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.2006年9月20日;25(18):4372-80.
doi:10.1038/sj.emboj.7601303。 Epub 2006年9月7日。

海马神经元循环BDNF进行活性依赖性分泌和LTP维持

附属公司

海马神经元循环BDNF进行活性依赖性分泌和LTP维持

斯巴达克·桑蒂等。 欧洲工商管理硕士J. .

摘要

脑源性神经营养因子(BDNF)分泌的调节在长时程增强(LTP)中起着关键作用。一般认为,这种分泌物的供应是针对突触新合成的BDNF。在这里,我们提供了证据,证明海马神经元额外循环BDNF进行活动依赖性分泌。外源性应用的BDNF被培养的神经元内化,并迅速可用于活性依赖性分泌,这是由调节新合成的BDNF分泌的相同机制控制的。此外,BDNF循环取代了新的合成途径,在海马脑片中调节LTP的维持:晚期LTP被蛋白质合成抑制所消除,在预先培养BDNF的脑片中被挽救。因此,内吞的BDNF被反馈回LTP维护所需的活性相关释放池。

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数字

图1
图1
TrkB介导的BDNF在培养海马神经元中的内吞作用。(A类)未经处理的神经元(0分钟)或在K252a预处理存在或不存在的情况下暴露于BDNF的神经元(10和60分钟)中BDNF内吞作用的时间进程,通过免疫细胞化学获得并通过共焦显微镜分析。图像代表了在四个独立实验中分析的50个神经元。棒材,20μm。(B类)BDNF对TrkB质膜表达的调节。用琼脂糖结合链霉亲和素(IP Strept)沉淀法从对照神经元或经BDNF处理的神经元的裂解液中分离出标记有活性生物素的质膜蛋白。Western blot分析表明,BDNF可降低TrkB,但不降低TrkB-t;用K252a预处理神经元可阻止这种效应。WGA-琼脂糖(IP WGA)沉淀的糖结合蛋白显示全细胞裂解液中TrkB和TrkB-t的总量。(C类)通过ELISA在与面板B.a.w.相同的裂解液中测量的外源性BDNF的细胞内积累表明通过酸处理从细胞表面剥离的BDNF免疫反应量。数据表示为平均值±标准误差的百分比(n个=6).
图2
图2
BDNF–TrkB复合物在内吞囊泡中的内化。(A类)用涂有pan-Trk抗体的磁珠从暴露于外源性BDNF的海马神经元捕获含Trk的小泡。使用抗TrkB抗体的蛋白质印迹分析显示,纯化的囊泡将TrkB表达为135kDa的单一免疫反应蛋白。(B类)酶联免疫吸附试验(ELISA)定量检测pan-Trk珠和反定型珠纯化中的BDNF。数据为平均值±标准误差(n个=4). (C类)用pan-Trk珠分离的囊泡的定量。暴露BDNF 60分钟后,囊泡数量增加。电子显微镜获得的典型图像显示,内吞囊泡附着在pan-Trk珠上。()用反型珠分离的囊泡的定量。暴露BDNF 60分钟后,囊泡数量没有变化。电子显微镜获得的典型图像显示,囊泡大小与连接在反定型珠上的突触囊泡的典型大小相同。条形,100 nm。面板C和D中的数据为平均值/100珠子±标准偏差。
图3
图3
内吞和新合成BDNF的细胞内定位。(A类)在存在或不存在TrkB-Fc的情况下,用转导BDNF-myc的腺病毒载体感染海马神经元12小时,用BDNF-YFP孵育10或60分钟。YFP荧光(绿色)和myc免疫荧光(红色)在细胞体(CB)和神经元突起中显示出明显的细胞内定位(箭头)。图像代表了五个独立实验中分析的25个神经元。BDNF-YFP之间的Colocalization(B类)或BDNF myc(C类)EEA1、BiP和GM130的免疫反应(绿色)(红色)。图像代表了在三个独立实验中分析的20个神经元。棒材,20μm。
图4
图4
内吞BDNF的活性依赖性分泌。(A类)通过延时共聚焦成像分析1–6个圆形区域的BDNF-YFP分泌(相位对比)。荧光强度表示为灰度百分比,并随时间绘制。在静息状态下,荧光不变,而KCl处理诱导区域1、4和6减少。共聚焦图像记录KCl处理前(min 4)和处理后(min 8)以假彩色(左侧刻度盘)显示的荧光强度。区域1的三倍放大(插图)显示神经元过程中的BDNF-YFP荧光。请注意,荧光在白色圆圈内减少,而在由红色方块分隔的周围区域内没有增加。这表明荧光强度的降低是由于BDNF-YFP的分泌,而不是由于其在x–y轴。数据代表了六个独立实验。棒材,20μm。(B类)在与BDNF-YFP孵育3分钟的海马神经元中,通过TIRF成像分析囊泡的胞外融合。序列图像记录了细胞体(CB)中YFP荧光的去猝灭闪光(箭头)和单个神经元的神经元过程(上部序列)或神经元网络(下部序列)。时间表示灌注KCl前后的秒数。棒材,10μm。融合到质膜上的单个囊泡(红色方块)的荧光强度(灰度)的变化。YFP和吖啶橙(AO)荧光是在一个圆形掩模中测量的,该掩模的中心区域为120像素。图上的数字(1-4)对应于右侧以灰色显示的YFP信号的序列图像。相同的序列图像显示YFP(绿色)和吖啶橙(红色)荧光重叠(黄色)。时间表示荧光信号出现(1)、亮度增加和扩散(2)、减少(3)和消失(4)的毫秒数。棒材,2μm。(C类)ELISA定量检测对照神经元或之前用BDNF-YFP处理60分钟的神经元灌流液中的BDNF-YFP。培养的神经元未显示足够量的BDNF或GFP免疫反应性,无法分别用双位点BDNF和GFP ELISA检测到。KCl处理(5分钟)使BDMF-YFP处理神经元的BDNF-YFP-免疫反应性高于基础水平。()ELISA定量测定之前接触BDNF 10、30或60分钟的神经元灌流液中的BDNF。KCl处理(5分钟)使BDNF免疫反应性高于基础水平,并通过K252a预处理加以阻止。面板C中的数据(n个=5)和D(n个=8)为平均值±标准误差。
图5
图5
内吞性BDNF分泌的药理学。(A类)通过ELISA对之前暴露于BDNF 60分钟的海马神经元灌流液中BDNF的分泌进行评估。谷氨酸(Glu)的应用可在含钙和无钙培养基(EGTA)中诱导内源性BDNF分泌。这种作用被BAPTA-AM部分阻止。BDNF的分泌也被咖啡因触发。AMPA-和t-ACPD-诱导的BDNF分泌分别被CNQX和AIDA阻止。无论是否存在APV,NMDA均无效。(B类)NT-4和NT-3可诱导BDNF的分泌,但NGF不诱导。K252a阻止了这种影响。(C类)高频刺激(50 Hz)触发BDNF分泌。TTX阻止了这种影响。()给BDNF处理的神经元注射NO供体NOR3后,BDNF分泌减少。相反,KT5823触发BDNF分泌。面板A中的数据(n个=12),B(n个=9),C(n个=12)和D(n个=6)为平均值±标准误差。
图6
图6
内吞BDNF可挽救因蛋白质合成抑制而受损的LTP。(A类)Schaffer络脉刺激在CA1区诱发的场EPSP。TBS诱导的LTP持续180分钟(对照组)(五片,五只大鼠)。在TBS前30分钟至记录结束的用茴香霉素(Aniso)灌注的切片中,LTP仅持续70-100分钟(五片,五只大鼠)。从TBS前5分钟到TBS后15分钟(Aniso+BDNF)(6片,5只大鼠),应用BDNF可完全逆转茴香霉素的作用。(B类)切片培养(公司前身:Aniso)并在整个记录过程中用茴香霉素灌注(Aniso),LTP仅持续70-100分钟(9片,7只大鼠)。用BDNF预孵育的切片拯救LTP(前置:Aniso+BDNF公司)(12片,9只大鼠),TrkB-Fc(Aniso+TrkB-Flc)(8片,6只大鼠。(C类)K252a预处理不影响LTP的维持(对照组;预inc:K252a)(10片,7只大鼠)。预孵育液和灌注液中均含有茴香霉素,可将LTP持续时间缩短至70–100分钟(Aniso;前置:Aniso+K252a公路)(九片,六只大鼠)。茴香霉素对LTP的阻断作用在BDNF和K252a预培养的切片中持续存在(Aniso;前置:Aniso+BDNF公司+K252a公路)(11片,8只大鼠)。()用LY294002(LY)预处理(五片,五只大鼠)导致在K252a存在的情况下观察到的相同效果(图C)。面板A-D中的数据是绘制为基线百分比的现场EPSP斜率的平均值±s.e.m。在TBS之前和之后180分钟记录的代表性野外EPSP记录道显示在面板顶部。

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