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.2008年2月1日;68(3):918-26。
doi:10.1158/0008-5472.CAN-07-5714。

肿瘤相关基质成纤维细胞促进胰腺肿瘤进展

附属公司

肿瘤相关基质成纤维细胞促进胰腺肿瘤进展

罗莎·F·黄等。 癌症研究. .

摘要

胰腺癌的特征是肿瘤相关基质的密集背景来源于丰富的胰腺星状细胞。本研究的目的是确定人类胰腺星状细胞(HPSC)对胰腺肿瘤进展的影响。从胰腺癌切除标本中分离出HPSC,并用端粒酶和SV40大T抗原永生化。在两个胰腺癌细胞系中测量了HPSC条件培养基(HPSC-CM)对体外增殖、迁移、侵袭、软黄集落形成和在吉西他滨或放射治疗存在下生存的影响。通过将HPSCs与癌细胞联合注射并分析其生长和转移,在原位胰腺癌小鼠模型中检测HPSCs对肿瘤的影响。HPSC-CM剂量依赖性地增加BxPC3和Panc1肿瘤细胞的增殖、迁移、侵袭和集落形成。此外,吉西他滨和放射治疗对HPSC-CM治疗的肿瘤细胞效果较差。原位模型中肿瘤细胞与HPSCs共注射导致原发性肿瘤发生率、大小和转移增加,这与HPSC的比例一致。HPSC产生可溶性因子,刺激与胰腺癌细胞增殖和存活相关的信号通路,肿瘤中HPSC的存在会增加这些细胞的生长和转移。这些数据表明星状细胞在支持和促进胰腺癌方面具有重要作用。HPSC衍生因子的鉴定可能会导致针对胰腺癌的新的基质靶向治疗。

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图1
图1
HPSC的永久化。原发性HPSC暴露于携带hTERT和SV40-TAg的慢病毒载体。hTERT和SV40-TAg转导的HPSCsα-SMA的免疫组织化学染色(A类)和波形蛋白(B类).C类、原代HPSCs、用SV40-TAg转导的HPSCs和用hTERT和SV40-TAg转导的HPSCs的生长曲线。携带hTERT和Tag的HPSCs在超过100代时没有衰老迹象。
图2
图2
HPSC-CM对胰腺癌细胞表型的影响。将HPSC的CM(μg/μL)加入到BxPC3或Panc1胰腺肿瘤细胞中。A类MTS法检测48h后肿瘤细胞增殖。B类,采用改良的Boyden小室法在48小时时评估肿瘤细胞的侵袭性。C类,在添加HPSC-CM后15天测定肿瘤细胞在软琼脂中形成集落的能力。D类,肿瘤细胞增殖是在存在来自未固定化HPSC的条件培养基的情况下测量的。,三个实验的平均值。*,P(P)<0.05和**,P(P)<0.005与无血清培养基(SFM公司)控件编号,P(P)<0.0005与HPSC-CM 1.0μg/μL相比。
图3
图3
用吉西他滨(100μmol/L)处理BxPC3细胞,加入或不加入HPSC的条件培养基(1μg/μL)48小时。A类TUNEL法检测细胞凋亡,DAPI染色细胞核。B类,在每种情况下的10个随机字段中测定凋亡细胞的百分比。SFM公司,无血清培养基。
图4
图4
HPSC的条件培养基保护胰腺癌细胞免受辐射诱导的凋亡。在含有10%FCS的培养基或来自HPSC的条件培养基(1μg/μL)中,用100 Gy的辐射处理BxPC3细胞。24小时后,对细胞进行caspase激活分析(A类)和凋亡细胞百分比(B类)和原子核总数(C类)进行了计算。控制DMEM,10%FCS;X射线衍射,辐射处理。*,P(P)与对照组相比<0.01;**,P(P)<0.0001与对照组相比。
图5
图5
通过Western blotting分析不同时间点经HPSC-CM(1μg/μL)处理的BxPC3细胞蛋白裂解物的Erk1/2和Akt活化(A类)并通过密度测定进行量化。对照细胞仅用无血清培养基处理。B类,与无血清对照组比较磷酸化Erk1/2和Akt水平的变化。
图6
图6
在胰腺癌原位裸鼠模型中,HPSCs与BxPC3肿瘤细胞共注射会导致肿瘤发生率、转移和肿瘤大小增加。HPSC注射BxPC3细胞(0.5×106或1×106)在不同的肿瘤/间质比率中。8周时,处死小鼠并观察原发性肿瘤发病率(A类)和转移(B类)被量化。C类,对胰腺肿瘤进行称重,并显示各组中代表性小鼠的荧光素酶信号。D类,H&E染色显示注射0.5×10的小鼠胰腺内无肿瘤6仅BxPC3细胞(左边)但证实了联合注射BxPC3和HPSCs(胰腺、,中心和腹膜转移,正确的). 每个实验重复两次,并显示所有结果的摘要。*,P(P)与肿瘤/间质比率1:0或0:1相比,<0.01。

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引用人

参考文献

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