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.2007年7月;56(7):1792-801.
doi:10.2337/db06-1513。 Epub 2007年3月30日。

小鼠葡萄糖输注:诱导β细胞复制的新模型

附属公司

小鼠葡萄糖输注:诱导β细胞复制的新模型

劳拉·阿隆索等人。 糖尿病. 2007年7月.

摘要

开发诱导β细胞复制的新技术是糖尿病研究的主要目标。内源性β细胞复制以应对代谢变化,如肥胖和怀孕,这会增加胰岛素需求。小鼠遗传模型有望揭示代偿性β细胞复制的途径。然而,不存在简单、短期的生理复制刺激来测试小鼠模型的补偿复制。在这里,我们提出了一种在活体小鼠中诱导β细胞复制的新工具。根据血流动力学、体重、器官重量、食物摄入量和皮质酮水平,小鼠对连续输注四天的葡萄糖耐受性良好。轻度持续高血糖和高胰岛素血症导致β细胞复制显著增加五倍。葡萄糖诱导的β细胞复制具有剂量和时间依赖性。在这段时间内,葡萄糖输注不会改变β细胞质量、胰岛数量、β细胞大小和β细胞死亡。葡萄糖输注增加了胰岛中细胞周期蛋白D2的总蛋白丰度和核定位,这在以前没有报道过。因此,我们开发了一种新的模型来研究代偿性β细胞复制的调节,并描述了小鼠β细胞对活胰腺中葡萄糖反应的重要新特征。

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数字

图1
图1
小鼠对连续输注四天的葡萄糖耐受性良好。A类:实验时间表。葡萄糖输注不会改变体重(B类),器官重量(C类),或平均动脉血压(BP)和心率(HR)(D类).E类:血浆皮质酮未升高;灰色区域表示小鼠的正常范围(49)。数据为平均值±SE。
图2
图2
葡萄糖输注会在生理范围内引起轻微的代谢变化。25%和50%的葡萄糖(Glu)显著增加血糖(A类)和血浆胰岛素(B类). 25%葡萄糖注射液的热量来源(C类)和50%葡萄糖注入(D类)小鼠包括infusate(虚线)和chow(灰圈)。注射葡萄糖的小鼠减少了食物摄入量,因此总热量摄入量(黑钻石)与盐水小鼠相似(白色方块;盐水数据在C类D类用于比较)。数据为平均值±SE*P(P)< 0.001, ‡P(P)使用Tukey试验后与生理盐水的比较进行的单因素方差分析<0.05。
图3
图3
葡萄糖输注以剂量依赖的方式增加β细胞复制。A类:BrdU和胰岛素染色的代表性胰岛显示葡萄糖诱导复制;肠道是BrdU暴露和染色的阳性对照。插入共焦显微镜证实BrdU阳性细胞核属于胰岛素阳性细胞。B类:50%葡萄糖增加β细胞复制(与25%葡萄糖或生理盐水相比);25%的葡萄糖也显示出强劲的趋势(与生理盐水相比)。C类:与小胰岛相比,葡萄糖(Glu)在中型胰岛中诱导更多的复制*P(P)<0.05 vs.生理盐水#P(P)<0.05 vs.“<20”胰岛。比例尺=20μm;平均值±标准盐,生理盐水。
图4
图4
输注葡萄糖4天后,β-细胞质量和胰岛数量不变。A类:胰腺切片的典型低倍图像,胰岛素和苏木精染色。B类:葡萄糖输注后胰腺重量减轻。每个胰腺面积的β细胞面积百分比(C类)和β细胞质量(D类)在葡萄糖注入的小鼠中没有增加。注射葡萄糖(Glu)的小鼠的胰岛数量不变,无论是数字计数(E类)或手动(F类G公司)使用校准的眼内网格。G公司:葡萄糖注入小鼠的单核细胞、双核细胞和胰岛素阳性导管细胞的数量没有变化。比例尺=1 mm。数据为平均值±SE。
图5
图5
β-细胞大小和死亡在葡萄糖输注中保持不变。A类B类:注射葡萄糖(Glu)的小鼠每个β细胞的胰岛素积分面积不变。C类D类:使用E-cadherin(红色)、胰岛素(绿色)和Hoechst(蓝色)染色切片,通过追踪细胞边界测量β细胞面积证实β细胞大小不变。E–G公司:使用TUNEL(绿色)、胰岛素(红色)和Hoescht(蓝色)染色切片,我们发现TUNEL的比率(F类)和固缩(G公司)在两组中都很低。阳性对照是用链脲佐菌素治疗的小鼠。比例尺英寸A类C类=20μm和英寸E类=10微米。数据为平均值±SE。Sal,生理盐水。
图6
图6
葡萄糖诱导的复制在4天输注后增加。A类:小鼠接受1天、2天、3天或4天的盐水或50%葡萄糖,仅在最后24小时内添加BrdU。B类:葡萄糖(Glu)诱导的复制在第2、3和4天增加。数据为平均值±SE。
图7
图7
葡萄糖输注增加细胞周期蛋白D2丰度和核定位。A类:小鼠胰岛注射盐水或葡萄糖4天后,细胞周期蛋白D2蛋白丰度显著增加;细胞周期蛋白D1、细胞周期蛋白D3和cdk4不变。B类:细胞周期蛋白D2的免疫组织化学显示葡萄糖注入小鼠胰岛中有明显的核定位。C类:实时PCR显示,盐水或葡萄糖注入小鼠胰岛中D型细胞周期蛋白和cdks 4和6的mRNA丰度没有差异。比例尺=20μm(10μm in插入). 数据为平均值±SE。

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