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.2009年9月18日;325(5947):1555-9.
doi:10.1126/science.1174229。 Epub 2009年8月6日。

葡萄糖剥夺对肿瘤细胞KRAS通路突变的影响

附属公司

葡萄糖剥夺对肿瘤细胞KRAS通路突变的影响

Jihye Yun先生等。 科学类. .

摘要

肿瘤进展是由基因突变驱动的,但对选择这些突变的环境条件知之甚少。通过研究仅在KRAS或BRAF基因突变状态上不同的成对结直肠癌细胞系的转录组,我们发现编码葡萄糖转运蛋白-1的GLUT1是KRAS或BRAF突变细胞中持续上调的三个基因之一。突变细胞表现出葡萄糖摄取和糖酵解增强,并在低血糖条件下存活,这些表型都需要GLUT1表达。相反,当具有野生型KRAS等位基因的细胞受到低葡萄糖环境时,很少有细胞存活。大多数存活细胞表达高水平的GLUT1,其中4%的存活细胞获得了父母中不存在的KRAS突变。糖酵解抑制剂3-溴丙酮酸优先抑制KRAS或BRAF突变细胞的生长。总之,这些数据表明,葡萄糖缺乏可以驱动人类肿瘤中KRAS通路突变的获得。

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数字

图1
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的表达式GLUT1公司在配对的等基因克隆中。()的表达式级别GLUT1公司通过实时PCR测定转录物,并将其归一化为β-肌动蛋白的转录物。每个面板都包括亲本系(Parent),其中包含突变和野生型等位基因KRAS公司BRAF公司,两个仅含突变等位基因的独立克隆(MUT1和MUT2)和两个仅含有野生型等位基因(WT1和WT2)的独立克隆。数据表示三次试验的平均值和SD。在所有病例中,MUT和WT克隆之间的差异具有统计学意义(P(P)<0.05,学生t检验)。(B类)通过免疫印迹法测定GLUT1膜相关蛋白水平的表达。+,K+-ATP酶是一种膜相关蛋白,用作负荷控制。
图1
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的表达式GLUT1公司在配对的等基因克隆中。()的表达式级别GLUT1公司通过实时PCR测定转录物,并将其归一化为β-肌动蛋白的转录物。每个面板都包括亲本系(Parent),其中包含突变和野生型等位基因KRAS公司BRAF公司,两个仅含突变等位基因的独立克隆(MUT1和MUT2)和两个仅含有野生型等位基因(WT1和WT2)的独立克隆。数据表示三次试验的平均值和SD。在所有病例中,MUT和WT克隆之间的差异具有统计学意义(P(P)<0.05,学生t检验)。(B类)通过免疫印迹法测定GLUT1膜相关蛋白水平的表达。+,K+-ATP酶是一种膜相关蛋白,用作负荷控制。
图2
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葡萄糖摄取和乳酸生成KRAS公司BRAF公司突变。()葡萄糖摄取,使用[H] 2-脱氧葡萄糖,归一化为总蛋白。MUT和WT克隆之间的差异具有统计学意义(P(P)<0.01,学生t检验)。(B类)乳酸产量根据细胞数量进行标准化。在所有病例中,MUT和WT克隆之间的差异具有统计学意义(P(P)<0.03,学生t检验)。数据表示三次试验的平均值和SD。
图2
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葡萄糖摄取和乳酸生成KRAS公司BRAF公司突变。()葡萄糖摄取量,使用[H] 2-脱氧葡萄糖,归一化为总蛋白。MUT和WT克隆之间的差异具有统计学意义(P(P)<0.01,学生t检验)。(B类)乳酸产量根据细胞数量进行标准化。在所有病例中,MUT和WT克隆之间的差异具有统计学意义(P(P)<0.03,学生t检验)。数据表示三次试验的平均值和SD。
图2
图2
葡萄糖摄取和乳酸生成KRAS公司BRAF公司突变。()葡萄糖摄取量,使用[H] 2-脱氧葡萄糖,归一化为总蛋白。MUT和WT克隆之间的差异具有统计学意义(P(P)<0.01,学生t检验)。(B类)乳酸产量根据细胞数量进行标准化。在所有病例中,MUT和WT克隆之间的差异具有统计学意义(P(P)<0.03,学生t检验)。数据代表了一式三份实验的平均值和标准差。
图3
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KRAS公司BRAF公司突变在低血糖条件下具有选择性生长优势。()将细胞置于低葡萄糖环境(0.5mM)中两天(RKO和VACO432)或四天(HCT116和DLD1),然后解离并接种在含有标准浓度葡萄糖(25mM)的培养基中。菌落计数标准化为在接受相同实验程序的细胞中获得的菌落计数,但标准葡萄糖水平被替换为低血糖。详见(7)。在所有病例中,MUT和WT克隆之间的差异具有统计学意义(P(P)<0.004,学生t检验)。(B类)MUT和WT克隆以指定的比例混合,并在含有0.5 mM葡萄糖的培养基中生长两天(RKO)或五天(DLD1)。将培养基替换为含有25 mM葡萄糖的培养基,并将细胞再培养10–16天。从存活的细胞中纯化RNAKRAS公司BRAF公司对基因进行PCR扩增和测序。序列色谱图中下划线位置的G和A核苷酸代表的wt和突变等位基因KRAS公司分别在DLD1细胞中。T和A核苷酸代表的wt和突变等位基因BRAF公司分别在RKO细胞中。(C类)DLD1细胞中突变体KRAS公司等位基因被靶向重组删除(KRAS公司(−/+)),在低葡萄糖(0.5 mM)中进行电镀。25-30天后,存活下来的少数克隆在标准葡萄糖(25 mM)中生长,并评估GLUT1表达和KRAS公司基因。含有突变等位基因的克隆KRAS公司(G12D、G13D或G13C),以及其中的克隆KRAS公司保持WT。作为对照,相同的细胞(KRAS公司(−/+))在含有25 mM葡萄糖的培养基中进行极限稀释,并对单个克隆进行GLUT1表达评估(“对照克隆”)。还包括用于这些实验的亲本细胞(DLD1,WT),以及它们的等基因对应物,其中WT而非突变等位基因被同源重组(DLD1,MUT)破坏。当收获用于通过免疫印迹法评估GLUT1表达时,所有克隆均在含有25 mM葡萄糖的培养基中生长至少20天。+,K+-ATP酶被用作负荷控制。图S10中提供了选择方案的示意图,(7)中提供了详细的方法。
图3
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KRAS公司BRAF公司突变在低血糖条件下具有选择性生长优势。()将细胞置于低葡萄糖环境(0.5 mM)中2天(RKO和VACO432)或4天(HCT116和DLD1),然后分离并置于含有标准葡萄糖浓度(25 mM)的培养基中。菌落计数标准化为在接受相同实验程序的细胞中获得的菌落计数,但标准葡萄糖水平被替换为低血糖。详见(7)。在所有病例中,MUT和WT克隆之间的差异具有统计学意义(P(P)<0.004,学生t检验)。(B类)MUT和WT克隆以指定的比例混合,并在含有0.5 mM葡萄糖的培养基中生长两天(RKO)或五天(DLD1)。将培养基替换为含有25 mM葡萄糖的培养基,并将细胞再培养10–16天。从存活的细胞中纯化RNAKRAS公司BRAF公司对基因进行PCR扩增和测序。测序色谱图中下划线位置的G和A核苷酸代表KRAS公司分别在DLD1细胞中。T和A核苷酸代表的wt和突变等位基因BRAF公司分别在RKO细胞中。(C类)DLD1细胞中突变体KRAS公司等位基因被靶向重组删除(KRAS公司(−/+)),在低葡萄糖(0.5 mM)中进行电镀。25-30天后,存活下来的少数克隆在标准葡萄糖(25 mM)中生长,并评估GLUT1表达和KRAS公司基因。含有突变等位基因的克隆KRAS公司(G12D、G13D或G13C),以及其中的克隆KRAS公司保持WT。作为对照,相同的细胞(KRAS公司(−/+))在含有25 mM葡萄糖的培养基中进行极限稀释,并对单个克隆进行GLUT1表达评估(“对照克隆”)。还包括用于这些实验的亲本细胞(DLD1,WT),以及它们的等基因对应物,其中WT而非突变等位基因被同源重组(DLD1,MUT)破坏。当收获用于通过免疫印迹法评估GLUT1表达时,所有克隆均在含有25 mM葡萄糖的培养基中生长至少20天。+,K+-ATP酶作为负载对照。图S10中提供了选择方案的示意图,(7)中提供了详细的方法。
图4
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糖酵解抑制剂3-BrPA对突变细胞具有选择性毒性KRAS公司BRAF公司等位基因。()3-BrPA治疗(110μM)三天后评估菌落形成。将菌落计数归一化为从未接触3-BrPA的细胞中获得的菌落计数。在所有病例中,MUT和WT克隆之间的差异具有统计学意义(P(P)<0.008,学生t检验)。(B类)HCT116皮下肿瘤小鼠(KRAS公司:G13D/+)或VACO432(BRAF公司:V600E/+)细胞每天腹腔注射3-BrPA或磷酸盐缓冲液(PBS),持续两周。“n”表示每组使用的小鼠数量。点和误差条代表每组小鼠的平均值和SD。星号表示PBS组与3-BrPA组肿瘤大小存在显著差异的时间(P(P)<0.05,学生t检验)。
图4
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糖酵解抑制剂3-BrPA对突变细胞具有选择性毒性KRAS公司BRAF公司等位基因。()3-BrPA治疗(110μM)三天后评估菌落形成。将集落计数标准化为从经过相同程序而未暴露于3-BrPA的细胞中获得的集落计数。在所有病例中,MUT和WT克隆之间的差异具有统计学意义(P(P)<0.008,学生t检验)。(B类)HCT116皮下肿瘤小鼠(KRAS公司:G13D/+)或VACO432(BRAF公司:V600E/+)细胞每天腹腔注射3-BrPA或磷酸盐缓冲液(PBS),持续两周。“n”表示每组使用的小鼠数量。点和误差条代表每组小鼠的平均值和SD。星号表示PBS组与3-BrPA组肿瘤大小存在显著差异的时间(P(P)<0.05,学生t检验)。

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