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.2013:4:2935.
doi:10.1038/ncomms3935。

肿瘤相关突变体p53驱动Warburg效应

附属公司

肿瘤相关突变体p53驱动Warburg效应

岑章等。 国家公社. 2013.

摘要

肿瘤细胞主要利用有氧糖酵解产生能量,这种现象称为Warburg效应。其机制尚不清楚。肿瘤抑制基因p53在肿瘤中经常发生突变。许多肿瘤相关突变体p53(mutp53)蛋白不仅失去了肿瘤抑制功能,还获得了独立于野生型p53的新致癌功能,即mutp53-功能获得(GOF)。在这里,我们显示肿瘤相关mutp53作为一种新的mutp53-GOF刺激了培养细胞和mutp35敲除小鼠中的Warburg效应。Mutp53通过促进GLUT1易位到质膜来刺激Warburg效应,这是由激活的RhoA及其下游效应器ROCK介导的。抑制RhoA/ROCK/GLUT1信号在很大程度上消除了mutp53 GOF刺激Warburg效应。此外,抑制肿瘤细胞中的糖酵解大大削弱了mutp53 GOF促进肿瘤发生的作用。因此,我们的结果揭示了一种新的mutp53 GOF和控制Warburg效应的机制。

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作者声明没有竞争性的经济利益。

数字

图1
图1。Mutp53在体内外均能刺激Warburg效应
(a)在p53缺失的H1299细胞中,R175H、R248Q和R273H突变p53的异位表达增强了葡萄糖摄取、糖酵解速率和乳酸生成。反对:控制。a–d中的左侧面板:通过蛋白质印迹分析检测细胞中mutp53的表达。(b)在表达R175H mutp53的SK-BR3细胞和表达R273H mutp53的MDA-MB468细胞中,两种不同的shRNA载体敲除内源性mutp5可降低葡萄糖摄取、糖酵解率和乳酸生成。Con-shR:对照shRNA;p53-shR:p53 shRNA。(c)增加葡萄糖摄取、糖酵解率和乳酸生成第53页R172H/R172HMEF与第53页−/−MEF。172:第53页R172H/R172H(d)不同组织葡萄糖摄取增加第53页R172H/R172H小鼠与p53−/−小鼠相比。(e)血清乳酸水平升高第53页R172H/R172H小鼠与p53−/−小鼠进行比较。数据表示为平均值±SD(a-c为n=5,d&e为n=6)。##:第页<0.05; #:第页<0.01; *:第页<0.005; 双尾学生t吨-测试。
图2
图2。野生型p53抑制Warburg效应在体外体内
(a)低水平的葡萄糖摄取、糖酵解率和乳酸生成第53页+/+MEF细胞与第53页−/−MEF电池。wtp53:野生型p53。(b)不同组织的葡萄糖摄取水平较低第53页+/+小鼠与第53页−/−小鼠。(c)血清乳酸水平较低第53页+/+小鼠与第53页−/−小鼠。(d)在人乳腺MCF7、人肺H460和A549细胞中,两种不同的shRNA载体对内源性wtp53的敲除增强了细胞中的葡萄糖摄取、糖酵解速率和乳酸生成。Con-shR:对照shRNA;p53 shR:p53 shRNA。通过蛋白质印迹分析检测细胞中a-d:wtp53表达的左侧面板。数据表示为平均值±SD(a和d的n=4,b和c的n=6)。##:第页<0.05; #:第页<0.01; *:第页<0.005; 双尾学生t吨-测试。
图3
图3。Mutp53刺激GLUT1转位到质膜在体外和中活泼地
(a)Western-blot分析检测到H1299细胞中R175H、R248Q和R273H mutp53的异位表达促进了GLUT1向质膜(PM)的移位。PM蛋白Na+/K(K)+ATP酶起到负荷控制作用,Calnexin起到PM分数的负控制作用。总计:全细胞裂解物。(b)在流式细胞术分析的H1299细胞中,Mutp53促进Myc-GLUT1易位到PM。左、中面板:细胞表面(左)和整个细胞(中)的Myc-GLUT1荧光染色图像。右侧面板:与细胞内总Myc-GLUT1水平归一化后细胞表面的相对Myc-GLUT1水平。在检测前48小时,用pLPCX-Myc-GLUT1载体或pLPCX载体(作为阴性对照)转导细胞。(c)H1299对照细胞和异位表达R175H、R248Q或R273H mutp53的细胞中Myc-GLUT1的IF染色。比例尺,10µm。(d,e)通过shRNA敲除SK-BR3和MD-MBA468细胞中的内源性mutp53可减少内源性GLUT1的易位(如Western-blot分析(d)所测),并通过流式细胞术(e)测量Myc-GLUT1向PM的易位。(f)用mutp53敲除和对照细胞对SK-BR3和MD-MBA468细胞中的Myc-GLUT1进行IF染色。比例尺,10µm。在d–f中,使用了两种针对p53的shRNA载体,并观察到类似的结果。(克,小时)R172H mutp53促进内源性GLUT1向PM的易位,Western-blot分析(g)和流式细胞术(h)分析Myc-GLUT1至PM第53页R172H/R172HMEF细胞。(i)肝组织PM内源性GLUT1水平升高第53页R172H/R172H小鼠与第53页通过Western-blot分析检测到−/−小鼠。对6只/组小鼠进行分析,其中3只/组。(j)Mutp53不促进内源性GLUT2或GLUT3在H1299或MEF细胞中的移位或表达。(k)流式细胞术分析表明,Mutp53不促进H1299和MEF细胞中Myc-GLUT2或Myc-GLUT3的PM易位。在检测前48小时用pLPCX-Myc-GLUT2或GLUT3载体转导细胞。数据以平均值±标准差(n=4)表示。*:第页<0.005; #:第页<0.01; 双尾学生t吨-测试。
图4
图4。GLUT1介导mutp53对细胞Warburg效应的刺激作用
(a)shRNA载体敲除GLUT1在很大程度上消除了R175H、R248Q和R273H mutp53对H1299细胞中Warburg效应的刺激作用。Con-shR:控制shRNA;GLUT1-shR:GLUT1 shRNA。(b)siRNA敲低GLUT1基因可消除R172H mutp53对p53中Warburg效应的刺激作用R172H/R172HMEF公司。(c)shRNA敲除GLUT1后,R175H和R273H mutp53分别对SK-BR3和MDA-MB468细胞的Warburg效应产生刺激作用。(d)shRNA敲低GLUT3并没有明显影响mutp53对H1299细胞中Warburg效应的刺激作用。H1299细胞中只有GLUT3被敲除,因为在H1299中检测不到GLUT2表达(图4j)。(e)siRNA对GLUT2或GLUT3的敲除并没有明显影响R172H突变p53对小鼠Warburg效应的刺激作用第53页R172H/R172HMEF公司。a-e中的左侧面板:通过Western-blot分析分析的细胞中GLUT1、GLUT2或GLUT3的敲除。分别针对GLUT1、2和3使用两种不同的shRNA载体或siRNA寡核苷酸,并观察到类似的结果。数据表示为平均值±SD(n=3)。#:第页<0.01; *:第页<0.005; 双尾学生t吨-测试。
图5
图5。Mutp53通过激活RhoA刺激Warburg效应
(a)Mutp53增强了RhoA活性,表现为细胞中RhoA-GTP水平增加。上部面板:表示Western-blot分析的结果。下面板:单元格中相对RhoA-GTP/总RhoA水平。数据表示为平均值±SD(n=4)。(b)表达载体异位表达RhoA促进了H1299和H1299中Myc-GLUT1向PM的易位第53页−/−MEF电池。(c)RhoA的异位表达促进了H1299和第53页−/−MEF电池。(d)shRNA或siRNA对RhoA的敲除在很大程度上消除了mutp53对H1299、MEF和MDA-MB468细胞内源性GLUT1易位到PM的刺激作用。(e、f、g)RhoA敲除基本上消除了mutp53对H1299(e)、MDA-MB468(f)和MEF(g)细胞中Myc-GLUT1易位到PM的刺激作用。(h,i,j)RhoA敲除基本上消除了R273H mutp53对H1299(h)、MDA-MB468(i)和MEF细胞(j)中Warburg效应的刺激作用。在d-j中,使用了两种不同的针对RhoA的shRNA载体或siRNA寡聚体,并观察到类似的结果。数据表示为平均值±SD(n=4)。##:第页<0.05; #:第页<0.01; *:第页<0.005; 双尾学生t吨-测试。
图6
图6。Mutp53通过ROCK激活刺激Warburg效应在体外体内
(a)酶免疫测定结果显示,Mutp53增强了H1299、MEF、SK-BR3和MD-MB468细胞中的ROCK活性。(b)ROCK抑制剂Y27632(10µM,6 h)在很大程度上消除了mutp53对H1299和MEF细胞中GLUT1易位到PM的刺激作用。PM:质膜;总量:全细胞提取物。(c、d)Y27632处理和siRNA敲低ROCK1/2在很大程度上消除了mutp53对H1299细胞中Myc-GLUT1易位到PM(c)和Warburg效应(d)的刺激作用。用pLPCX-Myc-GLUT1载体转染细胞后,在检测前24小时用siRNA寡核苷酸转染细胞,以同时敲低ROCK1/2。通过实时PCR分析证实了ROCK1/2敲除(补充图S5d)。(e、f)Y27632处理(10µM,6 h)和ROCK1/2敲除在很大程度上消除了mutp53对Myc-GLUT1易位(e)和Warburg效应(f)的刺激作用第53页R172H/R172HMEF细胞。(g)不同组织中RhoA-GTP水平升高第53页R172H/R172H小鼠与p53−/−小鼠进行比较。左侧面板:表示Western-blot分析的结果。右侧面板:相对RhoA-GTP/总RhoA水平。数据以平均值±SD表示(n=6只小鼠,重复两次)。(h)不同组织中ROCK活性增加第53页R172H/R172H小鼠与第53页−/−小鼠。(i)Y27632基本上消除了R172H mutp53对小鼠不同组织中GLUT1易位到PM的刺激作用。在注射Y27632(i.p.;10µg/g体重)后3 h处死小鼠进行分析。(j)Y27632基本上消除了R172H mutp53对小鼠不同组织葡萄糖摄取的刺激作用。在葡萄糖摄取试验前3小时,向小鼠注射Y27632(i.p.)。(k)Y27632基本上消除了R172H mutp53对小鼠血清乳酸生成的刺激作用。在c–f中,分别使用了两种不同的siRNA寡核苷酸来对抗ROCK1和ROCK2,并观察到类似的结果。在g–k中,每组使用6只小鼠进行分析。数据表示为平均值±SD(n=4 in a–f,n=6 in h,j,k)。##:第页<0.05; #:第页<0.01; *:第页<0.005; 双尾学生t吨-测试。
图7
图7。Mutp53促进肌动蛋白聚合,促进GLUT1转位到质膜
(a)Mutp53刺激肌动蛋白聚合,在表达R175H、R248Q或R273H Mutp53的H1299细胞中,RhoA shRNA和ROCK抑制剂Y27632(10µM,6小时)可以消除肌动蛋白的聚合。(b)肌动蛋白聚合抑制剂,细胞松弛素D(Cyto D)和latrunculin B(Lat B),消除了mutp53对H1299细胞肌动蛋白聚集的促进作用。(c、d)Cyto D和Lat B阻断了mutp53对H1299细胞内源性GLUT1(c)和Myc-GLUT(D)向质膜(PM)移位的刺激作用。总量:全细胞提取物。(e)细胞D和Lat B在H1299细胞中消除了mutp53对Warburg效应的刺激作用。(f)Mutp53促进肌动蛋白聚合第53页R172H/R172HMEFs,可以被Cyto D废除。(克,小时)Cyto D和Lat B消除了mutp53对Myc-GLUT1易位到PM(g)的刺激作用和Warburg效应(h)第53页R172H/R172HMEF公司。(i)敲除R273H mutp53可减少MDA-MB468细胞中肌动蛋白聚合,而细胞D可消除肌动蛋白的聚合。(j,k)Cyto D和Lat B在MDA-MB468细胞中消除了mutp53对Myc-GLUT1易位到PM(j)的刺激作用和Warburg效应(k)。在分析之前,用(+)或不用(−)Cyto D(20µM)或Lat B(10µM。对照组(Con)用二甲基亚砜治疗。数据表示为平均值±SD(n=3)。#:第页<0.05; *:第页<0.005; 双尾学生t检验。
图8
图8。糖酵解抑制对肿瘤发生中mutp53 GOF的影响
(a)shRNA载体(GLUT1-shR或RhoA-shR)对GLUT1或RhoA的敲除在很大程度上消除了R175H、R248Q和R273H mutp53对H1299细胞中锚定非依赖性生长的促进作用。左侧面板:表示H1299细胞中R175H mutp53表达和对照细胞中软琼脂上的菌落图像。比例尺,100µm。(b)shRNA载体对GLUT1或RhoA的敲除在很大程度上消除了R273H mutp53对MDA-MB468细胞中凤尾鱼非依赖性生长的促进作用。(c、d)shRNA对GLUT1(c)或RhoA(d)的敲除在很大程度上消除了R175H mutp53对H1299细胞异种移植瘤生长的促进作用。左侧面板:表示第24天的肿瘤图像。右侧面板:异种移植瘤的生长曲线。(e)shRNA敲除GLUT1(左)或RhoA(右)在很大程度上消除了R273H mutp53对H1299细胞异种移植瘤生长的促进作用。(f)shRNA对GLUT1(左)或RhoA(右)的敲除在很大程度上消除了R273H mutp53对MDA-MB468细胞异种移植瘤生长的促进作用。(克,小时)在含有半乳糖但不含葡萄糖的培养基中培养细胞消除了突变p53对H1299(g)和MDA-MB468(h)细胞中锚定非依赖性生长的促进作用。左侧面板(g):表示H1299细胞中R175H mutp53表达和对照细胞中软琼脂上的菌落图像。比例尺,100µm。(i)显示Warburg效应作为突变p53的新GOF的刺激的模型。在a–h内,针对每个靶基因的两种不同shRNA载体,包括GLUT1、RhoA和p53,用于所有检测,并且观察到类似的结果。数据表示为平均值±SD(c–f的n=10,其余的n=4)。*:第页<0.005; #:第页<0.01; 双尾学生t吨-测试a、b、g和h;方差分析,然后是学生的t吨–c–f测试。

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引用人

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