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.2008年12月;118(12):3930-42.
doi:10.1172/JCI36843。 Epub 2008年11月20日。

靶向乳酸燃料呼吸选择性杀伤小鼠缺氧肿瘤细胞

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靶向乳酸燃料呼吸选择性杀伤小鼠缺氧肿瘤细胞

皮埃尔·松福等。 临床研究杂志. 2008年12月.

摘要

肿瘤包含氧合区和缺氧区,因此肿瘤细胞群是异质的。低氧肿瘤细胞主要利用葡萄糖产生糖酵解能量并释放乳酸,从而产生反映肿瘤中氧梯度的乳酸梯度。相比之下,有氧肿瘤细胞被认为主要利用葡萄糖产生氧化能。虽然乳酸通常被认为是一种废物,但我们现在证明,它是一种显著的底物,可以促进氧化肿瘤细胞的氧化代谢。因此,糖酵解和氧化肿瘤细胞相互调节其对能量代谢产物的获取,这是一种共生关系。我们确定单羧酸转运体1(MCT1)是人类宫颈鳞癌细胞系摄取乳酸的主要途径,该细胞系优先利用乳酸进行氧化代谢。用α-氰基-4-羟基肉桂酸(CHC)或siRNA抑制这些细胞中的MCT1,可诱导从乳酸呼吸转换为糖酵解。在小鼠肺癌模型和异种移植的人类大肠腺癌细胞中,在给予CHC后,观察到氧化肿瘤细胞从乳酸燃料呼吸到糖酵解的类似转变。这延缓了肿瘤生长,因为缺氧/糖酵解肿瘤细胞死于葡萄糖饥饿,并使剩余细胞对辐射敏感。由于MCT1被发现由一系列人类原发肿瘤表达,我们认为MCT1抑制具有临床抗肿瘤潜力。

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数字

图6
图6。MCT1抑制延迟肿瘤生长,诱导肿瘤核心坏死,并减少肿瘤缺氧。
(A类)MCT1在小鼠LLc细胞的质膜上表达。典型图片显示培养细胞中MCT1(红色)和细胞核(蓝色)的荧光染色。(B类)从第0天起,在每天服用CHC(200μl i.p.中25μmol)或溶媒的小鼠组中测定LLc肿瘤生长。n个=11–17. (C类)治疗后大小匹配肿瘤活检的代表性H&E染色。虚线表示坏死(n)。(D类)MCT1在小鼠TLT细胞的质膜上不表达。典型图片显示培养细胞中MCT1(红色)和细胞核(蓝色)的荧光染色。(E类)进行了类似的分析,如B类,但使用TLT细胞。n个=6. (F类)进行了类似的分析,如A类,但使用WiDr人类大肠腺癌细胞。()进行了类似的分析,如B类,但在无性系Balb/C小鼠中使用WiDr细胞。n个=9–15. (H(H))在肿瘤生长延迟试验结束时,WiDr肿瘤活检组织的典型组织学图片显示为H&E复染。上图:对整个肿瘤切片的分析显示,使用MCT1抑制剂治疗的动物的肿瘤核心广泛坏死。底部:MCT1抑制减少了小动脉周围和肿瘤周围肿瘤-肌肉界面的肿瘤缺氧。比例尺:20μm(A类,D类、和F类); 200微米(C类H(H)). 误差条代表SEM。
图9
图9。MCT1在多种不同的人类肿瘤细胞系和原始人类肿瘤活检中表达。
(A类B类)western blot检测MCT1(A类)和共焦显微镜(B类)在人类肿瘤细胞系和对照组织中。注意在WiDr、FaDu、SiHa和PC-3癌细胞中乳酸转运体的质膜表达。(C类)在原发性人类结肠癌、乳腺癌和头颈癌的活检中,使用免疫荧光检测MCT1(红色)和细胞核(蓝色)。(D类)在一例原发性肺癌的冷冻切片中检测到MCT1和缺氧。患者在肿瘤活检前接受了EF5治疗。典型的共焦显微镜照片显示,MCT1(绿色)和低氧标记EF5(红色)的染色没有重叠。比例尺:20μm(B类); 100微米(C类D类).
图1
图1。氧化SiHa和糖酵解WiDr肿瘤细胞系的代谢特征。
(A类)在第0天达到细胞汇合点后,用pH计测量细胞培养上清液的pH值。插图显示了典型的培养皿,其中含有汇合在酚红培养基中的WiDr和SiHa细胞**P(P)=0.0013(双向方差分析;n个=3). (B类)等量(2×107将每毫升的存活SiHa和WiDr细胞置于含有EPR氧传感器的密封管中。EPR测量结果显示存在显著差异(P(P)<0.0001)SiHa和WiDr肿瘤细胞(学生的t吨测试;n个=5–9). (C类)在时间0时,融合细胞接受含有葡萄糖和FBS的新鲜培养基。葡萄糖利用率(实线,左轴)和细胞上清液中的乳酸浓度(虚线,右侧axis)酶法测定。注意左侧和右侧的不同比例轴。n个=4.误差条代表SEM,有时小于符号。
图2
图2。乳酸是氧化肿瘤细胞代谢的底物。
(A类B类)酶分析用于测定融合细胞上清液中的葡萄糖利用率(实线)和乳酸浓度(虚线)。注意左侧和右侧的不同比例轴输入A类。在时间0时,细胞接受含有葡萄糖、FBS和乳酸钠的新鲜培养基(A类)或含有乳酸钠但不含葡萄糖和FBS的培养基(B类).n个=4–5. (C类D类)ρ0 SiHa和WiDr细胞是通过低剂量溴化乙锭的慢性治疗产生的。然后,从时间0开始,将细胞培养在含有葡萄糖、FBS和乳酸钠的新鲜培养基中。葡萄糖利用率(实线,左侧轴)和融合细胞上清液中的乳酸浓度(虚线,右侧axes)进行酶分析,比较野生型与ρ0 SiHa细胞的代谢活性(C类)野生型与ρ0 WiDr细胞(D类). 注意左侧和右侧的不同比例轴。n个=3–5. (E类F类)SiHa细胞对肿瘤细胞耗氧量的EPR测量(E类)和WiDr细胞(F类)在指定的实验培养基中。统计分析见表1。误差条代表SEM,有时小于符号。
图3
图3。氧化性肿瘤细胞显著表达MCT1。
(A类)qRT-PCR分析显示较高MCT1型氧化SiHa肿瘤细胞与糖酵解WiDr肿瘤细胞中mRNA表达的比较***P(P)=0.0002(学生的t吨测试;n个=8–13). (B类)qRT-PCR分析还表明氧化SiHa细胞表达较高水平的MCT1型与…相比MCT4型mRNA*P(P)=0.0116(学生的t吨测试;n个=3–13). (C类)MCT1(而非MCT4)在氧化SiHa肿瘤细胞的质膜上表达。典型的共焦照片显示培养细胞中MCT1(红色)、MCT4(红色)和细胞核(蓝色)的荧光染色。(D类)用细胞内pH传感器C.SNARF1-AM装载SiHa和WiDr细胞。在将乳酸钠添加到维持在pH 7.3的细胞培养基之前和之后,通过荧光发射测定细胞内pH。柱表示存在外源乳酸时测得的细胞内pH值与不存在外源乳酸情况下测得的胞内pH值之间的差异(Δ)。#P(P)=0.0393(学生的t吨测试;n个=4). (E类F类)肿瘤活检的免疫组织学分析表明,MCT1在体内SiHa和WiDr肿瘤中均表达,并且MCT1表达与缺氧相互排斥。(E类)整个SiHa和WiDr肿瘤切片的代表性图片。(F类)H&E复染显示了具有代表性的图片。箭头表示WiDr肿瘤中典型的相互排斥的MCT1和吡莫硝唑染色。比例尺:20μm(C类),0.5毫米(E类F类). 误差条代表SEM。
图4
图4。MCT1抑制剂阻断乳酸燃料肿瘤细胞的呼吸。
(A类B类)酶分析用于测定融合细胞上清液中的葡萄糖利用率(实线)和乳酸浓度(虚线)。请注意轴输入A类。在时间0时,细胞接受含有葡萄糖、FBS和乳酸钠的新鲜培养基(A类)或含有乳酸钠但不含葡萄糖和FBS的培养基(B类). 在指示的位置添加MCT1抑制剂CHC。n个=4–5. (C类E类)SiHa对肿瘤细胞耗氧量的EPR测量(C类E类)和WiDr细胞(D类)在所指示的实验培养基中。的统计分析C类D类如表1所示。误差条代表SEM,有时小于符号。
图5
图5。MCT1抑制可阻止乳酸燃料ATP的生成和氧化肿瘤细胞的存活。
(A类B类)在SiHa中测定ATP含量(A类)和WiDr(B类)细胞使用生物发光分析。在指定的培养基中培养细胞*P(P)<与仅含葡萄糖的培养基相比,0.05。#P(P)<与仅含乳酸的培养基(学生的t吨测试;n个=4). (C类)用特定的MCT1 shRNA或siRNA或对照载体转染SiHa细胞,或不进行处理。在24小时恢复期后,从时间0开始在指定的培养基中培养细胞。使用NucleoCounter随时间测定细胞死亡。坡度比较:**P(P)=0.0014和***P(P)=与野生型细胞相比为0.0003;##P(P)=0.0013和###P(P)=0.0003与对照载体转染(Student’st吨测试;n个=3–7). 误差条代表SEM,有时小于符号。
图7
图7。肿瘤中基于乳酸的代谢共生的治疗靶向模型。
缺氧肿瘤细胞依靠葡萄糖和糖酵解产生能量。糖酵分解的最终产物乳酸沿着浓度梯度向血管扩散。相比之下,氧合肿瘤细胞输入乳酸(位于细胞质膜上的MCT1介导的过程)并将其氧化以产生能量。在呼吸过程中,乳酸是优先于葡萄糖的底物。因此,葡萄糖自由扩散通过含氧肿瘤细胞鞘,为远处缺氧肿瘤细胞的糖酵解提供燃料。MCT1抑制可以破坏这种代谢共生。MCT1抑制后,氧化肿瘤细胞从乳酸氧化转变为糖酵解,从而阻止足够的葡萄糖输送至糖酵化细胞,糖酵细胞因葡萄糖饥饿而死亡。这种糖酵解开关与存活肿瘤细胞的耗氧量减少有关,这是导致肿瘤pO增加的原因2因此,MCT1抑制是一种有效的抗肿瘤策略,可间接根除缺氧/糖酵解肿瘤细胞。GLUT,葡萄糖转运蛋白。
图8
图8。MCT1抑制可使肿瘤放射增敏。
LLc荷瘤小鼠从第0天开始接受CHC(每日剂量为25μmol,每次200μl i.p.)或载体(200μl)治疗,第3天接受局部放射治疗(1次剂量为6 Gy)或联合治疗。(A类)每天测定肿瘤体积。(B类)在确定肿瘤生长延迟后比较治疗效果***P(P)<0.001与6 Gy相比;###P(P)<与单用MCT1抑制剂相比,0.001(单因素方差分析;n个=6–12). 误差条代表SEM,有时小于符号。

中的注释

  • 肿瘤代谢:癌细胞分泌和摄取乳酸。
    塞门扎GL。 塞门扎GL。 临床投资杂志。2008年12月;118(12):3835-7. doi:10.11172/JCI37373。Epub 2008年11月20日。 临床投资杂志。2008 PMID:19033652 免费PMC文章。

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