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.2006年10月18日;25(20):4854-64.
doi:10.1038/sj.emboj.7601331。 Epub 2006年10月5日。

U2AF 65和CF I(m)之间的相互作用连接了拼接和3'端加工机械

附属公司

U2AF 65和CF I(m)之间的交互将拼接和3’端加工机械连接起来

斯蒂芬妮娅·米列沃等。 浮雕J. .

摘要

蛋白因子U2 snRNP辅助因子(U2AF)65是剪接所需的基本成分,参与脊椎动物前mRNA剪接和3'末端加工的耦合。在这里,我们讨论了U2AF 65刺激前mRNA 3'末端处理的机制。我们确定了U2AF 65的精氨酸/丝氨酸丰富区域,该区域介导与人类卵裂因子I(CF I(m))的59kDa亚基的RS-样交替电荷域的相互作用,这是一种在识别3'末端处理信号的早期阶段起作用的重要3'处理因子。系带功能分析表明,U2AF 65/CF I(m)59相互作用刺激体外3’末端裂解和聚腺苷酸化。因此,这些结果揭示了U2AF 65/CF I(m)59相互作用在剪接和3'末端处理的功能协调中的直接作用。

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图1
图1
跨越U2AF 65残基17-47的区域对于促进体外HeLa细胞核提取物中的3′端断裂。(A类)U2AF 65蛋白的结构域组织图显示了一个中心U2AF 35相互作用域(U2AF 35-)和三个羧基末端RRM。显示了本研究中使用的U2AF 65-全长和各种缺失突变体的范围。(B类)体外使用R17-腺病毒L3 RNA切割底物的切割反应。32在各种R17-U2AF 65融合蛋白(3–8道)或R17蛋白(14 pmol)(9道)数量增加的情况下,用HeLa核提取物(2–9道)培养P标记的RNA底物。通道1对应于输入RNA。未分离和裂解产物的标识显示在左侧。(C类)体外裂解反应。R17-腺病毒L332在各种R17-U2AF 65融合蛋白(通道2-5)或R17蛋白(14 pmol)(通道6)的增加量(7或14 pmol。未切割和切割产品的标识显示在左侧。这些具有代表性的实验至少重复了六次。将所有添加的融合蛋白的数量增加到30 pmol并没有进一步激活3′端切割的效率,这表明添加的蛋白达到14 pmol时,刺激效果最大。由劈开产物与未劈开产物之比确定的劈开百分比在面板B和C的直方图上表示(D类)过滤结合分析;过滤结合RNA的归一化分数与蛋白质浓度成函数关系。对三个独立实验的平均数据点进行曲线拟合。星号表示裂解产物的迁移位置。
图2
图2
位于U2AF残基30和47之间的富含RS-的区域足以促进体外HeLa细胞核提取物中的裂解,而含有5或7个RS重复的肽不会刺激裂解。(A类)该区域的氨基酸序列位于U2AF 65的残基17和47之间。(B类D类)体外使用R17-腺病毒L3(B,D)或R17-β-珠蛋白(C)RNA裂解底物的裂解反应。32在不存在R17蛋白(B和D组的第1通道;C组的第2通道)或R17蛋白数量增加(7或14 pmol)的情况下,用HeLa核提取物培养P标记的RNA底物(B组的第10-11通道和C组的13-14通道),如图所示的各种R17-U2AF 65融合蛋白(B组的2–9条通道和C组的3–12条通道)或含有五或七个RS二肽的R17融合蛋白(D组的2-5条通道)。未剥离和劈开产品的标识显示在放射自显影图的左侧。由劈开产物与未劈开产物之比确定的劈开百分比在面板B和C的直方图上表示。这些代表性实验至少重复了五次。将所有添加的融合蛋白的数量增加到30 pmol并没有进一步激活3′端切割的效率,这表明添加的蛋白达到14 pmol时,刺激效果最大。星号表示裂开产品的迁移位置。
图3
图3
U2AF 65提高了3′端解理速率,减少了解理反应的滞后相。时间进程体外在R17蛋白或R17-U2AF 65(1-85)融合蛋白存在下,使用HeLa细胞核提取物对R17-腺病毒L3 RNA裂解底物进行裂解反应。每个时间点的解理百分比由解理产物与未解理产物的比率绘制在图表上。这些具有代表性的实验被重复至少三次。星号表示裂开产品的迁移位置。
图4
图4
U2AF 65与CF I的59kDa亚单位相互作用. (A类)体外使用GST下拉分析蛋白质-蛋白质相互作用。指示的GST融合蛋白(GST-R17、GST-R17-U2AF 65和GST-R17-U2AF 65(1-85))与谷胱甘肽琼脂糖珠结合,并用于与35CF I的59和68 kDa亚基的S-蛋氨酸标记结构域如图所示。加载了10%的输入。(B类)CF I 59 kDa亚基的域组织图解包含氨基末端RRM、中心富含脯氨酸结构域(PRO)和羧基末端类RS-交替电荷结构域(RS)。所有GST下拉实验至少进行了三次,以确保再现性。(C类)体内利用酵母双杂交实验进行蛋白质-蛋白质相互作用分析。用编码所示蛋白质的质粒组合转化酵母,并在Leu上生长Trp公司评估β-半乳糖苷酶活性之前的培养基。
图5
图5
U2AF 65招募CF I59到腺病毒L3裂解/多聚腺苷化位点。(A类)(i)重组CF i的考马斯蓝染色59/25复杂。M: 蛋白质标记物。(ii)使用针对CF I的抗体进行免疫印迹68.NE:核提取物。(B,C)UV交联实验使用均匀的32P标记的R17-腺病毒L3 RNA底物(B类)或均匀32P标记的R17-β-珠蛋白RNA底物(C类). 标记的RNA与CF I孵育59/25各种R17-U2AF 65融合蛋白的8 pmol缺失(B、C、1道)或存在(B、C、2-5道)时(6 pmol)。培养后,进行交联,并通过SDS-PAGE解析交联多肽。这个实验至少进行了四次。交联反应迁移质量差是由于反应中存在聚乙烯醇。(D类)(i)A32含有腺病毒I主要晚期内含子上游的3′剪接位点的P标记RNA(PYR),位于腺病毒L3多聚腺苷化位点(见Vagner,2000)和32在HeLa核提取物中培养八种尿苷突变为腺嘌呤的P标记RNA(无PYR-less),并通过紫外线辐射交联。交联多肽要么通过SDS-PAGE(ii)直接分离,要么在用针对U2AF 65(Gama-Carvalho)的MC3单克隆抗体分离之前进行免疫沉淀(iii,车道1和2)或抗CF I的多克隆抗体(iv,车道1和2)。用于免疫沉淀的模拟柱显示在图(iii)和(iv)泳道3中,并且显示在37kDa迁移的蛋白质的非特异性免疫沉淀(*).
图6
图6
U2AF 65和CF I之间的相互作用59/25促进多聚腺苷化。(A类)使用HeLa细胞核提取物(NE)进行多聚腺苷酸化分析。32在HeLa核提取物中孵育含有AAUAAA(1–5道)或AAGAAA(6–10道)序列的P标记预分离R17-腺病毒L3 RNA底物,无需(2道和7道)或添加R17(5道和10道)或R17-U2AF 65(1–85)融合蛋白(3、4和8、9道),如上所示。通道1和通道2是输入RNA。聚腺苷酸化反应是在镁的存在下进行的2+(1-5车道)或Mn2+(6–10车道)。在6%(19:1)变性PAGE凝胶上分析RNA。(B–D)使用重组PAP、PAPΔC和CF I进行重组聚腺苷酸化分析59/25复合物和腺病毒L3预先分离底物。在所有实验中,在6%(19:1)变性PAGE凝胶上分析RNA。RNA标记的迁移位置显示在左侧。实验至少重复了三次。(B类)在CF I存在的情况下,使用重组PAP(通道2、3和5-7;0.1 pmol)或PAPΔC(通道8–12;0.1 pmole)进行聚腺苷酸化反应59/25R17(通道7和12)或R17-U2AF 65(1-85)融合蛋白(通道3、6、9和11)的复合物(通道4-7和10-12;2pmol)和1pmol。(C类)用腺病毒L3预分离RNA底物和重组PAP(通道2和4-12;0.1 pmol)在CF I存在下进行重组多聚腺苷化分析59/25(3–12道;2 pmol)和所示R17-U2AF 65融合蛋白的减少量(1和0.5 pmol)。箭头:输入RNA(D类)用β-珠蛋白预切割RNA底物和重组PAP(2–10道;0.1 pmol)在CF I存在下进行重组聚腺苷酸化分析59/25(通道2–10;2 pmol)和所示R17-U2AF 65融合蛋白的增加量(0.5和1 pmol)。箭头:输入RNA。
图7
图7
说明了U2AF 65参与拼接和3′端处理耦合的模型。我们建议(A类)U2AF 65结合到最后3′剪接位点的嘧啶束(不锈钢)前mRNA的链系CF I的59 kDa亚单位至切割/聚腺苷酸化位点(PA公司)通过这两种蛋白质之间的相互作用(双向箭头)。这导致刺激3′端加工。在(B类),PAP通过切割/多聚腺苷化复合物招募到RNA与U2AF 65相互作用(Vagner,2000)帮助将该剪接因子连接到最接近的3′剪接位点,从而刺激剪接。厚黑色通道对应内含子序列,而白色矩形对应前体mRNA的3′末端外显子。

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