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.2009年3月3日;106(9):3207-12.
doi:10.1073/pnas.0808042106。 Epub 2009年2月6日。

p53通过诱导肿瘤抑制因子miR-145抑制c-Myc

附属公司

p53通过诱导肿瘤抑制因子miR-145抑制c-Myc

莫希特·萨赫德瓦等。 美国国家科学院程序. .

摘要

抑癌基因p53除了激活许多其他基因外,还负调控许多基因,包括原癌基因c-Myc。p53介导的c-Myc抑制的一种机制可能涉及转录调控。然而,尚不清楚microRNAs(miRNAs)是否在p53介导的c-Myc转录后调控中发挥作用。在这项研究中,我们发现一种假定的肿瘤抑制因子miR-145通过磷酸肌醇-3激酶(PI-3K)/Akt和p53途径表达。重要的是,p53通过与miR-145启动子中潜在的p53反应元件(p53RE)相互作用,在转录上诱导miR-145的表达。我们进一步证明c-Myc是miR-145的直接靶点。虽然miR-145沉默了c-Myc的表达,但抗miR-145-增强了其表达。miR-145对c-Myc的这种特异性沉默至少部分解释了miR-145-介导的体内外肿瘤细胞生长抑制。最后,抗miR-145阻断miR-145-能够逆转p53介导的c-Myc抑制。总之,这些结果确定了miR-145在p53对c-Myc转录后调控中的作用,并表明,作为p53调控网络的一个新成员,miR-145在该基因调控网络中提供了p53和c-Myc之间的直接联系。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。

数字

图1。
图1。
的表达式miR-145型通过Akt和p53途径。(A类)的表达式miR-145型分别在匹配的乳腺和结肠肿瘤标本中。在乳腺肿瘤组织中miR-145型占正常组织的31%;在结肠肿瘤组织中,相应数量为19%。(B类)诱导miR-145型通过血清饥饿。细胞(HCT-116和HCT-8)在含有10%或不含FBS的培养基中生长24小时(C类)诱导miR-145型PI-3K抑制剂LY294002。用50μM LY294002处理HCT-116细胞16小时(D类)显性阴性Akt(Akt-DN)诱导miR-145型表达式。将HCT-116细胞单独转染载体(pCMV)或Akt-DN 24 hB–D类是3个单独实验的平均值±SE,并归一化为各自的控制值1.**,P(P)< 0.01.
图2。
图2。
诱导miR-145型通过p53。(A类)用腺病毒pAd-GFP(Vector)或pAd-GFP-p53(p53)转导MCF-7细胞24小时,然后收获用于提取蛋白质或RNA。插入,检测p53表达。(B类)HCT-116(p53−/−)或HCT-114(+/+)用Doxo以0.5或1.0μg/ml处理16 h。分别采集细胞以获取蛋白质或RNA。p21用作阳性对照。(C类)用载体(pCMV)或突变型p53(R175H)瞬时转染MCF-7细胞并培养24小时。插入突变型p5 3检测。中的值A类,B类、和C类是3个单独实验的平均值±SE,并归一化为各自的控制值1.**,P(P)< 0.01.
图3。
图3。
p53诱导miR-145型与p53RE-2结合的启动子活性。(A类)假设的示意性描述miR-145型与p53RE一致意见相比,具有2个潜在p53反应元件的启动子p53RE-1和p53RE-2以及突变的p53RE2(p53RE-2-mut),其中R=A+G;W=A+T和Y=C+T。小写字母表示偏离共识。保守核苷酸C和G以红色突出显示。两个半位点之间的序列以蓝色表示。在p53RE-2-mut中,保守的C和G分别被T和A取代。(B类)和C,分别用pMIR-145p-Luc-1在NIH/3T3和MCF-7细胞中进行荧光素酶分析。pMIR-205p-Luc用作阴性对照。(v(v))向量。(D类)删除和定点突变分析确定了miR-145型p53介导的萤光素酶活性的诱导中的p53RE-2。(E类)ChIP分析显示p53与p53RE-2特异性相互作用。p21作为阳性对照。无p53结合位点的人钙激活氯通道蛋白2基因上游区域的序列作为阴性对照。145-p,mir-145型发起人;p21-p,p21启动子。中的值B–D类是3个单独实验的平均值±SE,并归一化为各自的控制值1(B类C类)或100%(D类). **,P(P)< 0.01.
图4。
图4。
miR-145型直接靶向c-Myc并抑制其表达。(A类)Western blot显示c-Myc蛋白被miR-145型但不是突变体miR-145型(miR-145型-公吨)。细胞单独转染载体或miR-145型miR-145型-mt处理24小时后采集进行蛋白质提取。(B类)封锁miR-145型通过反-145百万兰特(抗-145)导致c-Myc上调。HCT-116细胞被打乱的寡核苷酸或抗-miR-145型24小时后收获寡核苷酸,用于提取蛋白质或RNA。将相同的转染细胞分别用于Western blot或TaqMan实时PCR。(C类)c-Myc下游靶基因eIF4E和CDK4的抑制作用miR-145HCT-116细胞中。(D类)的影响miR-145型细胞周期。用载体控制或miR-145型表达式向量。两天后,收集细胞进行细胞周期分析。(E类)假定的miR-145型c-Myc 3′-UTR和突变体中的结合位点miR-145其中种子序列发生突变。(F类)的影响miR-145型或突变型miR-145型关于Luc-c-Myc-UTR和Luc-c-My-UTR-d的荧光素酶活性miR-145型绑定站点已删除。对于荧光素酶分析,293T细胞转染载体或miR-145型表达载体转染后2天收集细胞进行裂解。F中的值是3个单独实验的平均值±SE,并归一化为各自的控制值100%。**,P<0.01。
图5。
图5。
的作用miR-145型p53介导的c-Myc抑制。(A类)野生型p53和突变型p53(R175H)以及Doxo诱导的p53对c-Myc表达的影响。用p53转导HCT-116细胞或用突变型p53转染24小时,然后收获用于提取蛋白质。对于内源性p53的诱导,实验的执行与图2相同B类使用1μg/ml Doxo。(B类)用0.5或1.0μg/ml的Doxo处理HCT-116(p53−/−)和HCT-116(p53+/+)细胞16小时。(C类)抗p53介导的c-Myc抑制的阻断作用-miR-145型HCT-116(p53−/−)和HCT-116(p53+/+)细胞首先转染抗-miR-145型或控制寡核苷酸。10小时后,在提取蛋白质或RNA之前,用1.0μg/ml的Doxo处理细胞16小时-miR-21型作为额外的阴性对照。不含Doxo的空白作为c-Myc的基线,用于比较Doxo治疗组和Doxo对照组,或-miR-145型和阴性对照(加扰寡糖或抗-miR-21型)。通过相同的无寡核苷酸转染实验进行模拟对照,以证实Doxo/p53对c-Myc的抑制是特异性的。底部:相对c-Myc水平是3个单独实验的平均值±SE,并标准化为100%的无Doxo对照。反的值-miR-145型HCT-116(p53+/+)细胞中的lane为92%。**,P(P)与空白对照组相比<0.01。(D类)c-Myc-siRNA和/或抗-miR-145型c-Myc、p21和Bax。用打乱寡核苷酸或c-Myc-siRNA转染HCT-116细胞24小时,然后用或不用Doxo(0.5μg/ml)处理16小时赖特在不同的处理中,暴露时间比左侧1长,以检测不同数量的c-Myc蛋白。(E类)miR-145型也抑制p53−/−细胞中的c-Myc。

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引用人

参考文献

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