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.2011年8月3日;3(94):94ra70。
doi:10.1126/scitranslmed.3002394。

化学合成致死性靶向GLUT1和肾癌的Warburg效应

附属公司

化学合成致死性靶向GLUT1和肾癌的Warburg效应

丹尼斯·A·陈等。 科学转化医学. .

摘要

确定新的靶向治疗方法,在杀死肿瘤细胞的同时保留正常组织,是癌症研究的一大挑战。通过高通量化学合成致死筛选,我们试图鉴定利用von Hippel-Lindau(VHL)抑癌基因缺失的化合物,该基因缺失发生在约80%的肾细胞癌(RCC)中。RCC和许多其他癌症一样,依赖有氧糖酵解产生ATP,这种现象被称为Warburg效应。RCC对糖酵解的依赖性部分是葡萄糖转运蛋白1(GLUT1)诱导的结果。在这里,我们报告了一类化合物的鉴定,即以STF-31为例的3系列化合物,该化合物通过特异性靶向GLUT1的葡萄糖摄取并利用这些细胞对GLUT1独特的依赖性来选择性杀死RCC。用这些药物治疗可通过直接结合GLUT1抑制RCC的生长,并阻止体内葡萄糖摄取,而不会对正常组织产生毒性。STF-31在这些实验性肾肿瘤中的活性可以通过微正电子发射断层成像的[(18)F]氟脱氧葡萄糖摄取来监测,因此,这些药物可以很容易地在人类肿瘤中进行临床测试。我们的结果表明,Warburg效应为肿瘤细胞提供了独特的特征,可以选择性地靶向治疗。

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图1
图1
化学合成致命筛选可识别特定靶向药物损失的化合物VHL(甚高频)在肾癌中。()STF-31对有无RCC4克隆形成存活率的影响VHL(甚高频)(10天)(*P(P)< 0.00005). (B类)RCC4和RCC4/VHL细胞中克隆性存活的代表性平板(5μM STF-31;10天)。(C类)STF-31(5μM)对细胞作用的时间进程(*P(P)< 0.0005). (D类)STF-31对含或不含shRNA-VHL的ACHN细胞克隆形成存活的影响(*P(P)< 0.0001). (E类)STF-31(5μM)对处理3天的RCC4和RCC4/VHL细胞的细胞死亡的影响。用台盼蓝染色测定细胞死亡(*P(P)< 0.01). (F类)STF-31对过度表达HIF-2α的RCC4、RCC4/VHL或RCC4/VL细胞克隆的影响(*P(P)< 0.005). 所有误差条代表SEM(n个= 3).
图2
图2
STF-31抑制VHL(甚高频)-缺乏细胞。()用载体或STF-31(5μM)处理的RCC4和RCC4/VHL细胞中,由糖酵解最终产物丙酮酸转化而来的乳酸(μmol/细胞)(*P(P)< 0.01). (B类)相对细胞外酸化率(ECAR)(mpH/min)VHL(甚高频)-缺陷细胞和野生型细胞VHL(甚高频)响应STF-31(5μM)48小时。细胞用结晶紫染色,并测量吸光度以进行归一化(*P(P)< 0.0005). (C类)STF-31治疗后的相对葡萄糖摄取量(5μM)。计数标准化为单元数(*P(P)< 0.000005). (D类)STF-31浓度对葡萄糖摄取的影响(*P(P)< 0.00005). (E类)STF-31对STF-31处理后全细胞裂解物中己糖激酶活性的影响(5μM)。(F类)STF-31(5μM)对转染HIF-1β小干扰RNA(siRNA)的RCC4细胞葡萄糖摄取的影响(*P<0.05)。(G公司)STF-31(5μM)对耗氧量(nmol/min/10)的影响6单元格)。(H(H))STF-31(5μM)对有无细胞内相对ATP水平的影响VHL(甚高频)(*P(P)< 0.005). ()STF-31对有无细胞ATP水平的影响VHL(甚高频)(*P(P)< 0.01). (J型)STF-31(5μM)对无糖细胞葡萄糖摄取和克隆形成细胞存活的影响VHL(甚高频)上限约为72小时。(K(K))STF-31(5μM)对糖尿病细胞葡萄糖摄取和克隆形成细胞存活的影响VHL(甚高频)上限约为72小时。所有误差条代表SEM(n个= 3).
图3
图3
VHL(甚高频)-与野生型肾癌相比,缺乏型肾癌对葡萄糖缺乏更敏感,GLUT1水平更高VHL(甚高频). ()连续6天缺乏葡萄糖和/或丙酮酸对RCC4和RCC4/VHL细胞数量的影响(*P(P)< 0.005). (B类)连续6天缺乏葡萄糖和/或丙酮酸盐对786-O和786/VHL细胞数量的影响(*P(P)< 0.005). (C类)在包含正常肾组织(正常)和肾透明细胞癌(RCC)的肾癌数据集中GLUT1、GLUT2、GLUT3和GLUT4的表达(17)。(D类)通过定量实时PCR测定RCC4和RCC4/VHL中GLUT1和GLUT2的相对mRNA表达[归一化为TATA盒结合蛋白(TBP)]。(E类)肾癌数据集中GLUT1和GLUT2表达的相关性(17)。所有误差条代表SEM(n个= 3). (F类)一组RCC细胞系中VHL状态、HIF-1、HIF-2、GLUT1和GLUT2表达以及对STF-31的敏感性。
图4
图4
抑制GLUT1公司导致细胞死亡VHL(甚高频)-缺乏细胞。()STF-31在GLUT1溶质通道内对接的示意图。(B类)RCC4和RCC4/VHL的细胞裂解液与用连接物衍生的亲和凝胶固定化STF-31孵育,然后用尿素缓冲液洗脱。用GLUT1、GLUT2或GLUT3抗体检测洗脱液。(C类)携带稳定、可诱导shRNAmir至GLUT1的RCC4和RCC4/VHL细胞GLUT1相对mRNA水平。用多西环素(DOX)(500ng/ml)处理细胞5天。(D类)将shRNAmir诱导为GLUT1后,RCC4和RCC4/VHL的细胞存活率。所有误差条代表SEM(n个= 3). (E类)表达GLUT1诱导shRNAmir的RCC4和RCC4/VHL细胞的荧光激活细胞分选分析。用强力霉素(500 ng/ml)处理细胞以诱导shRNAmir,这也会激活TurboRFP的表达。4天后,收集细胞,用细胞坏死标记物染色,并进行流式细胞术。
图5
图5
可在体内监测3系列药物的疗效。()可溶性STF-31类似物(5μM)治疗后测量人红细胞的葡萄糖摄取(*P(P)< 0.001) (n个= 3). (B类)用红细胞(RBC)裂解缓冲液或STF-31类似物(5μM)处理的人类红细胞的代表性照片。(C类)786-O细胞(一种自然发生VHL突变的RCC)的FDG-PET显像,植入CD-1裸鼠侧翼皮下。小鼠治疗前(左)和每天腹腔注射可溶性类似物STF-31(11.6 mg/kg)(右)三次后的代表性轴截面,覆盖CT扫描。(D类)根据每克注射剂量百分比(ID/g)的第90百分位关注区域确定的FDG-PET抑制定量(*P(P)< 0.01). (E类)(a)车辆处理小鼠的肾脏。(b) STF-31模拟治疗小鼠的肾脏。(c) 车用小鼠脾脏。(d) STF-31模拟治疗小鼠的脾脏。(e) 来自车用小鼠的肝脏。(f) STF-31模拟物治疗小鼠的肝脏。(g) 来自车用老鼠的心脏。(h) STF-31模拟治疗小鼠的心脏。(i) 媒介物处理小鼠的唾液腺。(j) STF-31模拟治疗小鼠的唾液腺。(k) 来自车用老鼠的大脑。(l) STF-31模拟治疗小鼠的大脑。用溶媒或药物治疗动物10天(前3天为11.6 mg/kg,后一周为7.8 mg/kg)。比例尺,100μm。(F类)786-O荷瘤小鼠每天用载体(11只动物)或可溶性STF-31类似物(12只动物)治疗一次或两次(前3天为11.6 mg/kg,后一周为7.8 mg/kg)(*P(P)< 0.005). (G公司)将表达VHL短发夹RNA的ACHN细胞皮下植入免疫功能受损小鼠(每组5只小鼠)的侧翼。一旦肿瘤达到平均>60 mm,小鼠每天用STF-31类似物或载体治疗(*P(P)< 0.01). 所有误差条代表SEM。
图6
图6
STF-31对依赖GLUT1进行有氧糖酵解的细胞具有综合致死性。VHL同时调节HIF-1和HIF-2,从而增加GLUT1的表达。HIF-1还抑制线粒体,使细胞转向有氧糖酵解。STF-31化合物在GLUT1水平较高的RCC中抑制GLUT1。这些RCC依赖GLUT1进行糖酵解和细胞活力。

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