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.2009年12月16日;28(24):3820-31.
doi:10.1038/emboj.2009.365。

Tudor和dPRMT5在果蝇种系piRNA加工途径中的功能参与

附属公司

Tudor和dPRMT5在果蝇种系piRNA加工途径中的功能参与

Kazumichi M Nishida公司等人。 欧洲工商管理硕士J. .

摘要

在果蝇中,PIWI蛋白、茄子(Aub)、AGO3和PIWI在种系中表达,并通过与PIWI相互作用RNA(piRNAs)结合来沉默转座子。最近的研究表明,PIWI蛋白含有对称的二甲基精氨酸(sDMA),dPRMT5/Capsuleen/DART5是修饰酶。在这里,我们表明Tudor(Tud)是Tud结构域蛋白之一,通过其sDMA修饰与Aub和AGO3结合,并且这三种蛋白形成异聚复合物。在这些复合物中检测到piRNA前体样分子。Aub和AGO3的表达水平及其sDMA修饰程度未因tud突变而改变。然而,与Aub和AGO3相关的转座子衍生piRNAs的数量因tud突变而改变,而Aub和AGO3上的小RNA总量增加。dprmt5的缺失并没有改变Aub的稳定性,但削弱了其与Tud的结合,并降低了piRNA与Aub的结合。因此,在种系细胞中,piRNA由修饰PIWI蛋白的dPRMT5控制质量,与Tud紧密相关。

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利益冲突声明

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数字

图1
图1
Aub改性的LC-MS/MS分析。(A类)通过数据库搜索确定Aub肽。黄色背景的字母是搜索结果。绿色背景的表示经过修饰的氨基酸;其中,M、R和C分别表示蛋氨酸被氧化,精氨酸被sDMA氧化,半胱氨酸被氨基甲酰化。第一个蛋氨酸上的Ac表示该氨基酸是N-末端乙酰化的。(B类)Aub肽的MS光谱,从M1到R17(M1–R17;/z(z)=501.5413,理论值=501.541)。(C类)Aub肽M1–R17的ETD MS/MS光谱。片段中的离子质量与Aub肽中的C离子的质量很好地匹配,范围从丙氨酸10到甘氨酸16(A10-G16)A-2meR-G-2meR-G-R,其中“2meR”表示sDMA修饰的精氨酸。天冬酰胺2到异亮氨酸10(N2–L9)区域的裂解峰未指定。
图2
图2
Tud与sDMA-修饰Aub特别相关。(A类)使用对应于蛋氨酸1到天冬酰胺25(M1–N25)的Aub肽对卵巢裂解物进行下拉分析。肽序列如下图所示。“Aub肽”和“Aub-sDMA肽”分别在未经sDMA修饰的情况下和经过sDMA改性的情况下制备。红色的Rs表示sDMA修改的Rs。一种约280 kDa的显著蛋白质,与Aub-sDMA肽特异相关。MS分析显示该蛋白与Tud对应。(B类)与Aub肽相关的蛋白池中抗Tud抗体的Western blot分析(A类)证实了~280 kDa波段为Tud。两个蛋白池中均未检测到Spn-E。(C类)从wt和数字电源模块5使用抗Aub抗体的突变体。非免疫IgG(n.i.)用作阴性对照。然后用抗Tud、抗Aub和SYM11(一种特异识别sDMA修饰蛋白的抗体)检测免疫纯化复合物。Tud仅在从wt卵巢获得的Aub复合物中观察到。Aub输入数字电源模块5正如之前报道的那样,SYM11未检测到突变体(Kirino等人,2009年)。“输入”车道中标有星号的信号为背景信号。(D类)用抗Tud、抗Aub和抗AGO3抗体探测来自wt卵巢裂解物的抗Tud免疫纯化复合物。在复合物中同时检测到Aub和AGO3,这表明Tud与AGO3的sDMA依赖性结合。
图3
图3
Tud与AGO3的sDMA依赖性关联。(A类)合成了两种AGO3肽,AGO3-1和AGO3-2,分别对应于蛋氨酸1到赖氨酸25(M1–K25)和苏氨酸58到组氨酸82(T58–H82),分别带有和不带有sDMA修饰,并从卵巢裂解物中进行下拉分析,如图2A所示。红色的Rs表示那些经过sDMA修改的Rs。用抗Tud和抗Spn-E抗体探测所获得的蛋白质池。在使用Aub-sDMA和AGO3-2-sDMA而不是AGO3-1-sDMA肽的下拉池中检测到了Tud的信号,但没有检测到Spn-E的信号,这表明AGO3区域T58–H82是Tud的结合域。(B类)用抗Aub和抗AGO3抗体探测与Aub、Aub-sDMA、AGO3-2和AGO3-2-sDMA肽结合的蛋白质。这两种蛋白都用sDMA肽进行了特异性检测。这些结果表明Tud能够同时与Aub和AGO3结合形成异聚物。(C类)用抗Tud、抗Aub和抗AGO3抗体探测来自wt卵巢裂解物的抗AGO3-免疫纯化复合物。
图4
图4
Tud-Aub复合物中含有成熟的piRNA和piRNA前驱体样分子。(A类)使用抗Tud和抗Aub抗体从卵巢裂解物中提取免疫沉淀复合物,并用抗Tud抗体和抗Aub抗体进行检测。在进行western blot分析之前,将抗Aub免疫沉淀稀释为1:2.5、1:5和1:10。应注意,Aub复合物的~1:5稀释度使抗Tud和抗Aub免疫沉淀复合物中Aub的量相等。(B类)从抗Tud和抗Aub免疫沉淀复合物中分离的RNA分子用32P-标记的DNA寡核苷酸识别鲁奥piRNAs(左右面板分别为反义和正义)。虽然~1:5稀释的Aub复合物使两种复合物中的Aub数量相等,但较低水平的Aub鲁奥在抗Tud免疫沉淀物中检测到piRNAs(左图),这表明Aub虽然与Tud结合,但与低水平的piRNA相关。用正反义探针在抗Tud免疫沉淀物中观察到了piRNA前体样信号(表示为前piRNA样)鲁奥在Tud-或Aub-免疫沉淀复合物中未检测到piRNAs(右)。我们推测,Tud与Aub和AGO3的结合,通过sDMA修饰,将piRNA前体招募到复合物中,其机制类似于U snRNA招募到SMN-Sm蛋白复合物中。
图5
图5
的影响塔德卵巢Aub和AGO3上piRNA负载突变。(A类)来自wt的抗Aub(左)和抗AGO3(右)免疫沉淀物(声母)和图德用抗Tud、抗Aub、抗AGO3和SYM11(底部面板)探测突变卵巢。塔德突变没有改变Aub或AGO3的稳定性或sDMA修饰。(B类)与重量和重量中Aub(左)和AGO3(右)相关的小RNA塔德突变体被可视化32P-标记。通过western blot分析检查大约等量Aub(左)和AGO3(右)的免疫沉淀,如(A类). 与Aub和AGO3相关的小RNA总量塔德与wt卵巢相比,突变卵巢的大小分别是wt卵巢的两倍和四倍(这个计算是用三组单独的实验数据完成的)。
图6
图6
与Aub和AGO3相关的piRNAs的Northern blot分析。(A类)RNAs的Northern blot分析如图5B所示。DNA寡核苷酸探针鲁奥piRNA、roo#4 piRNA和HeT-A公司使用了piRNAs。尽管与Aub相关的小RNA总量塔德与wt卵巢(图5B)、roo#4和HeT-A公司-Aub复合体中衍生的piRNAs塔德与wt卵巢相比,突变卵巢的水平低得多。有趣的是,鲁奥观察到piRNA前体样信号在塔德变异卵巢。(B类)碱性处理的RNA探针(~200 nt)I型元件-衍生的piRNAs和DNA寡核苷酸DM297型-使用衍生的piRNA。(C类)用于1立方毫米-和DMRT1B公司-使用衍生的piRNAs。(D类)RNAs的Northern blot分析如图5B(右)所示。使用了一个识别piRNA的DNA寡核苷酸,即小卫星#1。在wt和塔德突变体。
图7
图7
损失数字电源模块5功能降低卵巢中piRNAs对Aub的负载。(A类)与重量和重量中Aub相关的小RNA数字电源模块5突变体被可视化32P-标签。通过western blot分析检查大约等量Aub的免疫沉淀(如图2C所示)。与Aub相关的小RNA总量数字电源模块5与wt卵巢相比,突变卵巢的数量大约减少了三倍(计算是用三组单独的实验数据完成的)。(B类)RNA的Northern blot分析如图所示(A类). 使用识别roo#4 piRNA的DNA寡核苷酸。信号在数字电源模块5变异车道。喜欢塔德,损失数字电源模块5功能似乎会导致异常piRNA加载到Aub上,但程度低于塔德突变体。(C类)免疫组织化学分析塔德数字电源模块5使用抗Aub和抗Tud抗体的突变卵子室。塔德突变体、Aub和Tud在哺乳细胞细微差别中的积累(箭头所示)严重受损,这两种蛋白质在细胞质中分布更均匀。在第10阶段数据处理器5塔德突变体,Aub在后极聚集到相似的程度;因此,Aub在后极的积累(箭头所示)并不完全取决于sDMA修改和与Tud的关联。Tud在后极堆积数字电源模块5如图所示,突变体被彻底废除vls公司变种(Anne和Mechler,2005)。

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引用人

工具书类

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