MP处理的WT-HSC的维甲酸受体(RAR)和维甲酸X受体(RXR)的实时PCR分析。数据表示为平均值±SEM*P(P)< 0.05, **P(P)与相应对照组相比<0.01。
图2
图2
抑制ADH3基因抑制HSC的激活和增殖。WT和ADH3−/−分离培养HSC。(A,B)添加ADH3 siRNA后HSC的RT和实时PCR分析。(C)ADH3 siRNA后4天培养的HSC(D4 HSC)的Western blot分析。(D)HSC中ADH3 siRNA后上清液中IL-6和MCP-1的水平。(E) 用ADH3 siRNA培养WT小鼠的D4 HSC及其数量(原始放大倍数×100)。(F) WT和ADH3培养的HSC−/−小鼠接受实时PCR分析。数据表示为平均值±SEM*P(P)< 0.05, **P(P)与相应对照组相比<0.01。
图3
图3
视黄醇通过ADH3抑制干扰素-γ的产生和NK细胞对HSC的细胞毒性。从WT小鼠中分离的NK细胞用于在体外实验。(A) 使用肝脏NK细胞分析视黄醇代谢酶的表达。(B) NK细胞用视黄醇处理或与D4 HSC在4-MP存在或不存在的情况下共同培养3小时,然后进行RT和实时PCR分析。(C) 测定上清液中IFN-γ水平。(D) 用ADH3 siRNA或干扰siRNA处理的肝NK细胞与D4 HSC共同培养,并进行实时PCR分析。(E) 肝NK细胞作为效应细胞,在4-MP存在或不存在的情况下,对D4 HSC和Yac-1细胞进行细胞毒性试验。(F)与NK细胞共培养的D4 HSCs进行实时PCR分析。数据表示为平均值±SEM*P(P)< 0.05, **P(P)与相应对照组相比<0.01。
图4
图4
ADH3基因的消融通过上调NK细胞IFN-γ的生成和下调HSC的激活来抑制肝纤维化。WT和AD3−/−小鼠注射CCl4持续2周。(A) 在收集的血清中测定ALT、AST和IFN-γ水平。(B) 肝切片用天狼星红和α-SMA抗体染色(原始放大倍数,×100),与α-SMA抗体(红色)和TUNEL(绿色)共同染色,或与ADH3(绿色)和结蛋白(红色)共同染色(原始放大倍数,×800,×1200)。细胞核用DAPI(蓝色)(C)染色。肝脏MNC进行流式细胞术。(D) 对分离的肝脏NK细胞和整个肝组织进行实时PCR分析。(E) 通过共同培养WT和ADH3的NK细胞分析IFN-γ的产生及其表达−/−D4 WT HSC小鼠。(F) D4 WT HSC与WT和ADH3的NK细胞共培养−/−小鼠接受实时PCR分析。数据表示为平均值±SEM。与相应对照组相比,*P<0.05,**P<0.01。
图5
图5
ADH3缺乏的骨髓移植可改善肝纤维化。(A) 将产生GFP的WT骨髓移植到WT小鼠后第8周。流式细胞术检测NK细胞嵌合性。(B) 在WT和ADH3缺乏小鼠之间进行骨髓互惠移植后,向小鼠注射CCl4持续2周。肝切片用α-SMA抗体和天狼星红染色(原始放大倍数×100)。(C,D)取肝组织进行Western blotting和实时PCR分析。(E) 用流式细胞术分析肝NK细胞产生IFN-γ的情况,并测定血清IFN-γ水平。(F) 通过实时PCR分析分离的肝NK细胞中IFN-γ的表达。数据表示为平均值±SEM。与相应对照组相比,*P<0.05,**P<0.01。
图6
图6
ADH3在肝纤维化中的细胞类型特异性作用。在肝损伤期间,视黄醇在HSC和NK细胞中由ADH3代谢,这从两个方面影响HSC与NK细胞的相互作用。(A) 在HSC和NK细胞中存在ADH3时,ADH3通过表达COL1A1或激活潜伏TGF-β诱导HSC活化。同时,激活的HSC中Rae1的表达招募肝脏NK细胞,随后激活的TGF-β抑制NK细胞产生IFN-γ。此外,活化HSC释放的视黄醇被NK细胞的ADH3代谢,从而抑制NK细胞中IFN-γ的生成。(B) 在HSC和NK细胞中缺乏ADH3的情况下,HSC中COL1A1和TGF-β的表达显著降低,而HSC激活的NK细胞产生更多IFN-γ,导致HSC激活受到抑制。因此,ADH3在HSC激活中是一个正调节器,但在NK细胞产生IFN-γ中是一种负调节器。

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