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.2012年1月1日;302(1):G176-81。
doi:10.1152/ajpgi.00053.2011。 Epub 2011年10月28日。

在慢性胰腺炎大鼠模型中,全身注射抗NGF可增加A型钾电流并降低胰腺伤害感受器兴奋性

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在慢性胰腺炎大鼠模型中,全身注射抗NGF可增加A型钾电流并降低胰腺伤害感受器兴奋性

朱耀辉等。 美国生理学杂志胃肠测试肝脏生理学. .

摘要

我们之前已经证明,慢性胰腺炎(CP)大鼠的胰腺感觉神经元表现出与瞬间失活钾电流(I(a))减少相关的兴奋性增加,因此部分解释了与这种情况相关的痛觉过敏。由于其在躯体痛觉过敏中的作用众所周知,我们假设神经生长因子(NGF)在驱动这些变化中发挥作用。大鼠导管内注射三硝基苯磺酸(TNBS)诱发CP。3周后,每天腹腔注射抗NGF抗体或对照血清,持续1周。在另一组对照大鼠实验中重复了该方案(接受导管内PBS代替TNBS)。用Dil染料标记的胰腺伤害感受器被鉴定出来,并从急性分离的DRG神经元中进行斑贴记录。与对照血清处理组相比,抗NGF处理组大鼠的感觉神经元表现出较低的静息膜电位、升高的流变酶、减少刺激电流引起的突发放电以及降低的输入阻抗。在电压钳条件下,与用对照血清处理的大鼠相比,抗NGF处理的大鼠的神经元I(A)密度增加。然而,抗NGF治疗对对照大鼠神经元的电生理参数没有影响。通过激光捕获显微切割和实时PCR定量mRNA水平检测胰腺特异性伤害感受器中Kv相关通道或辅助基因Kv1.4、4.1、4.2、4.3以及DPP6、DPP10和KCHIPs 1-4的表达。这些人之间没有发现显著差异。这些发现强调了NGF在维持CP神经元兴奋性方面的关键作用,特别是通过目前未知的机制下调I(a)。

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数字

图1。
图1。
各种治疗后胰腺的组织学评估。输注后3周,H&E染色胰腺组织,然后按指示进行1周的额外治疗。A类:接受导管内PBS的大鼠胰腺。B:三硝基苯磺酸(TNBS)诱导的慢性胰腺炎(CP)大鼠胰腺,用正常山羊血清(NGS)治疗C类:TNBS诱导的CP大鼠胰腺,经抗神经生长因子(NGF)治疗。D类:接受NGS或抗NGF治疗的CP组的平均组织学评分。
图2。
图2。
抗NGF治疗对慢性胰腺炎大鼠DRG神经元爆发模式的影响。A类:解剖DRG后,记录Dil标记的神经元的电生理特性(箭头表示用Dil标记的细胞)。标尺=20μm。B–E类:通过rheobase的贴片吸管注入300-ms去极化电流脉冲诱发的典型脉冲(动作电位)痕迹(BD类)和两倍的流变酶(C类E类)用正常山羊血清(NGS)处理的大鼠DRG神经元;BC类)或抗NGF抗体(D类E类).
图3。
图3。
抗NGF治疗对慢性胰腺炎大鼠DRG神经元电生理参数的影响。A类:用电流钳测量两组的平均静息膜电位(= 0).B:在I-clamp中测量的两组的平均流变酶(激发动作电位所需的最小电流)。C类:两组注射×2流变酶电流后的平均峰数或动作电位。D类:通过全细胞电压测量值计算的输入电阻平均值,以响应超极化电流的注入。详见正文*显著差异(P(P)< 0.05).
图4。
图4。
抗NGF治疗对无慢性胰腺炎大鼠DRG神经元电生理参数的影响。除了给大鼠导管内注射PBS而不是TNBS外,采用了与图3相同的方案和测量。A类:用电流钳测量两组的平均静息膜电位(=0)。B:在I-clamp中测量的两组的平均流变酶(激发动作电位所需的最小电流)。C类:两组注射×2流变酶电流后的平均峰数或动作电位。D类:通过全细胞电压测量值计算的输入电阻平均值,以响应超极化电流的注入。
图5。
图5。
抗NGF治疗对慢性胰腺炎大鼠DRG神经元Kv电流的影响。向外K总计+A类通过生物物理协议在−100和−50 mV之间切换保持电位来诱发和分离,如图所示插入其中,使用从−60 mV到+30 mV的5 mV电压阶跃产生电流。A类B:分别从用正常山羊血清(NGS)处理的CP大鼠的单个DRG神经元记录的代表性痕迹(A类)另一个用抗NGF抗体治疗(B).左侧:总钾电流(总计)保持电位为−100 mV。中部:持续不激活K(K)-保持电位为−50 mV时的类型电流。:瞬态失活A型电流(A类)从以下两者的差异中获得总计K(K).C、,/两组的V曲线对应于左,中、和正确的.D类:差异的统计摘要总计(左边),K(K)(中间的)、和A类(正确的)在两个治疗组之间。
图6。
图6。
抗NGF治疗对Kv相关和辅助基因mRNA表达的影响。从用抗NGF或对照血清处理的CP大鼠的激光捕获DRG切片中获得总RNA。A类:激光捕获前DRG切片显示荧光标记神经元。B:捕获后的相同部分。C类:在cDNA合成之前结合来自T9和T10 DRG片段的RNA,并在Kv1.4、4.1、4.2和4.3基因以及DPP6、DPP10和KCHIPs 1-4(KCHIP1未检测到)的专用引物存在下预扩增14个周期。使用GAPDH作为标准化因子,通过DDCt方法计算测试基因的mRNA水平变化,并相对于每个感兴趣基因的血清处理组的平均DDCt进行表达。

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