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.2013年10月10日;1(4):307-21.
doi:10.1016/j.stemcr.2013.09.001。 2013年电子收集。

L-脯氨酸通过重塑H3K9和H3K36甲基化在胚胎干细胞中诱导间质样侵袭程序

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L-脯氨酸通过重塑H3K9和H3K36甲基化在胚胎干细胞中诱导间质样侵袭程序

斯蒂芬妮娅来了等。 干细胞报告. .

摘要

代谢物正在成为新陈代谢流量、细胞信号传递和细胞命运表观遗传调控之间相互干扰的关键介质。我们发现,非必需氨基酸L-脯氨酸(L-Pro)作为一种信号分子,促进胚胎干细胞转化为间质样、纺锤状、高运动性、侵袭性多能干细胞。这种胚胎-胚胎-细胞-间充质样转变(esMT)伴随着H3K9和H3K36甲基化状态的全基因组重塑。一贯地,L-Pro-induced esMT在L-Pro退出或添加抗坏血酸(维生素C)后是完全可逆的,这反过来降低了H3K9和H3K36甲基化,促进了间质样-胚胎-干细胞转变(MesT)。这些发现表明,由细胞外基质蛋白水解酶重构产生的L-Pro可能作为微环境线索来控制干细胞行为。

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图形摘要
图1
图1
L-Pro诱导ESCs中的细胞骨架重排和细胞运动(A和B)结晶紫(A)和Phalloidin TRITC(B)染色的PiC和ESC集落的代表性显微照片。收缩纤维()和前缘跛足(箭头)显示(A)。细胞核用Hoechst染色。(B) 比例尺代表100μm。(C) 标记有vinculin和phalloidin(上面板)或β-微管蛋白(下面板)的ESCs/PiCs的荧光共焦显微照片。肌动蛋白应激纤维用磷脂酶-TRITC标记(红色;[B和C])。微管和局部粘连用抗β-微管蛋白(绿色;[C],下面板)和抗Vinculin(绿色;[C],上面板)抗体染色。细胞核用TO-PRO-3复染。比例尺代表50μm。(D) 未处理(对照)和L-预处理ESC的延时序列的代表帧。从第3天开始拍摄图像(20×)。(E) 在15%的FBS中迁移的ESC/PiC的平均数量(10.5±1.5 ESC对33±3 PiC)或向FBS梯度1%–15%的方向迁移(13±2 ESC对110±13 PiC)。(F) 在1%FBS中单独(对照组)或向EGF(50 ng/ml)、胰岛素(5μg/ml)、SDF-1(100 ng/ml)或Cyr61(200 ng/ml。数据为平均值±SD(n=3);p<0.01;∗∗p<0.005。另请参见图S1和电影S1、S2和S3。
图2
图2
L-Pro重塑PiCs与ESCs差异表达基因的ESC转录组(A)热图。(B) 显示差异表达式大小的火山图[log2(折叠变化),x轴]与统计显著性测量值[−log10(p值),y轴]。差异表达量≥5倍的基因用红色表示。(C)基因本体(GO)分析(网址:http://david.abcc.ncfcrf.gov). 饼图显示了微阵列分析中最具代表性的GO术语,比较了PiC和ESC。每个饼片内的数字显示了每种类别中差异表达蛋白编码基因的分数(%)(表S1)。(D) 描述PiCs与EpiSCs差异表达基因之间重叠的文氏图或Klf2型/四氟化钾/五氟化钾(Klf2,4,5)三次击倒ESC与对照ESC相比。(E) KEGG途径富集分析;与细胞骨架/细胞运动/粘附或癌症相关的通路分别以绿色和蓝色突出显示。另请参见图S2和表S1。
图3
图3
L-脯氨酸处理的ESCs的侵袭和转移潜能(A)平行迁移(灰色条)和细胞侵袭(黑色条)跨阱分析,测量ESCs和PiC向FBS梯度(1%–15%)±SDF-1(100 ng/ml)的迁移/侵袭。指出了迁移和入侵的PiCs的平均数量。数据为平均值±SD;n=3;p<0.05;∗∗p<0.001。(B) 体内转移试验示意图。非肥胖糖尿病(NOD)/SCID小鼠静脉注射EGFP标记的ESCs、PiCs(1×106或B16-BL6黑色素瘤细胞(2×105). (C) ESC/PiC注射小鼠的肺(左图)和苏木精和伊红染色的肺组织切片(右图),显示两只PiC注射小鼠出现大畸胎瘤;n=5/组。(D) 显示EGFP的肺组织切片的代表性显微照片+PiC衍生的畸胎瘤(白星,上图)或B16-BL6黑色素瘤细胞衍生肿瘤用作对照(白星图,下图)。比例尺代表100μm(C)和500μm(D)。另请参见图S3。
图4
图4
L-Pro诱导对经L-Pro-治疗的与未经治疗的ESCs(第5天)中EMT标记的表达进行esMT(A)qPCR分析。(B和C)N-计算机辅助设计T型通过qPCR(B)和western blot(C)分析测定表达。GAPDH,3-磷酸甘油醛脱氢酶。(D) 的缩微照片T型PIC的免疫染色(左侧面板)和相位对比(右侧面板)。比例尺代表100μm。(E) qPCR分析电子cad,蜗牛、和鼻塞L-Pro-treated与未处理ESCs的表达(第5天)。(F) western blot分析L-Pro-treated ESCs中E-CAD表达的时间进程。GAPDH归一化后与未处理ESC相关的E-CAD蛋白水平的密度分析。(G) 使用常规(上面板)或共焦(下面板)荧光显微镜对对照组和L-脯氨酸处理的ESC进行E-CAD免疫染色的图像。白色箭头(插图)表示E-CAD的囊泡核周定位。比例尺代表50μm。(H) 荧光共焦显微照片显示E-CAD与高尔基体标记GM130的共定位(白色箭头)。用Hoechst对细胞核进行复染。比例尺代表20μm。(一) 时间进程Pkdcc公司通过qPCR在L-前处理的ESCs中表达。(A、B、E和I)。与控制ESC相比,数据在归一化至Gapdh公司(J)下调Pkdcc公司左图显示L-Pro-treated ESCs中siRNAs的表达(第5天)。数据是基因表达与对照(非靶向siRNA)相比的翻倍变化。的影响Pkdcc公司-群体型频率的沉默(右图);数据为平均值±标准偏差,~100个菌落得分;n=3;p<0.01。另请参见图S4。
图5
图5
与ESC相比,L-Pro修改了PiC中H3K9单甲基化、二甲基化和三甲基化(左)以及H3K4、K27和K36三甲基化水平的ESCs(A)的表观基因组特征Western blot分析。密度分析与对照组蛋白H3归一化后的ESCs相关。数据为平均值±SD(n=3);p<0.05;∗∗p<0.001。(B) PiCs与ESCs基因和基因间区域H3K9me3结合位点的全基因组H3K9 me3峰(上面板)和基于SICER的差异分布(下面板)。(C) 维恩图关联微阵列基因表达和ChIP-seq数据(p=0.03;Fisher精确检验;上部面板)。对H3K9me3差异富集和非调控的439个位点进行KEGG途径富集分析(下表)。(D) H3K9me3配置文件快照涂抹1,Apod公司、和Ceacam1号机组基因。(E) PiCs与ESCs基因和基因间区域差异H3K36me3结合位点的全基因组H3K365me3峰(上面板)和基于SICER的分布(下面板)。(F) 维恩图关联微阵列基因表达和ChIP-seq数据(p=0.03;Fisher精确检验;上面板)以及628个H3K36me3差异富集和非调控位点的KEGG通路富集分析(下面板)。(G) H3K36me3配置文件快照坑x2,Fgf5型、和Pkdcc公司基因。另请参见图S5和表S2。
图6
图6
维生素C恢复诱导H3K9和H3K36去甲基化的PiC表型(A)实验策略示意图。新生成的PIC(P0)两次传代(P1和P2)含L-Pro(对照)、不含L-Pro或含L-Pro+VitC。然后将细胞以500个细胞/厘米的速度接种2,生长5天,进行菌落表型分析(圆顶与扁平;右侧面板)。数据表示菌落类型频率的百分比,平均值为±SD;~100个菌落得分;n=3。(B) ESCs、PiCs和维生素C处理的PiCs(ESCs)的迁移(白色条)和细胞侵袭(灰色条)跨阱分析利润)朝向FBS梯度(1%–15%)。显示了迁移和入侵细胞的平均数量。数据为平均值±SD;n=3;p<0.01;∗∗p<0.0001。ESCs中L-Pro-induced表型转变的(C和D)比较分析利润和ESC。(C) 对照组(未经处理)和L-预处理ESC和ESC的平板菌落频率利润电镀后第4天和第5天。数据为平均值±标准偏差(n=3;每个实验中对100个菌落进行评分)。(D) L-Pro-treated ESCs与ESCs中PiC形成的时间进程分析利润.结晶紫染色、L-预处理ESC和ESC的代表性显微照片利润在指定时间点的菌落。比例尺代表50μm。(E) qPCR分析T型英赫布表达式。数据是与对照组(+L-Pro)相比,在标准化至Gapdh公司(F)H3K9me3和H3K36me3水平的蛋白质印迹分析(下面板)。密度分析(上图)是相对于总组蛋白H3标准化后的对照ESCs。数据为平均值±SD(n=2);p<0.05;∗∗p<0.01。另请参见图S6。

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