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.2013年9月17日;110(38):15467-72.
doi:10.1073/pnas.1315399110。 Epub 2013年9月3日。

RNA-结合蛋白通过控制内含子异染色质基因IBM1的mRNA处理调节植物DNA甲基化

附属公司

RNA-结合蛋白通过控制内含子异染色质基因IBM1的mRNA处理调节植物DNA甲基化

王新刚等。 美国国家科学院程序. .

摘要

在许多高等真核生物中,DNA甲基化依赖异染色质形成是转座子和其他重复元件表观遗传沉默的保守机制。与重复元件相邻的基因也经常受到这种表观遗传沉默的影响。因此,植物进化出了抗沉默机制,例如由5-甲基胞嘧啶DNA糖基化酶的沉默代表1(ROS1)家族介导的活性DNA去甲基化,以保护这些基因免受沉默。一些转座子和其他重复元件在基因的内含子中找到了住所。目前尚不清楚这些内含子重复元件基因是如何调控的。我们在这里报道了从拟南芥细胞抗沉默因子正向遗传筛选中鉴定抗沉默1(ASI1),一个溴邻同源结构域和RNA识别基序包含蛋白。ASI1是防止启动子DNA超甲基化和一些转基因的转录沉默所必需的。全基因组DNA甲基化分析表明,ASI1在阻止数千个基因体内CHG甲基化方面与组蛋白H3K9去甲基化酶在博萨甲基化1(IBM1)中增加的作用类似。我们发现ASI1是一种RNA-结合蛋白,通过与IBM1的内含子异色重复序列结合,确保了IBM1全长转录物的正确表达。通过mRNA测序,我们确定了许多包含内含子转座子元件的基因,这些元件需要ASI1才能正确表达。我们的结果表明,ASI1与内含子异染色质相关,并结合基因转录物以促进其3'末端多聚腺苷化。因此,该研究揭示了高等真核生物处理沉默内含子重复元件的副作用的独特机制。

关键词:炸薯条;DNA甲基体;基因表达。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。

数字

图1。
图1。
转基因沉默表型的表征亚洲1-1突变体。(A类)根生长表型亚洲1-1,玫瑰1-13、和idm1-9型在添加1%蔗糖或1%葡萄糖的1/2 MS培养基上(顶部中部)在含1%蔗糖的培养基上培养两个互补的转基因株系(底部). (B类)的相对表达水平SUC2公司,NPTII公司、和HPTII公司在WT中,第1-1页,玫瑰1-13、和idm1-9型. (C类)ASI1示意图(AT5G11470型)蛋白质结构域。红色星号表示亚洲1-1突变。(D类)的相对表达式SUC2公司,NPTII公司、和HPTII公司在WT中,亚洲1-1、和标记ASI1/ASI1-1用DMSO(阴性对照)或5′Aza处理的互补植物。(E类)IGB(33)的快照显示了35秒发起人。甲基C测序数据映射到35S-SUC2型获取甲基化信息的转基因序列。
图2。
图2。
全基因组甲基化分析亚洲1-1突变体及其比较亚洲1-1带有ibm1-4型关系型数据突变体。(A类)超-DMR分析。(左侧)超-DMR的组成亚洲1-1,ibm1-4型、和关系型数据突变体。基因,蛋白质编码基因中的DMRs,但不是TE;IG,基因间区;其他,与假基因、miRNAs、rRNAs等其他特征重叠的DMR。;TE、TE中的DMRs而不是蛋白质编码基因;TE+基因,TEs和蛋白编码基因中的DMR。(赖特)重叠或唯一于asi1-1、ibm1-4、和关系型数据突变体。在少数情况下,当一个突变体中的一个区域与另一个突触中的两个区域重叠时,我们从亚洲1-1,ibm1-4型、和关系型数据,按顺序。(B类)方框图显示了为所示亚组中的超-DMR计算的平均CG、CHG或CHH甲基化水平的分布。(C类)两个代表性DNA超甲基化区域的快照显示CHG甲基化显著增加,CHH甲基化轻微增加亚洲1-1ibm1-4型. (D类)基因体和两侧2-kb区域的平均甲基化水平。每个基因从头到尾排列,并分成20个相等的箱子。上游和下游2-kb区域也被分为20个相等的箱子。计算所有相应区域内60个箱子中每个箱子的加权甲基化水平并绘制。本分析仅使用四倍或更多覆盖率的胞嘧啶。
图3。
图3。
的规定IBM1型ASI1表达。(A类)的示意图IBM1-L型IBM1-S型以及用于定量实时PCR的引物的位置。(B类)的相对表达式IBM1-5′,IBM1-3′,IBM1-L型、和IBM1-S型在WT和亚洲1-1突变体。(C类)长形式和短形式的检测ibm 1公司WT中的成绩单,亚洲1-1和补充亚洲1-1通过Northern印迹分析。(D类)mRNA-seq 3′RACE数据。(顶部)IGB(33)的快照显示IBM1型转录和甲基化水平。(底部)3′RACE PCR和测序结果。大写的蓝色字母和小写的橙色字母表示IBM1型WT中的成绩单和亚洲1-1分别是。中的绿色框IBM1型基因结构显示内含子异染色质区(IH)。(E类)根的生长和相对表达SUC2公司IBM1-L型WT中的转录物,亚洲1-1,3标记ASI1/ASI1-1,IBM1Δ1H/asi1-1、和IBM1/asi1-1. (F类)WT的DNA甲基化敏感PCR分析,亚洲1-1,标记ASI1/ASI1-1,IBM1Δ1H/asi1-1、和IBM1/asi1-1在测试的位点,包括盆景(英国国家标准局).
图4。
图4。
调节AT3G05410型,AT1G11270型、和AT1G58602型由ASI1提供。(顶部)mRNA-seq数据显示3′区转录水平降低,基因组亚硫酸氢盐测序数据显示DNA甲基化水平、基因结构和3′RACE结果(A类)AT3G05410型, (B类)AT1G11270型、和(C类)AT1G58602型。绿色方框表示内含体T。(底部)3′RACE PCR产物凝胶的照片,5′和3′转录水平的实时RT-PCR分析,以及WT中替代转录物的Northern blot分析,亚洲1-1和补充亚洲1-1.
图5。
图5。
ASI1是一种RNA结合蛋白,在内含子异染色质区域富集。(A类)ASI1靶基因不同区域的Pol II占有率。通过ChIP实时RT-PCR测定目标基因5′、内含子TE/异染色质和3′区域的Pol II占有率。(B类)使用抗FLAG抗体的ChIP实时RT-PCR数据pASI1::3标记ASI1仅在测试位点的TE/异染色质区域显示ASI1富集的互补系。WT植株作为阴性对照。所示数据来自三个独立实验中的一个。(C类)体外EMSA显示ASI1与单链RNA结合。A类32P标记的60-nt单链RNA寡核苷酸和未标记的RNA寡核苷酸分别用作放射性探针和未标记竞争物。B、 结合RNA带;F、 游离RNA带。
图6。
图6。
内含子异染色质基因选择性多聚腺苷化的ASI1依赖性调控的假设模型。(A类)ASI1分别通过BAH结构域和RRM基序与内含子异色区和新生前体mRNA结合。前信使核糖核酸与ASI1的结合诱导形成有利于3′末端聚腺苷酸化而非近端聚腺苷酸化的结构。(B类)在缺乏ASI1的情况下,前mRNA形成有利于近端多聚腺苷化的结构,导致全长转录物的积累减少。灰色方框代表外显子。

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参考文献

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