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.2011年3月4日;144(5):782-95.
doi:10.1016/j.cell.2011.02.031。

Yap1在α-连环蛋白下游发挥作用以控制表皮增殖

附属公司

Yap1作用于α-catenin下游以控制表皮增殖

卡琳·施莱格尔米尔奇等。 单元格. .

摘要

在发育和再生过程中,组织特异性干细胞的增殖受到严格控制,以产生预定大小的器官。这一过程的分子决定因素尚不清楚。在这里,我们研究了Hippo信号通路的转录效应器Yap1在皮肤生物学中的功能。通过获得和失去功能的研究,我们表明Yap1是表皮干细胞增殖和组织扩张的关键调节剂。Yap1通过与TEAD转录因子的相互作用调节这种效应。此外,我们的研究表明,α-连环蛋白是Yap1的上游负调控因子,它是一种以前参与皮肤肿瘤抑制和细胞密度传感的分子。α-catenin通过调节其与14-3-3和PP2A磷酸酶的相互作用来控制Yap1活性和磷酸化。总之,这些数据确定Yap1是表皮干细胞增殖能力的决定因素,也是哺乳动物皮肤中“人群控制”分子回路的重要效应器。

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数字

图1
图1。Yap1激活导致表皮干细胞扩张
E18.5小鼠野生型表皮免疫组织化学染色显示Yap1表达(棕色)。B类Yap1的免疫荧光染色显示了人角质形成细胞中的动态定位模式,该模式依赖于细胞密度。C类H&E染色显示,在多西环素(Dox)诱导8天后,成年Tg小鼠皮肤出现异常厚的表皮和角化过度。D-E公司,对成人表皮冰冻切片的免疫荧光分析显示,在dox诱导8天后,Tg皮肤中增殖的Ki-67阳性细胞室以及干细胞室(p63阳性,K5阳性)扩张。虚线标记表皮-皮肤交界处。F类从8天Dox治疗的Tg小鼠中分离的原代小鼠角质形成细胞的罗丹明B染色,并在喂食器上培养9天,显示表皮干细胞室显著扩张,表现为Tg皮肤中较高的集落形成效率。G公司罗丹明B染色和菌落计数显示,通过连续重复试验测量,给予Dox后,集落形成祖细胞的自我更新能力显著增加(如第2代,P2所示)。*p<0.05,**p值<0.01。比例尺代表20µm。另请参见补充图S1A–C。
图2
图2。Yap1激活导致肿瘤形成
Dox治疗开始后14天和42天,Ctr和Tg移植物的大体形态。注意Tg 14d移植物中角化过度和毛发生长迟缓,Tg 42d移植物的皮肤溃疡和皮下肿瘤肿块。B类在Dox诱导后9天和42天,Ctr和Tg移植物的H&E染色显示来源于Tg移植物的侵袭性角质形成细胞对下层真皮的侵袭。箭头指向邻近的正常裸鼠表皮。白色虚线表示癌与正常裸皮的边界。C类免疫组织化学显示,Dox治疗9天的Tg移植物中细胞角蛋白(CK)和角蛋白6(K6)的表达。D类,经9d和42d Dox治疗的Tg移植物上Yap1的免疫组织化学显示肿瘤的上皮起源。箭头指向裸鼠表皮。电子,42天Dox诱导Tg移植物上波形蛋白(Vim)和整合素-β4(β4-int)的免疫组织化学。比例尺代表100µm。另请参见补充图S1D–H。
图3
图3。Yap1是维持表皮干细胞增殖能力所必需的
、代表性对照(Ctr)和cKO E18.5胚胎的大体形态。注意远端肢体、眼睛和耳朵没有皮肤,整体皮肤较薄。B类E18.5小鼠的甲苯胺蓝皮肤屏障试验显示四肢、耳朵、鼻子和嘴巴没有表皮屏障。C类H&E染色显示,与Ctr相比,cKO皮肤的表皮厚度减少(用括号表示)。注意基底细胞的扁平形态和无组织的表皮结构。虚线表示表皮-皮肤交界处。D-E公司,冷冻E18.5表皮上的免疫荧光显示cKO皮肤基底细胞耗竭的迹象。注意角蛋白10(K10)阴性、角蛋白5(K5)阳性的祖细胞/干细胞渗入基底膜(β4)的数量减少。注意cKO的角质层中K5的背景染色。F类,用抗磷烯酮H3(pH3)抗体测定cKO肢体皮肤中增殖性基底细胞数量显著减少。结果代表了对3种不同动物至少5个不同领域的测量结果。G公司,E18.5皮肤中克隆形成祖细胞数量减少。罗丹明B染色和菌落计数在电镀后第八天进行,是两个独立实验的代表。数据表示为平均值±标准偏差(误差线)**p值<0.01,***p<0.005。比例尺代表20µm。另请参见补充图S2A-F。
图4
图4。皮肤中的Yap1功能通过TEAD因子介导
,携带最小启动子(minP)上游多聚TEAD结合序列(TBS)和mCherry报告子的HaCaT角质形成细胞系对Yap1-S127A的表达有反应,而Yap1的RNAi KD下调报告子水平。用加扰对照-RNAi转染的细胞在基础水平上显示报告活性。B类,TBS报告者动态模拟Yap1活动/定位。顶面板上,TBS-mCherry显示出动态荧光模式,在生长菌落边缘的角质形成细胞表达较高的mCherri水平。底部面板,报告信号在高细胞密度下显著降低。C类,在腺病毒Cre(+Cre)处理的Yap中,Yap1和TEAD1之间的物理相互作用实际上被消融液体/S79A胚胎成纤维细胞。用抗Yap1抗体进行免疫沉淀(IP),然后对TEAD1进行免疫印迹。负载控制β-微管蛋白(β-管)。D类、对照组(Ctr)和K14-Cre-Yap的大体形态液体/S79AE18.5胚胎。注意远端肢体无皮肤,皮肤较薄,基底细胞扁平。电子E18.5 K14-Cre-Yap皮肤中克隆形成祖细胞数量和增殖潜能的减少液体/S79A如用罗丹明B染色的集落分析所证明的小鼠。数据以平均值±标准差(误差条)、**p<0.01、***p<0.005表示。比例尺代表20µm。另请参见补充图S3A–C。
图5
图5。α-连环蛋白与Yap1和14-3-3相互作用
将汇合的HaCaT细胞裂解物(输入)用于带有抗Yap1或Pu.1(Ctrl)抗体的IP和带有α-连环蛋白抗体的IP后材料。B类293T细胞与所示质粒共转染,然后用GST或FLAG-beads进行免疫沉淀(IP)。Co-IP显示全长Yap1和α-连环蛋白之间的关联,以及α-连环蛋白和YapS127A突变体之间的关联大大减弱。IB:免疫印迹,WCL:全细胞裂解物。C类钙诱导的原代人角质形成细胞分化导致Yap1易位到与α-catenin共定位的膜区域。比例尺=10uM。D类,对与α-catenin相互作用重要的Yap1结构域的表征。E–F,在存在或不存在14-3-3的情况下,体外拉下重组Yap1和α-catenin。G公司在磷酸化重组Yap1存在的情况下,体外拉下重组〈-catenin和14-3-3。H(H),Yap1和α-catenin的免疫沉淀表明生化相互作用依赖于14-3-3。所示比例尺为10µm。另请参见补充图S4A-E、S5A-B和表S1。
图6
图6。α-连环蛋白调节Yap1的定位和活性
用EGTA破坏高融合角朊细胞中的AJ,导致治疗1分钟后Yap1核定位。B类携带TBS报告子的HaCaT或293T细胞中AJ蛋白的敲除(KD)。NF2的KD显示为阳性对照。C类融合角朊细胞中α-cat的KD导致Yap1核定位,并与其核伴侣Tead1相互作用(D).电子,siRNA介导的高密度HaCaT培养物中α-cat的缺失导致丝氨酸127(pYap)处的Yap磷酸化损失,以及活化的Mst1/2(pMst)或Lats1/2(pLats)水平不变。F类,Ctrl和K14-Cre条件α-catenin突变(cKO)E18.5表皮中Yap1的免疫组织化学。注意cKO小鼠基底细胞和基底上细胞的核染色增强。G公司,免疫荧光检测Yap1(紫色)在体外表达GST-α-cat(绿色)的低密度角质形成细胞中的定位。过度表达α-cat的角质形成细胞显示Yap1定位于细胞与细胞接触的部位,而未转染的细胞显示细胞核染色,细胞膜上没有Yap1染色。H(H)α-catenin(α-cat-KD)的稳定敲除可促进HaCaT细胞的过度增殖,但多西环素(doxycycline,dox)诱导的α-caten-KD细胞中Yap1的KD可减缓细胞增殖速度以控制(Ctr)水平。,α-cat在HaCaT细胞中的异位表达抑制细胞增殖(α-catOE)。这种生长抑制通过Dox诱导的Yap1S127A突变体(Yap1S127A+Dox)的表达得以缓解。数据为平均值±标准偏差(误差线),***p<0.001。比例尺为20µm(A,C)和10µm。另请参见补充图S5C-H和S6A-E。
图7
图7。α-连环蛋白结合阻止Yap1去磷酸化和活化
,PP2Ac与α-连环蛋白缺失的HaCaT细胞中的Yap1相关。在缺乏α-catenin的情况下,Yap1和14-3-3的结合减弱。B类,Yap1在体外被PP2Ac去磷酸化。不同浓度的纯化PP2A与Sf9-纯化重组Yap1孵育30分钟。C类α-catenin的siRNA KD增加TBS报告子的激活和Yap1的去磷酸化。α-连环蛋白和PP2Ac的同时KD抑制TBS报告基因转录活性和Yap1磷酸化的增加。D类在重组14-3-3和α-catenin存在下,通过PP2Ac对Yap1进行体外去磷酸化竞争试验,对phospo-Yap水平进行Western blot分析。电子,密度依赖性和α-连环蛋白介导的Yap1激活的示意图模型。数据表示为平均值±标准偏差(误差线),**p<0.01,***p<0.001。另请参见补充图S7。

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