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.2011年1月11日;108(2):551-6.
doi:10.1073/pnas.1014434108。 Epub 2010年12月27日。

Flotillins在Niemann-Pick C1-like 1-介导的胆固醇摄取中发挥重要作用

附属公司

Flotillins在Niemann-Pick C1-like 1-介导的胆固醇摄取中发挥重要作用

梁戈等。 美国国家科学院程序. .

摘要

饮食吸收是哺乳动物获取胆固醇的主要途径,胆固醇由Niemann-Pick C1-like 1(NPC1L1)通过囊泡内吞作用介导。这个过程中的一个基本问题是如何通过NPC1L1的内化有效地吸收游离胆固醇。利用外源性表达的NPC1L1-EGFP,我们表明脂筏蛋白浮子与NPC1L1相关,它们的定位在细胞内运输过程中受NPC1L1.调节。此外,flotillins对NPC1L1介导的小鼠细胞胆固醇摄取、胆汁胆固醇重吸收和调节脂质水平至关重要。它们与NPC1L1一起形成富含胆固醇的膜微域,作为大部分胆固醇的载体。低胆固醇药物ezetimibe破坏了NPC1L1和flotillins之间的联系,从而阻止了富含胆固醇的微结构域的形成。我们的研究结果揭示了flotillins在NPC1L1介导的胆固醇摄取中的功能性作用,并阐明了NPC1L1-氟西林阳性胆固醇富集膜微结构域的形成是有效胆固醇吸收的机制。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。

数字

图1。
图1。
小队与NPC1L1相关。(A类)NPC1L1–flotillins复合物在胆固醇摄取过程中组成。CRL1601–NPC1L1-EGFP细胞在胆固醇消耗培养基中培养60分钟,以去除胆固醇,然后在含有15μg/mL胆固醇的胆固醇补充培养基中孵育指定时间,以补充胆固醇。用抗EGFP偶联琼脂糖进行IP,并用免疫印迹(IB)检测指示蛋白。Ctr,对照;μ2,AP2复合亚基μ2;船队,船队;Tnr,转铁蛋白受体。(B类E类)flotillin-1的胆固醇调节再循环依赖于NPC1L1。(B类C类)Flotillin-1-RFP与NPC1L1-EGFP共表达(B类)或EGFP(C类)在CRL1601单元中。48小时后,如图1所示,将细胞中的胆固醇耗尽60分钟,然后补充胆固醇60分钟A类在不同的时间点,即稳态(SS)、胆固醇消耗(CD)和胆固醇补充(CR),固定细胞并用共焦显微镜检查。(比例尺:10μm或1μm,放大图像。)(E类)PM-localized flotillin-1号()或重叠系数(E类)NPC1L1-EGFP和船队-1-RFP之间,如B类C类被量化。误差线代表标准偏差(n个≥50). (如果G公司)FRAP分析。用所示质粒转染CRL1601细胞。48小时后,细胞在胆固醇消耗培养基中培养60分钟,以去除胆固醇。然后将细胞保存在不含环糊精的胆固醇消耗介质中,并进行FRAP实验。每个样品中的NPC1L1-EGFP在PM上的指定区域进行漂白,并监测NPC1L1/EGFP的荧光恢复(G公司)并量化(如果). 误差条表示标准偏差(n个≥20).
图2。
图2。
击倒鱼群蛋白会损害NPC1L1介导的胆固醇摄取。(A类B类)用Q-PCR和免疫印迹(IB)测定船队的击倒效率。分别用指示的siRNA转染CRL1601–NPC1L1-EGFP细胞。96 h后,进行Q-PCR检测flotillin-1和flotillin-2的表达水平(A类)或收获细胞进行IB(B类). 误差线代表三个实验的标准偏差。Ctr,对照;船队,船队;Tnr,转铁蛋白受体。(C类如果)磷脂是NPC1L1-EGFP和胆固醇内化所必需的。如图1所示,CRL1601–转染有所示siRNAs的NPC1L1-EGFP细胞在胆固醇耗尽后补充胆固醇60分钟A类固定细胞,用filipin染色,并用双光子共聚焦显微镜检查。(比例尺:10μm)()细胞内定位NPC1L1和胆固醇的定量C类误差条代表标准偏差(n个≥100). (E类)CRL1601–NPC1L1-EGFP细胞转染了指示的siRNAs并去除了胆固醇,如C类然后在指定的时间段内用胆固醇补充细胞,并进行表面生物素化实验以分析NPC1L1的内吞作用。代表,胆固醇补充。(如果)如图1所示,CRL1601–转染有所示siRNAs的NPC1L1-EGFP细胞在60分钟(时间点0)内去除胆固醇,然后在60分钟内补充胆固醇A类测量时间点0(Chol#1)和60(Chol#2)的胆固醇水平。净胆固醇摄取量是通过从胆固醇#2中减去胆固醇#1来计算的。误差线代表三个实验的标准偏差。
图3。
图3。
腺病毒介导的小鼠肝脏中flotillins的敲除影响NPC1L1介导的胆汁胆固醇重吸收和血脂水平。用表达NPC1L1-EGFP的腺病毒(Ad)感染8周龄雄性(每组5只)小鼠(A类)或腺病毒的指示组合(B类L(左)). 四天后,不同的组织(A类)或肝脏(B类)收集并进行免疫印迹(IB)分析。船队,船队。用兔多克隆抗Mrp2抗体对肝脏冰冻切片进行染色,并用共焦显微镜进行检查(C类). (比例尺:10μm)胆汁胆固醇(胆固醇)(),磷脂(PL)(E类),和胆汁酸(BA)(如果)进行了测量。肝胆固醇(G公司)和PL(H(H))进行了分析。血浆总胆固醇()、甘油三酯(TG)(J),低密度脂蛋白胆固醇(K)、和HDL-c(L(左))已确定。使用双向方差分析[Tukey的HSD(诚实显著差异)后验]进行统计分析***第页 < 0.0001, **第页 < 0.01, *第页 < 0.05. 误差线代表标准偏差(n个 = 5).
图4。
图4。
在蔗糖梯度超速离心试验中,NPC1L1增加了低密度脂蛋白(LDF)中flotillins和胆固醇的分布。(A类)NPCL1-EGFP、Flotillin-1-RFP和胆固醇的凝胶化。在CRL1601细胞中共转染Flotillin-1-RFP和NPC1L1-EGFP质粒。48小时后,细胞内胆固醇耗尽,随后补充胆固醇,如图1所示A类然后固定细胞,用filipin染色,并用双光子共聚焦显微镜检查。(比例尺:10μm)(B类G公司)蔗糖梯度超速离心分析。(B类)CRL1601(对照)和CRL1601-NPC1L1-EGFP细胞在胆固醇耗尽后补充胆固醇,如图1所示A类纯化血浆内吞膜并进行免疫印迹(IB)检测。T、 总细胞裂解物;M、 膜分数。T、 总量;M、 膜组分;浮标-1,浮标-1;CREB、c-AMP反应元件结合;转铁蛋白受体;内质网。(C类)纯化的P/E膜进行蔗糖梯度超速离心。用IB分析每个组分中的指示蛋白,用斑点杂交检测GM1。()LDF中的蛋白质和GM1被量化为相对于总量。误差线代表三个实验的标准偏差。(E类G公司)胆固醇(E类),个(如果)和SM(G公司)测定了每个组分的含量。(H(H))LDF中胆固醇、PC、SM和GM1的增加倍。使用公式(脂质)计算增加倍数CRL1601–NPC1L1-EGFP-脂质邮编1601)/脂质CRL1601型误差条表示三个实验的标准偏差。控制中心。
图5。
图5。
依泽替米贝通过分离NPC1L1和浮子蛋白之间的结合来抑制富含胆固醇的膜微结构域的形成。(A类)Ezetimibe分离培养细胞中NPC1L1和flotillins之间的联系。将胆固醇耗尽的CRL1601–NPC1L1-EGFP细胞在不使用或使用依泽替米贝的情况下培养,并补充胆固醇30分钟。IP采用抗EGFP偶联琼脂糖进行。用所示抗体进行免疫印迹(IB)。Ctr,对照;μ2,AP2复合亚基μ2;船队,船队;转铁蛋白受体;代表,补充。(B类)依泽替米贝分解小鼠肠道中的NPC1L1–flotillins复合物。每天用悬浮在0.5%甲基纤维素或甲基纤维素(对照)中的10 mg/kg依泽替米贝灌胃8周龄C57/B6雄性小鼠3天。在第四天,即用依泽替米贝灌胃2小时后,处死小鼠并收集小肠粘膜。纯化膜组分并在含有2%洋地黄素的IP缓冲液中溶解,然后高速离心丢弃碎片。上清液与5μg免疫纯化抗NPC1L1抗体孵育1h。然后添加蛋白A琼脂糖,并在4摄氏度。用含有0.5%洋地黄素的IP缓冲液洗涤琼脂糖五次,然后进行IB。(C类)FRAP分析。用所示质粒转染CRL1601细胞。转染后(48小时),在不使用或使用依泽替米贝的情况下处理细胞,并去除胆固醇60分钟。然后在PM上的指定区域对每个样品的NPC1L1-EGFP进行漂白,并监测NPC1L1/EGFP的荧光恢复()并量化(C类). 误差线代表标准偏差(n个≥20). (E类G公司)依泽替米贝可抑制富含胆固醇的膜微结构域的形成。不使用或使用依折麦布处理胆固醇耗尽的CRL1601–NPC1L1-EGFP细胞,并补充胆固醇。进行蔗糖梯度超速离心。收集部分并进行IB–斑点杂交(E类)和胆固醇测定(如果). 定量LDF中蛋白质和GM1的相对数量(G公司). 误差线代表三个实验的标准偏差。

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    1. Davis H-R,Jr,Altmann S-W.Niemann-Pick C1 Like 1(NPC1L1)是一种肠道固醇转运体。Biochim生物物理学报。2009;1791:679–683.-公共医学
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