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.2009年6月19日;284(25):16939-16947.
doi:10.1074/jbc。M808166200。 Epub 2009年4月21日。

氧化应激使视网膜色素上皮细胞易受补体介导损伤

附属公司

氧化应激使视网膜色素上皮细胞易受补体介导损伤

约书亚·M·瑟曼等。 生物化学杂志. .

摘要

补体替代途径的非受控激活被认为与年龄相关性黄斑变性(AMD)有关。替代途径在液相持续激活,组织表面需要持续的补体抑制,以防止自发的自体组织损伤。在这里,我们研究了氧化应激对永生化人视网膜色素上皮细胞(ARPE-19)调节细胞表面补体激活能力的影响。经皮电阻(TER)测定发现,用H(2)O(2)(诱导氧化应激)和补体充足的血清联合治疗可破坏稳定ARPE-19单层的屏障功能。这两种治疗都没有任何效果。TER降低与C3的细胞表面沉积增加相关,可通过使用C7-缺失血清(末端补体途径的重要组成部分)来预防。H(2)O(2)治疗降低了补体抑制剂DAF、CD55和CD59的表面表达,并通过血清中的因子H削弱了细胞表面的调节。用H(2)O(2)和血清联合处理单层细胞可诱导血管表皮生长因子(VEGF)的极化分泌。两者都可以通过使用替代途径抑制剂或阻断VEGF受体1/2信号来减弱VEGF的分泌和TER的减少。综上所述,这些研究表明,氧化应激降低了ARPE-19细胞表面补体的调节,增加了补体的激活。这种亚细胞激活导致VEGF释放,从而介导细胞单层的破坏。这些发现将氧化应激、补体激活和顶端VEGF释放联系起来,这些都与AMD的发病机制有关。

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图1。
图1。
氧化应激与正常人血清结合,由于补体激活而破坏ARPE-19单层。生长ARPE-19细胞,直到获得稳定的TER。A类,用H处理细胞22、血清、H22和热灭活血清,或H22和血清。虽然用H治疗22或单独使用血清并没有显著降低TER,与H联合治疗22血清确实导致TER恶化,在4小时内达到最大效果22与单独的血清相比,血清导致TER显著下降22和HI血清,或H22当采用费希尔保护最小显著性差异(PLSD)进行分析时,单独使用。B类,用H处理细胞22和血清或H22和C7缺陷血清持续4小时。不能形成MAC的C7缺陷血清没有导致TER下降。重组C7恢复了血清降低TER的能力。C类,当细胞暴露于H22和血清在其根尖上放置4小时(Ap公司)表面上,TER的下降幅度比暴露在基底层时更大(文学士)表面。D类在任何治疗条件下均未观察到ARPE-19细胞的TUNEL阳性染色,这表明这些治疗引起的TER下降不是由于细胞毒性。暴露于5 mH(H)2224小时作为TUNEL的阳性对照。数据表示为平均值±S.D(误差线)的面板A–C(n个=每种情况3–6);*,第页< 0.05; **,第页< 0.01.
图2。
图2。
氧化应激增加ARPE-19细胞表面的补体激活。极化ARPE-19细胞用1mH(H)22流式细胞术检测氧化应激和表面C3b/d。A类,用C3多克隆抗体对未处理的细胞进行染色(填满)高于同型对照组(虚线). 用H处理的细胞22表明C3b/d的表面水平较高(实线)而不是未经处理的细胞。B类、ARPE-19细胞暴露于血清(实线)经证明,表面C3b/d大于未经处理的对照(填满),但氧化应激ARPE细胞(虚线)与未暴露于H的细胞相比,暴露于血清后的表面C3b/d更大22。显示了至少三个独立实验的代表性结果,并对数据进行门控,以仅显示活细胞的结果。C类,用不同剂量的h处理细胞1小时22清洗,然后暴露于血清中。上清液中C3的蛋白质印迹分析证实,暴露于氧化应激细胞后,血清中完整的C3(~185kDa)被更大程度地消耗。当用对照血清探测时,未发现低分子量条带,可能代表C3裂解片段或抗C3抗体与上清液中其他蛋白质的非特异性结合。D类,ELISA检测细胞上清液中C5b-9水平证实,当氧化应激细胞暴露于血清中时,补体被激活,MAC形成,而当未经处理的细胞暴露于血浆中时,则没有。*,第页< 0.05.
图3。
图3。
氧化应激降低ARPE-19细胞DAF和CD59的表面表达。DAF、MCP和CD59的ARPE-19细胞染色(填满)与同型对照染色相比,所有三种膜结合抑制剂的表面表达均得到证实(灰色线条). 选通仅用于检测活细胞。A类,用1m剂量处理细胞1h后,DAF的表面表达降低H(H)22.B类,MCP的表面表达没有改变。C类,CD59的表面表达在未分化细胞中呈双峰分布,高表达细胞的表面水平在H处理后降低22。显示了至少三个独立实验的代表性结果。D类与未操作细胞的表面水平相比,氧化应激细胞的CD59和DAF水平分别降至61±4%和70±3%。E类,用H处理细胞22对血清、表面DAF和C3b/d进行染色。表面DAF水平低的细胞比DAF水平高的细胞沉积C3b/d更多(n个=3用于D类E类); *,第页< 0.001.
图4。
图4。
DAF和CD59在ARPE-19细胞的顶端和基底外侧表面表达。细胞在盖玻片上生长汇合。然后对其进行渗透和染色以进行DAF(A类),CD59(B类)和Na+K(K)+-ATP酶(C类). DAF和CD59的最佳焦点视图显示了其在质膜中的顶端和基底外侧定位,三维重建证实了DAF和CD59与Na相比的顶端和基外侧浓度+K(K)+-ATP酶,已知其仅在顶端富集。
图5。
图5。
血清中的H因子限制了未经处理的ARPE-19细胞表面的补体激活,但不限制氧化应激细胞的补体活化。将ARPE-19细胞暴露于10%的血清中,添加或不添加50μg/ml的主要阴性形式的因子H(rH-19–20). 因子H是一种在正常血清中高浓度发现的替代途径抑制剂。A类当将rH-19-20添加到细胞中时,如果将其标准化为仅用血清获得的值,则会在细胞表面造成更大的沉积,这表明当细胞暴露于完整的补体系统时,因子H限制了细胞表面的补体激活。B类,当用H处理细胞时22与单独血清相比,血清暴露导致C3b/d沉积增加2倍以上,但反应中添加rH-19-20并未导致表面C3b/d染色进一步显著增加。数据表示为平均值±S.D(误差线),n个=每种情况下为3。
图6。
图6。
ARPE-19细胞上的补体激活可诱导VEGF的分泌,进而破坏屏障功能。ARPE-19细胞作为单层生长,直到获得稳定的TER。A类,在根尖处理4小时后,去除根尖和基底上清液并分析VEGF含量。在基线检查时,VEGF的分泌呈两极分化,基底室的分泌增加。H(H)22和血清单独对VEGF分泌没有一致的影响,而H22+血清共同导致VEGF释放显著增加。与基底分泌物相比,这种增加表现出相反的极性,向心尖室的分泌物增加。H(H)22+血清介导的VEGF释放可以通过阻断补体的替代途径(CR2-fH)或VEGF受体信号传导(SU5416)来抑制。当C7缺失血清用于氧化应激细胞时,VEGF不会分泌,但当C7耗尽血清与纯化的C7重新组合时,会分泌VEGF,这表明MAC的形成与这些细胞分泌VEGF.有关。数据表示为平均值±S.D(n个=每种情况3–6)。B类C类,用H治疗224小时后,血清导致TER降低。联合应用CR2-fH(一种替代途径抑制剂),以及添加VEGF受体1/2拮抗剂(SU5416),可以阻止TER下降。统计比较指无治疗H(H)22+血清;和C7-缺失血清去C7-血清加纯化C7.*,第页< 0.05; **,第页< 0.01.

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