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.2010年7月15日;6(7):e1000994。
doi:10.1371/journal.ppat.1000994。

水疱性口炎病毒脱衣过程中基质蛋白和核衣壳转运的时空分析

附属公司

水疱性口炎病毒脱衣过程中基质蛋白和核衣壳转运的时空分析

乍得E沼泽等。 公共科学图书馆病理学. .

摘要

为了研究病毒脱膜过程中VSV的进入和传入基质(M)蛋白的命运,我们使用了编码M蛋白的重组病毒,该M蛋白带有C末端四胱氨酸标签,可以使用双砷(Lumio)化合物进行荧光标记。我们发现脱膜在内吞途径的早期发生,并被显性阴性(DN)Rab5的表达抑制,但不被DN-Rab7或DN-Rab11抑制。解包,定义为核衣壳与M蛋白的分离,发生在进入后15至20分钟之间,不需要微管或完整的肌动蛋白细胞骨架。出乎意料的是,大部分M蛋白在脱膜后仍然与内胚体膜相关,最终被转运到回收的内胚体。另一小部分但很重要的M分布在核孔复合体中,也不依赖微管或聚合肌动蛋白。高分辨率共焦显微照片的荧光定量显示,膜融合后,M蛋白在内胚层膜上扩散,同时Lumio标记的荧光也随之增加,这是RNP释放到细胞质后不久发生的。这些数据支持一种新的VSV脱膜模型,即膜融合后复合物释放到细胞质中后,RNP从M释放出来,而不是M蛋白从RNP中分离出来。

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数字

图1
图1。DN-Rab表达对VSV感染的影响。
用表达DN或wt-Rab-eGFP蛋白的质粒转染细胞,并在转染后18小时感染rVSV-wt或流感病毒。细胞在感染后8小时固定、渗透并染色以检测VSV N蛋白或流感NP。(A) 荧光和亮场显微照片显示DN-Rab5(顶部面板)、DN-Rab7(中间面板)和DN-Rab11(底部面板)对VSV感染的影响。箭头标记表达Rab-eGFP蛋白的细胞。(B) 通过测定也感染了VSV或流感病毒的Rab阳性细胞的数量来量化病毒感染的抑制作用。使用152个细胞(Rab5)、153个细胞(Rab7)或156个细胞(Rab11)的Student t检验(*=p<0.002)确定对VSV感染影响的统计学显著性。
图2
图2。表面结合的Tfn-TR和rVSV-MLG的胞吞作用。
rVSV-MLG和Tfn-TR在4°C下与细胞结合90分钟,细胞立即用冰镇3%多聚甲醛(t-0)固定(顶部面板),或用酸性去铁胺处理(中部面板),从细胞表面(t-0,AW)剥离Tfn-TR,然后固定,或(底部面板)将接种物替换为37°C培养基加热2分钟,然后添加冰镇PBS快速冷却,然后在冰上清洗酸脱铁胺。酸洗后,将细胞加热至37°C,再培养3分钟(t-5,AW),然后在加热阶段用LSCM进行检查,但不固定。棒材=5µm。DIC=差分干涉对比度。
图3
图3。M蛋白在活细胞中的脱膜和分布。
细胞在4°C下接种rVSV-MLG和Tfn-TR 90分钟,然后立即用冰镇3%多聚甲醛(t-0)固定或通过添加37°C培养基快速加热,并由LSCM在指定时间在加热台上进行检查,无需固定,每个时间点使用单独的35mm玻璃底皿,以减少光漂白造成的信号损失。棒材=10µm。箭头表示MLG向NPC本地化。
图4
图4。MLG在核膜上的定位。
(A) 用巴非霉素A1(Baf)预处理BHK细胞,然后将rVSV-MLG和Tfn-TR在含有Baf的冷培养基中与细胞结合90分钟。取下接种物,将细胞在37°C的含有Baf的培养基中培养150分钟。细胞通过LSCM成像,如图3所示。棒材=10µm。(B) 细胞在NH存在下感染rVSV-MLG4Cl作用90分钟,使病毒在内体中积聚,然后通过在无NH的培养基中培养开始进入4氯,但含有环己酰亚胺,以防止新的病毒蛋白合成。将细胞固定在t-0(上图)和t-60(下图),使用罗丹明缀合的抗-MmAb(红色)和用Alexa Fluor-647(蓝色)标记的Nup62抗体对M蛋白进行染色,并通过LSCM进行检查。白色箭头表示MLG在核膜上的定位。请注意,M单抗没有检测到定位于核膜的M蛋白(中间面板,黄色箭头)。棒材=2µm。
图5
图5。细胞松弛素D或诺康唑存在时MLG的分布。
BHK细胞在NH存在下感染rVSV-MLG4Cl如图4B所示。NH前加入细胞骨架抑制剂30分钟4Cl冲洗和抑制剂保留在冲洗后培养基中,直到60分钟后细胞固定。MLG、Nup62和肌动蛋白(A)或微管蛋白(B)在没有(顶部面板)或(底部面板)细胞骨架抑制剂的情况下的分布。箭头表示核膜定位。使用Canvas 11软件调整所有图像的亮度级别,以在转换为灰度后最大化MLG信号。棒材=10µm。
图6
图6。利用标记物对MLG进行染色,以回收内体。
如图4B所示,进行同步融合分析,将细胞固定在t-60处,对(A)LAMP-1、(B)甘露糖-6-磷酸受体、(C)Tfn-TR或(D)Rab11进行染色,然后用LSCM检查(Bars=10µm)。合并图像的右上角显示了来自两个独立实验的大约20个单个细胞的MLG与指示标记的共定位百分比。
图7
图7。从MLG-内体中分离RNP的动力学。
(A) 如图3所示,rVSV-MLG在低温下与细胞结合,但省略了Tfn-TR。在指定的时间固定细胞,使其透化,并通过使用与Alexa Fluor-568缀合的N mAb对N蛋白进行染色来检测RNP。LSCM使用相同的探测器、偏移和增益设置收集图像。棒材=10µm。(B) (A)中图像的RNP与MLG的彩色化,作为进入后时间的函数。通过Student t检验(n=9个细胞)确定显著性。(C) 在Adobe Photoshop中调整了来自(A)的t-5和t-60图像的红色和绿色通道电平,以提供类似的红色和绿光强度,这表明在t-5时间点,LSM软件检测到的MLG与RNP的共定位效果更好。
图8
图8。病毒进入过程中RNP和M蛋白的细胞分离和分布分析。
将rVSV-wt在放线菌酮存在下的低温下与细胞结合90分钟,以防止新的蛋白质合成,取出接种物并清洗细胞,然后立即从培养皿中取出(t-0)或加热至37°C,然后在指定的时间收获进行分馏。使用多克隆抗VSV血清对组分进行免疫印迹分析。免疫印迹的相关区域如图所示。NV(无病毒)表明细胞被模拟感染并在t-0收获。印迹下方的图表显示了每个组分中N或M蛋白的定量。(A) 在P16(质膜相关病毒)和NDG颗粒(耐洗涤剂核衣壳)组分中检测到N蛋白。输入后的时间显示在免疫印迹上方。VSV N是一条含有纯化病毒的通道。(B) 在S16(质膜和线粒体膜)和NDG上清液(内膜和核膜)部分检测到M蛋白。NV(无病毒)模拟感染细胞。VSV M是含有纯化病毒的通道。(C) 这四个组分用针对所示细胞标记物的抗体进行检测。
图9
图9。诺康唑存在下内体RNP的释放和病毒蛋白的合成。
NH后t-0(A)和t-120(B和C)接种rVSV-MLG的细胞的共焦图像4在环己酰亚胺和诺卡唑(B)或仅在诺卡唑中氯洗脱,并使用与Alexa Fluor-568偶联的N单克隆抗体对VSV N蛋白进行染色。使用LSM软件3.2版中的共定位功能,对50个单个细胞的共定位量进行量化。与MLG共定位的N蛋白百分比表示为t-0和t-120(N=50个细胞)。棒材=5µm。
图10
图10。病毒进入和脱膜期间MLG的时空分布。
如图4B所示,使用rVSV-MLG(A)或“秃顶”ΔG-MLG(B)进行同步进入分析,并在添加37°C培养基15分钟后对细胞成像。使用LSM软件的“裁剪”功能将具有高浓度内体的区域放大到500倍,以显示含有MLG和Tfn-TR的胞内囊泡。箭头显示了rVSV-MLG感染细胞中,MLG在Tfn-TR阳性内体中的不对称分布。棒材=5µm。(C) 入场后150分钟MLG分发。(D) 使用蔡司LSM510软件3.2版的Profile函数测量了类似于图3所示的活细胞实验中发现的Tfn-TR内体(n=30内体)上的MLG“斑块”的大小,并绘制了其随时间变化的曲线图。
图11
图11。VSV进入和取消计数事件的时间线。
基于rVSV-MLG中MLG和RNP的时空成像分析,建立了VSV进入和脱膜模型。分析中的相关数字显示在括号中。观察到的事件时间以红色字体显示。在该模型中,病毒粒子附着在细胞表面,以依赖Rab5的方式被内吞并运输到早期内体,低pH值会导致构象变化G,导致病毒粒子内部酸化(a),随后病毒膜和内体膜融合(B)。病毒内部酸化会影响M蛋白,破坏膜相关M(带橙色边界的绿色圆圈)和浓缩RNP之间的相互作用,导致RNP在膜融合(C)后释放到细胞质中。M的大部分仍然与内胚体相关,但在RNP释放(D)后开始扩散到内胚体膜。较小部分的M释放到胞浆中,以微管和肌动蛋白非依赖性的方式到达NPC(E)。

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引用人

工具书类

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