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.2008年10月;7(10):1630-40.
doi:10.4161/cbt.7.10.6585。 Epub 2008年10月9日。

曲妥珠单抗和17-AAG联合诱导ErbB2过度表达乳腺癌细胞泛素化和溶酶体途径依赖性ErbB2-降解增强及细胞毒性

附属公司

曲妥珠单抗和17-AAG联合诱导ErbB2过度表达乳腺癌细胞泛素化和溶酶体途径依赖性ErbB2-降解增强及细胞毒性

Srikumar M Raja公司等。 癌症生物治疗. 2008年10月.

摘要

乳腺癌中ErbB2(或Her2/Neu)过度表达意味着预后较差,但人源化单克隆抗体曲妥珠单抗(Herceptin)的成功证明,它为靶向治疗提供了一条途径。然而,在大多数情况下,对曲妥珠单抗的耐药性和最终的失败需要替代ErbB2靶向治疗。HSP90抑制剂,如17-烯丙基胺脱甲氧基高达霉素(17-AAG),能有效下调细胞表面ErbB2。虽然曲妥珠单抗或17-AAG作用的确切机制尚不清楚,但ErbB2的泛素依赖性蛋白酶体或溶酶体降解似乎发挥了重要作用。由于曲妥珠单抗和17-AAG分别诱导不同的E3泛素连接酶Cbl和CHIP募集到ErbB2,我们假设与单药治疗相比,17-AAG和曲妥珠单抗组合可以诱导更高水平的泛素化和ErbB2的下调。我们提出了生化和细胞生物学证据,即17-AAG和曲妥珠单抗联合治疗ErbB2过度表达的乳腺癌细胞株会导致泛素化增强、细胞表面的下调和ErbB2的溶酶体降解。重要的是,17-AAG和曲妥珠单抗联合治疗可诱导协同生长停滞和细胞死亡,特别是在ErbB2-过度表达的乳腺癌细胞中,但在ErbB2-low乳腺癌细胞内没有。我们的结果表明,17-AAG和曲妥珠单抗联合应用是一种基于机制的组合靶向治疗ErbB2过度表达乳腺癌患者的方法。

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数字

图1
图1。低浓度17-AAG与曲妥珠单抗联合诱导更有效的ErbB2-降解
A、 B类17-AAG和曲妥珠单抗诱导的ErbB2下调的差异动力学;在指定的时间段内,用100 nM 17-AAG(A)或10μg/ml曲妥珠单抗(B)处理SKBr-3和21MT-1细胞,然后进行细胞裂解。用SDS-PAGE/WB分析50μg等分的细胞裂解液。Hsc70用作加载控制。C类在17-AAG的高浓度下,曲妥珠单抗和17-AEG之间的协同作用不明显;在指定的时间段内,用17-AAG(100 nM)单独处理SKBr-3细胞,用17-AAG(100nM)+T(10μg/ml)或T(10微克/毫升)处理。用SDS-PAGE/WB分析细胞和25μg等分样品,并探测ErbB2和β-肌动蛋白(负荷控制)。D类17-AAG和曲妥珠单抗的组合在ErbB2的降解中更有效;将SKBr-3或21MT-1细胞单独用17-AAG(10 nM)或Trastuzumab(T)单独用(10μg/ml)或联合用(10 nM;10μg/ml)处理24或48小时。细胞也用100 nM 17-AAG处理6小时,作为相对效力的比较。处理后,在含有裂解缓冲液的Triton X-100中对细胞进行裂解。通过SDS-PAGE/Western blotting直接分析50μg小份裂解液,并探测ErbB2。β-肌动蛋白免疫印迹作为负荷控制。E类用SDS-PAGE/WB和密度测定法分析17-AAG和曲妥珠单抗对21MT1细胞ErbB2-降解的影响(±SEM;n=6)
图2
图2。17-AAG联合曲妥珠单抗降低ErbB2的细胞表面水平
A类将生长在6孔板中的21MT-1细胞用DMSO(深红色)、10 nM 17-AAG(紫色)、10μg/ml T(青色)或17-AAG+T(深绿色)处理指定的时间段。还包括100 nM 17-AAG处理(深蓝色)作为对照进行比较。处理后,将细胞胰酶化,在FACS缓冲液中洗涤,并按照方法部分所述对活细胞进行ErbB2染色。使用流式细胞术评估细胞表面水平。B类.21MT-1或SKBr-3细胞生长在玻璃盖玻片上,用指定浓度的17-AAG单独、Trastuzumab单独或组合处理指定时间段。治疗后,将盖玻片固定在4%多聚甲醛(PFA)中,并按照方法部分的详细说明进行ErbB2(绿色)免疫染色。这里显示的是共焦免疫荧光显微镜图像。
图3
图3。17-AAG和曲妥珠单抗联合治疗诱导ErbB2泛素化和溶酶体降解增强
A类.21MT-1细胞用指示浓度的17-AAG或曲妥珠单抗或联合用药处理6h。处理后,细胞裂解并根据前述方法(20)进行抗ErbB2 IP处理。在SDS-PAGE/WB之后,对膜过滤器进行泛素检测。剥离膜过滤器并探测ErbB2。50μg等分总裂解液也进行了类似分析。B类.17-AAG诱导溶酶体中ErbB2的积累;将生长在盖玻片上的21MT-1细胞置于未处理状态(顶行)或用100 nM溶酶体抑制剂bafilomycin A1(中行)或10μM蛋白酶体抑制剂lactacystin(底行)预处理1 h。然后,对细胞进行未处理(左列)或用100nM 17-AAG(右列)处理。治疗后,将盖玻片固定在4%多聚甲醛(PFA)中,并对ErbB2(绿色)和LAMP-1(红色)进行免疫染色,详见方法部分。这里显示的是共焦免疫荧光显微镜图像。C类曲妥珠单抗治疗还诱导ErbB2的溶酶体定位;在固定之前,在盖玻片上生长的21MT-1细胞未经处理或用10μg/ml曲妥珠单抗处理48小时,并对ErbB2(绿色)和LAMP-1(红色)进行免疫染色。D类将生长在盖玻片上的BT-474细胞与指定浓度的单药或联合用药处理指定时间段,加或不加Bafilomycin(10 nM)。处理后的盖玻片按照图3A图例所述进行处理。图示绿色为ErbB2染色,红色为LAMP-1染色;共定位区域显示为黄色。
图4
图4。17-AAG和曲妥珠单抗联合对ErbB2过表达乳腺癌细胞的细胞毒性的协同作用
顶行:对BT-474、SKBr-3和21MT-1进行单药治疗或联合治疗(在剂量-反应曲线中选择的17-AAG浓度下)的效果比较,显示联合治疗相对于单药的疗效。Trastuzumab(T)浓度固定为0.1μg/ml(对于BT-474细胞)或10μg/ml,对于SKBr-3和21MT-1。中间一行:17-AAG和曲妥珠单抗组合的中位效应图。x截距处的箭头表示17-AAG的中位剂量。注意,与17-AAG相比,组合向左移动。最下面一行:不同浓度17-AAG的各种分数效应的组合指数(CI)值。CI<1表示协同作用;CI~1表示加性效应;CI>1表示对抗。
图5
图5。17-AAG和曲妥珠单抗联合作用选择性诱导ErbB2过度表达乳腺癌细胞增殖停滞
A类ErbB2-low细胞包括MCF-10A、MDA-MB-231和MCF-7细胞,在指定浓度下单独或联合使用17-AAG(20 nM)或曲妥珠单抗(10μg/ml)处理,并通过MTT分析评估相对生长。为了进行比较,还使用了MCF-7-ErbB2(逆转录)。B类.用于上述研究的细胞系中ErbB2水平的比较;采用SDS-PAGE/WB分析100μg等分试样的BT-474、SKBr-3、21MT-1、MCF-ErbB2、MCF-7、MCF-10A和MDA-MB-231细胞裂解物。
图6
图6。17-AAG加曲妥珠单抗更有效地诱导细胞周期阻滞和凋亡
A类在24孔板中生长7天的SKBr-3细胞(一式两份)用指示浓度的单一药物或组合处理。药物治疗结束后,将细胞固定并用0.25%结晶紫染料在20%甲醇溶液中染色。这里显示的是一个具有代表性的板块。B类17-AAG和曲妥珠单抗联合诱导ErbB2过度表达细胞中的G1-受体;将P100平板中生长的SKBr-3细胞按指示处理(一式三份)2天,然后进行细胞周期分析。这里显示了每种情况下具有代表性的细胞周期分析概况。还显示了每个阶段的细胞百分比(±S.D.)。与单独使用17-AAG(p<0.01)或Trastuzmab(p<0.05)相比,联合用药可显著提高G1-arrest的疗效。C类药物处理的SKBr-3细胞的膜联蛋白V测定;用二甲基亚砜或17-AAG(10 nM)、曲妥珠单抗(1或10μg/ml)或17-AEG(10 nM)加曲妥珠单抗(1或者10μg/ml)处理生长在P100平板中的SKBr-3细胞(一式三份)5天。药物治疗后,根据制造商的方案对细胞进行胰蛋白酶化,并对细胞进行Annexin V染色,以评估死亡/死亡细胞。实验结束时,部分样品用于ErbB2水平的SDS-PAGE分析。此处显示了Annexin V阳性细胞±S.D的百分比。插图显示治疗结束时的ErbB2水平。D类ErbB2-过表达乳腺癌细胞的单一或组合治疗对ErbB2下游信号传导的影响;BT-474细胞用指定浓度的单一药物或组合治疗3天。用SDS-PAGE/WB分析100μg细胞裂解物蛋白等分样品的促生存信号、p-AKT、p-mTOR和p-P70S6K、cyclin D1和survivin。
图7
图7。本研究假设的示意图
箭头的厚度代表了再循环相对于溶酶体靶向的相对优势,点状箭头是最不占优势的路径。A类.通过heregulin(HRG)激活的ErbB2流量的正常循环(实心箭头)路线,HRG与ErbB3/4结合并通过异构化激活ErbB2。B类抗-ErbB2抗体通过Cbl募集和增加溶酶体靶向性(和减少再循环)诱导ErbB2下调。C类我们的模型研究了17-AAG与HSP90结合如何激活CHIP,通过溶酶体靶向促进ErbB2下调。D类我们的假设是,结合Cbl(针对抗ErbB2)和CHIP(针对17-AAG)泛素化途径,将通过转换为主要的溶酶体命运(实心箭头)而非循环(点状箭头),导致ErbB2.协同下调。

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