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2012年3月30日;149(1):49-62.
doi:10.1016/j.cell.2012.02.030。 Epub 2012年3月6日。

PTEN系统性升高诱导肿瘤抑制代谢状态

附属公司

PTEN系统性升高诱导肿瘤抑制代谢状态

伊莎贝尔·加西亚-Cao等。 单元格

摘要

PTEN的减少性丢失导致癌症易感性和肿瘤进展。因此,PTEN升高可能是癌症预防和治疗的一个有吸引力的选择。利用细菌人工染色体(BAC)介导的转基因,我们已经产生了几种PTEN表达提高到不同水平的转基因小鼠系。“超级PTEN”突变体是可行的,并且由于细胞数量减少而显示出体型缩小,而对细胞大小没有影响。出乎意料的是,PTEN在生物体水平的升高导致健康的新陈代谢,其特点是增加能量消耗,减少体脂积累。来自这些小鼠的细胞表现出葡萄糖和谷氨酰胺摄取减少,线粒体氧化磷酸化增加,并且对致癌转化具有抵抗力。我们发现PTEN升高通过调节PI3K依赖性和独立性通路来协调这种代谢转换,并对肿瘤细胞最显著的两个代谢特征产生负面影响:谷氨酰胺分解和Warburg效应。

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数字

图1
图1。Super-PTEN小鼠的产生
,BAC RP23-215F15克隆携带的基因组插入图(RPCI文库,C57BL/6J),用于生成PTEN基因剂量增加的小鼠(“Super-PTEN”小鼠)。基因组插入物长218.50 Kb,包含整个铂族位点(红色方框表示PTEN编码序列)。灰色线表示BAC矢量(pBACe3.6)序列。使用AscI对BAC克隆进行线性化。显示了用于检测转基因的引物(T7侧:F1,R1;SP6侧:F2,R2)。b条,不同BAC-PTEN转基因株系PTEN水平的量化。从每个品系获得MEF,并用PTEN和β-肌动蛋白抗体检测总蛋白裂解物。该图显示了每一转基因株系中PTEN水平相对于野生型同窝产仔的倍数增加。c、,来自tg无表达(第1行)、中等表达(第2行)或高表达(第3行)的MEF的代表性免疫印迹。d中,性交后13.5天采集的wt和tg胚胎的代表性图像。注意,与体重相比,tg胚胎的体型减小。e、,Western blot显示PTEN在胚胎发生期间和成年小鼠组织中的表达(第3行的wt和tg)*就心脏而言,考马斯曲线显示为负荷控制。f、,Western blot显示来自wt和tg MEFs的细胞质(C)和核(N)提取物中的PTEN水平(第3行)。克,PTEN在wt和tg小鼠组织中的免疫组织化学表达(第3行)。
图2
图2。Super-PTEN状态与生命相容,但由于细胞数量减少,导致器官尺寸减小
a、,生长曲线表明PTEN过度表达导致体重减轻。注意,随着PTEN剂量的增加,这种影响更为严重。b、,Western blot显示来自不同PTEN转基因株系的不同组织(脾、肝)中的PTEN水平(株系1:1.2倍;株系2:2倍;株株3:高于内源性PTEN水平3.5倍)。c、,PTEN过度表达对体型的影响(第3行)。d中,从Super-PTEN和野生型小鼠分离的器官中的细胞数量和细胞大小(第3行,每个基因型3个)。FSC=前向散射。CD4/8细胞:CD4+/镉8+,KSL单元格:Lin负极/c试剂盒+/Sca-1型+,AT2细胞:Sca1负极/CD45型负极/PECAM公司负极/Autofl(自动飞行)你好,B电池:B220中+/免疫球蛋白M中+中的错误栏d日表示s.d.参见图S1。
图3
图3。PTEN过度表达导致培养物中生长速度降低,对致癌细胞转化产生抵抗,c-Myc水平降低,并赋予癌症抵抗力体内
a、,wt和tg MEF的生长曲线(每个基因型3个)。b、,初级wt和tg MEF的3T3系列培养(n=3)。图中显示了每个通道的累积种群倍增(PDL)。c、,wt和tg MEF的集落形成效率(n=4)。d中,wt和tg MEF的转化敏感性(n=4)。图片显示了转染致癌Ras和E1A后形成的肿瘤灶数量。e、,对3MC诱导的纤维肉瘤的敏感性。将3MC肌肉注射到指定基因型的小鼠的一条后腿,并对纤维肉瘤发生的潜伏期进行评分(第3行,每个基因型5个)。根据Gehan-Breslow-Wilcoxon试验确定,Super-PTEN小鼠发生肿瘤的潜伏期明显长于野生型小鼠(*p<0.05)。Western blot显示PTEN在野生型和Super-PTEN小鼠肿瘤中的表达水平。f、,由E1A+Ras(顶部)或cMyc+E1A+Ras(底部)转化的初级MEF中的软琼脂分析。该图显示了每个孔的菌落数(六孔板,三份样品)。显示了化验的代表性图片。克,来自wt和tg MEF和组织的蛋白质裂解物的免疫印迹。用抗c-Myc、PTEN和β-actin抗体检测总细胞提取物。中的误差线,b条,c(c),d日如果表示s.d.参见图S2。
图4
图4。Super-PTEN小鼠的能量消耗增加
a、,通过EchoMRI(第3行)测定年轻小鼠(左侧:wtn=7;tgn=7)和老年小鼠(右侧:wtn=12;tgn=10)的脂肪和瘦肉质量百分比。b条,Super PTEN(红线)和野生型小鼠(黑线)的间接量热法。耗氧量(VO2)、二氧化碳释放量(VCO2)、呼吸交换比(RER;VCO2/VO(旁白)2)在代谢室中测定Super PTEN和野生型小鼠每公斤体重的能量消耗(品系3,每个基因型n=4)。c、,wt(n=10)和tg(n=9)小鼠(第3行)的血清乳酸水平。中的误差线表示s.d。;中的误差线b条表示s.e.m.参见图S3。
图5
图5。PTEN过度表达导致线粒体耗氧量、线粒体ATP生成和线粒体数量增加
a、,在基础条件下以及添加寡霉素、FCCP和鱼藤酮后,测量初级体重和tg MEF(每个基因型3个)的OCR(耗氧率)(Seahorse XF24分析仪)。b、,如方法部分所述,激动剂刺激后wt和tg MEF的线粒体ATP生成。如有指示,用100µM ATP处理细胞。数据表示为初始值的百分比。重量:162±8%;tg:251±18%。三个独立实验的n=15,p<0.05(平均值±标准误差)。c、,线粒体钙2+激动剂刺激后的体内平衡测量如方法部分所述。如有指示,用100µM ATP处理细胞。重量:[钙2+]峰值155±8µM。tg:[钙2+]峰值131±5µM。n=12,来自三个独立实验(平均值±s.e.m)。d中,线粒体膜电位分析(ΔΨ)单位为wt和tg MEF。如方法部分所述,加载TMRM的单元格。当用FCCP处理指示细胞时,ΔΨ完全崩解记录道代表单细胞反应(wt n=28;tg n=33)。e、,方法部分所述的线粒体总体积和单个体积以及线粒体数量分析(wt n=43;tg n=40,来自三个独立实验,p<0.05)。线粒体靶向GFP可视化显示wt和tg MEF中的线粒体形态。如方法部分所述,计算线粒体断裂指数(wtn=43;tg n=40,来自三个独立实验)。网络体积图、平均线粒体体积图和线粒体数图的纵坐标分别为体素/细胞、体素/物体和N°物体/细胞。中的误差线表示s.d。;中的误差线d日,e(电子)表示s.e.m.参见图S4。
图6
图6。PTEN升高通过调节PI3K依赖和独立通路诱导肿瘤抑制代谢状态
a、,在wt和tg细胞(n=2)中测量培养基中的葡萄糖、乳酸和谷氨酰胺水平,并将其标准化为细胞数。b中,mTORC1和PI3K/Akt通路的药理抑制对糖酵解酶和谷氨酸解酶的影响。用二甲基亚砜(续)、20 nM雷帕霉素(Rapa.)处理24 h或100 nM沃特曼(Wort.)处理8 h的wt和tg MEF的细胞裂解液,用PKM2、PFKFB3、GLS、p-S6、S6、p-Akt、Akt,PTEN和β-actin抗体进行免疫印迹。c、,的影响Tsc2型PKM2蛋白水平上消耗介导的mTORC1激活。GL3-shRNA的细胞裂解物(对照荧光素酶基因的shRNA)和Tsc2型-用PKM2、Tsc2、PTEN和²-actin抗体对shRNA感染的wt和tg-MEFs进行免疫印迹。d中,折叠变化率(tgwt)通过qRT-PCR测定来自wt和tg MEF的总RNA的PTEN、FKFB3和GLS mRNA水平(左边)。蛋白酶体介导的GLS和PFKFB3降解。用10µM蛋白酶体抑制剂MG132处理来自wt和tg MEF的细胞裂解液4小时,用GLS、PFKFB3、PTEN和β-肌动蛋白抗体进行免疫印迹(正确的).e、,PFKFB3过度表达对E1A+Ras转化的原代MEF中细胞生长(电镀后48小时)的影响。显示了相对于wt MEFs+E1A+Ras的增长百分比。f、,PTEN增强APC/C-Cdh1介导的GLS泛素化。PTEN公司-将缺失的PC-3细胞与GLS、His-ubiquitin(Ub)、CDH1和PTEN联合转染,并在收获前用MG132(10µM)处理4小时。使用镍从细胞裂解液中纯化His-Ub共轭GLS2+-变性条件下的NTA自旋柱。克, 加拿大存托凭证1-沉默可恢复tg MEF中GLS和PFKFB3的水平。转染siRNAs的wt和tg MEF的细胞裂解物雷尼利亚荧光素酶(siCont.)或加拿大存托凭证1用GLS、PFKFB3、PTEN、Cdh1和²-肌动蛋白抗体进行免疫印迹。小时,菌落数(倍数变化率:tgwt MEFs+Ras)在软糖分析中形成Tsc2型加拿大存托凭证1由致癌Ras转化的永生化MEF中的基因敲除。该图显示了每个孔的菌落数(六孔板,三份样品)。中的误差线,d日,e(电子)小时表示s.d.参见图S5。
图7
图7。PTEN通过调节PI3K依赖和独立通路诱导肿瘤抑制代谢状态
PTEN升高对肿瘤细胞两个最显著的代谢特征产生负面影响的模型:谷氨酸分解和Warburg效应。

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