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.2008年10月22日;27(20):2691-701.
doi:10.1038/embj.2008.193。 Epub 2008年9月25日。

ES细胞中的DNA甲基化需要赖氨酸甲基转移酶G9a,但不需要其催化活性

附属公司

ES细胞中的DNA甲基化需要赖氨酸甲基转移酶G9a,但不需要其催化活性

凯文·B·东等。 欧洲工商管理硕士J. .

摘要

组蛋白H3K9甲基化是植物和丝状真菌中DNA甲基化和重复元素沉默所必需的。然而,在哺乳动物细胞中,H3K9组蛋白甲基转移酶(HMTases)Suv39h1和Suv39h2的缺失并不影响内源性逆转录病毒小鼠白血病病毒的DNA甲基化,这表明H3K8甲基化对于逆转录转座子的DNA甲基化是不必要的,或者涉及不同的HMTase。我们证明,缺乏H3K9 HMTase G9a的胚胎干细胞显示,逆转录转座子、主要卫星重复序列和富含CpG的甲基化启动子的DNA甲基化显著降低。令人惊讶的是,去甲基化的反转录转座子在G9a(-/-)细胞中保持转录沉默,H3K9me2仅略有减少,H3K9me3或HP1alpha结合没有减少,表明H3K9甲基化本身不是DNA甲基化的相关触发因素。事实上,引入催化活性G9a转基因部分“挽救”了G9a(-/-)细胞中观察到的DNA甲基化缺陷。综上所述,这些观察结果表明,在ES细胞中,H3K9me3和HP1alpha募集到反转录转座子的发生与DNA甲基化无关,G9a促进DNA甲基化与HMTase活性无关。

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数字

图1
图1
MLV、IAP和LINE1反转录转座子的DNA甲基化在G9a型−/−细胞。基因组DNA分离自G9a公司−/−,G9a型−/−Tg、,Dnmt1型−/−,Suv39h1/2号−/−(运动型多用途汽车−/−)和wt亲本系TT2、J1和R1分别用Msp公司I(M)或甲基化敏感限制性内切酶血红蛋白II(H)并使用特定于(A类)IAP、(B类)MLV或(C)LINE1反转录转座子。这个G9a公司−/−线显示了这些重复元素中每一个的DNA甲基化都显著降低,而在G9a型−/−Tg线。相比之下Suv39h1/2号−/−该品系在IAP或MLV重复序列中没有DNA甲基化缺陷。(D类,E类)在TT2上对IAP和MLV元素的5′LTR区域进行了亚硫酸氢盐分析,G9a公司−/−,G9a公司−/−Tg(15-3),Dnmt1型−/−Dnmt3a/b公司−/−细胞。对于每个测序的分子(水平条),填充的椭圆代表mCpG的存在。每组测序样品的右侧显示了每个测序分子的mCpG平均数。还显示了mCpG相对于野生型线的平均百分比(在括号中)。
图2
图2
启动子区域的DNA甲基化在G9a公司−/−细胞。(A类)MeDIP随后对9个富含CpG-的启动子区域和两个印迹控制基因座(ICR)进行定量PCR,之前显示在ES细胞中甲基化(Mohn2008年),G9a公司−/−G9a公司−/−输电线。IAP和MusD扩增子作为阳性对照。一个活性看家基因(Gapdh)和一个CpG-power基因间区(Interg)被作为阴性对照。条形图显示了G9a公司−/−G9a公司−/−显示Tg ES细胞相对于wt ES细胞(设置为1)。折叠变化归一化为非甲基化控制基因(Hprt)。括号中的数字表示MeDIP相对于Hprt的富集度。误差条表示至少三个独立实验的标准偏差。G9a公司−/−TT2亲本系中甲基化水平较高的所有基因的wt系或挽救系。(B类)野生型中种系特异性Dazl和Tuba3基因的DNA甲基化状态,G9a公司−/−,Dnmt1型−/−Dnmt3a/b公司−/−细胞经亚硫酸氢盐测序证实。图中显示了每个测序分子的mCpGs平均数,以及mCpG相对于野生型线的平均百分比(括号中)。这两个启动子都显示G9a公司−/−行。
图3
图3
DNMT在中的表达G9a型−/−细胞。(A类)从TT2 wt和G9a公司−/−通过实时定量RT-PCR测定细胞和Dnmt1、Dnmt3a、Dnmt 3b和Dnmt3G的表达水平,并归一化为β-actin(RT-逆转录酶)。值表示三个独立实验中相对于野生型系的平均表达水平(±标准差)。(B类)使用定量双色荧光成像对从TT2和G9a公司−/−细胞,使用针对Dnmt1、Dnmt3a、DNMT3b和TFII-I的抗体作为内部对照。从DNMT缺陷细胞中分离的提取物用作抗体特异性的对照。每个印迹下方显示了归一化为TFII-I的相对蛋白质表达水平。
图4
图4
G9a公司−/−ES细胞在向ERV招募Dnmt3a和从头开始引入的逆转录病毒的甲基化。(A类)从TT2和G9a公司−/−使用针对Dnmt3a或未修饰组蛋白H3的非特异性IgG或抗血清进行细胞系和ChIP。使用针对MLV、IAP和MusD ERV LTR区域的特异引物进行实时PCR,数值表示为相对于所示典型实验中输入的输入沉淀百分比(±s.d.)。Dnmt3a在G9a公司−/−线相对于wt控制是显而易见的。(B类)TT2重量,G9a公司−/−,J1重量和Dnmt3a/b公司−/−(3a/b条−/−)用逆转录病毒载体MFG–GFP感染株系,并在没有选择的情况下传代。在感染后第18天分离基因组DNA,并通过亚硫酸氢盐基因组测序进行分析。
图5
图5
ERV在G9a公司−/−细胞。从TT2 wt中分离出RNA,G9a公司−/−,G9a型−/−Tg,J1重量,Dnmt3a/b公司−/−Dnmt1型−/−并通过northern印迹分析。从含有活性MLV逆转录病毒载体的细胞系中分离出的RNA用作阳性对照。每个印迹显示18和28s RNA负载控制。(A类)使用针对MLV-LTR区域的特异探针,在所有被测株系中均未检测到MLV的表达。(B类)IAP元件的三个亚型(I、IΔ1和II)在Dnmt1型−/−行,但不是G9a公司−/−行,使用IAP LTR区域专用的探针。(C)定量RT-PCR(+/−RT),使用针对波尔全长IAP元件区域在亲本或G9a公司−/−行,但在Dnmt1型−/−Dnmt3a/b公司−/−线。
图6
图6
ERV显示H3K9二甲基化在G9a公司−/−但H3K9三甲基化或HP1α结合没有减少。TT2重量和G9a公司−/−使用对H3K9me2、H3K9 me3、HP1α、未修饰H3和非特异性IgG(IgG)具有特异性的ChIP作为对照分析ES细胞。使用IAP或MusD反转录转座子或主要卫星重复序列的特异引物进行定量实时PCR。(A类)平均富集值表示为输入沉淀的百分比(±s.d.),相对于所示的代表性实验中的输入。(B类)从三个独立实验中绘制H3K9me2和H3的平均相对富集度(±s.d.)表明,H3K9 me2在G9a公司−/−相对于父行的行(*P(P)<0.05,由学生t吨-测试),但这些元件的H3占用率没有差异。(C)相对于R1 wt母线,Suv39h1/2型−/−(运动型多用途汽车−/−)ES细胞仅在主要的卫星重复序列中显示H3K9me3的急剧下降。
图7
图7
MusD、IAP和主要卫星重复序列的H3K9甲基化和HP1α结合Dnmt1型−/−细胞。在J1 wt上进行ChIPDnmt1型−/−使用针对H3K9me2、H3K9 me3、HP1α和未修饰H3的抗体的ES细胞。非特异性IgG用作对照。使用IAP、MusD或主要卫星重复序列的特异性引物对反向交联材料进行实时PCR,共进行三次,富集(±s.d.)表示为输入材料免疫沉淀的平均百分比,归一化为未修饰H3。IAP元素显示H3K9me3和HP1α结合在Dnmt1型−/−但H3K9me2富集没有变化。在MusD或主要卫星重复序列中未检测到任何这些特征的显著差异。
图8
图8
稳定表达无催化活性的G9a转基因足以挽救在G9a公司−/−ES细胞。这个G9a公司−/−用编码wt G9a转基因的构建物稳定转染2-3号系G9a公司−/−Tg(wt),或突变G9a转基因G9a型−/−Tg(C1168A)和G9a公司−/−Tg(Y1120V;Y1207F)。每一个后一种转基因在SET结构域中都含有氨基酸替换,从而将编码蛋白的催化活性降低到重量蛋白的1%以下。(A类)对表达这些转基因中的每一种的细胞系进行的蛋白质印迹分析表明,突变蛋白以预期的分子量表达。使用TFII-I特异性抗体作为负荷控制。(B类)通过归一化相同印迹上内源性TFII-I的信号,对这些品系中GLP表达进行定量western印迹分析。(C)从wt(TT2)中分离的基因组DNA,G9a型−/−(2-3),G9a公司−/−Tg(重量),G9a公司−/−Tg(C1168A),G9a公司−/−Tg(Y1120V;Y1207F)和Dnmt1型−/−ES细胞用血红蛋白II(H),并使用IAP特异性探针进行Southern印迹。消息传递程序I(M)用作对照。(D类)使用IAP 5′LTR特异性引物进行的亚硫酸根分析证实,无催化活性的G9a的表达部分挽救了DNA甲基化缺陷。(E类)对于(D)和图1D中所示的亚硫酸氢盐数据,显示了每个测序分子的mCpG平均数的条形图。(F类)对wt(TT2)进行ChIP,G9a公司−/−(2-3),G9a公司−/−Tg(wt)和G9a公司−/−使用抗H3K9me2、Dnmt3a或未修饰H3抗血清的Tg(C1168A)系。非特异性IgG作为对照。使用IAP特异性引物对反向交联材料进行实时PCR,共进行三次,富集度(±s.d.)表示为输入材料免疫沉淀的平均百分比,归一化为未修饰H3。

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