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.2006年4月1日;53(5):516-28.
doi:10.1002/glia.20312。

脊髓星形胶质细胞中Kir4.1通道的功能表达

附属公司

脊髓星形胶质细胞中Kir4.1通道的功能表达

M L奥尔森等。 格利亚. .

摘要

脊髓星形胶质细胞(SCA)对K+具有高渗透性,因此具有超极化静息膜电位。据信,潜在的K+通道参与神经释放的K+的摄取。这些K+通道在生物物理学和药理学方面已被广泛研究,但其在脊髓中的分子特性目前尚不清楚。使用多种方法的组合,我们证明由Kir4.1亚单位组成的通道负责调节SCA中静止的K+电导。生物物理分析表明,星形细胞Kir电流具有弱整流性,通过增加[K+]o而增强,并被微量Ba2+浓度所抑制。这些电流对选择性阻断Kir6.x通道的甲苯丁烯胺和阻断Kir1.1和Kir3.1/3.4通道的特硫平不敏感。PCR和Western blot分析表明Kir4.1在SCA中显著表达,免疫细胞化学显示Kir4.1通道定位于质膜。Kir4.1蛋白水平显示体内发育上调,与同期记录的电流增加平行。Kir4.1在体内脊髓灰质的大部分区域都有高表达,脊髓切片记录显示Kir电流显著。比较野生型小鼠和纯合型Kir4.1基因敲除小鼠SCA的电生理记录证实,基因敲除鼠中完全和选择性地缺乏Kir通道,这表明Kir4.1是SCA在体外和原位调节静息钾电导的主要通道。

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数字

图1
图1
K(K)红外电流有助于SCA的静息电导。答:5 mM[K中的典型电压阶跃响应(插图中描述的协议)+](顶部),20 mM[K+].(中间)和5 mM[K+]+100μM巴2+(底部)。B类:SCA中的小电压阶跃(-80至-40 mV,~5 Hz)会引发强大的电流,该电流在20 mM和50 mM细胞外钾([K+])并被Ba抑制2+应用程序。保持电流也发生了变化,增加了[K+],当返回到控制条件时,两者都返回到基线。抄送:电流振幅在50 mM[K范围内增加到控制的近五倍+],而每个[K的电流>90%+]Ba抑制浓度2+(n=5)。医生:在镀液中加入钡后,输入电阻显著增加2+从24.2±7.9 mΩ的平均值到549.5±116.6 mΩ(n=4)。电子邮箱:电流钳实验表明Ba的应用2+SCA去极化约20 mV(n=10,插图显示了一个典型示例)。
图2
图2
SCA中的逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)实验表明,所有K红外基因检测。第一道和最后一道凝胶为100-bp标记,第二道和第三道为阴性对照,水替代mRNA,下一道无反转录反应。对于所有阴性对照Kcnj10公司使用引物。在随后的每条路线中,首先在SCA(>9 DIC)中使用指定基因的引物,然后使用大鼠大脑cDNA文库作为阳性对照。低检测水平Kcnj1公司在大鼠大脑中,促使我们测试大鼠肾脏(KID)cDNA文库。表1总结了每种产品的引物对和预期分子量。
图3
图3
K(K)红外SCA中的通道呈弱整流。答:SCA(8 DIC)中线性电压斜坡(插图中描述的协议)引发的典型电流响应表明,Ba2+抑制反转电位周围正负电位处的显著电流。减去的钡敏感电流是弱整流(底部)。B类:相反,巴2+仅向内抑制K红外小胶质细胞(MGC,8DIC)中的电流,表明这些细胞具有强烈的整流性。减去的钡敏感电流为强整流电流(B,底部)。
图4
图4
K(K)红外SCA中的电流对甲苯磺丁脲和三硫平不敏感。答:托布他胺治疗前后的典型电压阶跃和平均值数据(峰值电流密度为-140 mV)(分别为100μM,103.0±16.0 pA/pF至96.7±16.2 pA/pF,n=6)表明SCA对托布他脲不敏感。B类:类似地,三硫平。(10 nM)对K的影响很小红外来自SCA的电流(n=6)。
图5
图5
K(K)红外4.1蛋白质在培养的SCA中表达。答:培养脊髓(SC)和皮质(CTX)星形胶质细胞(9DIC)的蛋白质印迹显示。HEK细胞作为阴性对照。以肌动蛋白作为负荷控制,剥离并重新保护该印迹。~50和200 kD的频带代表K红外4.1单体和四聚体。B类:免疫细胞化学显示K的表面定位红外4.1培养SCA。抗GFAP用于共同标记和指示星形胶质细胞。底部的彩色图像是合并的K红外4.1(绿色)和GFAP(红色)图像。DAPI染色为蓝色。比例尺=20μm。
图6
图6
K(K)红外4.1 shRNAs击倒脊髓星形胶质细胞内向整流电流。答:来自pZOFF EGFP(1,黑色)和pK的代表性电压斜坡红外4.1-OFF EGFP(2,灰色)转染显示。B类:模拟和pK的平均电流密度数据红外4.1-OFF EGFP转染细胞的电流振幅(-140 mV时的峰值电流,模拟n=13,K红外4.1shRNA,n=11,< 0.05).抄送:总结pZOFF EGFP和pK静息膜电位的条形图红外4.1-OFF EGFP转染细胞。模拟n=13,K红外4.1shRNA,n=11,< 0.05). D: 此条形图表示pZOFF EGFP和pK中输入电阻值的汇总数据红外4.1-OFF EGFP转染细胞(模拟n=13,K红外4.1shRNA,n=11,< 0.05).
图7
图7
在建立K的星形细胞培养物之前,对小白蚁进行了基因分型红外4.1蛋白质分析。答:用尾部剪刀PCR对小鼠进行基因分型,以区分野生型、杂合型和K型红外4.1淘汰动物。从左到右,100bp的DNA阶梯,两个K红外4.1基因敲除动物(-/-等位基因有383-bp带)、野生型(WT)(+/+等位基因只有634bp)、杂合型(+/-等位蛋白有两条带)和最后一条通道,小鼠基因组DNA缺失(无带)。B类:对照组和敲除组动物培养星形胶质细胞的Western blot显示K红外4.1表达。车道1WT培养的皮层星形胶质细胞;车道2,杂合培养的皮质星形胶质细胞;3、4车道,培养的2只敲除动物皮层星形胶质细胞;车道5,大鼠脊髓裂解物用作阳性对照。将该印迹剥离并用肌动蛋白作为负载对照进行再处理。
图8
图8
脊髓向内矫正K红外K中没有电流红外4.1敲除小鼠。答:显示由野生型(+/+)和K的线性电压放大器引发的全细胞电流的典型示例的轨迹红外4.1(-/-)敲除小鼠。B类:显示施加Ba前后代表性电压步骤的痕迹2+(100μM)。抄送:表示电流密度汇总数据的条形图。pA/pF)。野生型(WT),n=14;KO n=14,< 0.05).医生:表示野生型和K中平均静息膜电位值的条形图红外4.1敲除小鼠(WT,n=15;KO,n=15,< 0.05).电子邮箱:条形图表示野生型和K中输入电阻值的汇总数据红外4.1敲除小鼠(WT,n=14;KO,n=14,< 0.05).
图9
图9
大鼠脊髓的Western blot显示K的发育上调红外4.1. K(K)红外4.1大鼠脊髓P0、P15和P30的免疫反应显示出强烈的发育上调(K红外约50和200 kD时为4.1条带)。使用肌动蛋白作为负荷控制,剥离并重新保护该印迹。
图10
图10
免疫组织化学显示K红外4.1在体内脊髓灰质星形胶质细胞中显著表达。所有图像均来自颈部、腰部和胸部50μm的固定切片。答:K(K)红外4.1在每个脊髓节段的整个灰质中表达(标尺250μm)。B类:K(K)红外4.1和GLT-1(一种星形胶质细胞特异性谷氨酸转运体)在灰质中大量重叠,然而,背角顶端(箭头)的GLT-1阳性细胞和背皮质脊髓轨道(箭头)中的星形胶质细胞却很少显示K红外4.1免疫反应。抄送:K(K)红外4.1和Neu-N(一种神经元标记物)在脊髓切片中没有显示出类似的染色模式。医生:K(K)红外4.1和MBP(髓鞘碱性蛋白)是少突胶质细胞特异性标记物,在体内白质或灰质中几乎没有重叠。电子邮箱:K的高倍图像红外4.1和GLT-1显示脊髓切片中这两种蛋白质重叠。B、E中的比例尺=100μm。
图11
图11
原位星形胶质细胞的电生理学显示出与培养细胞相似的内向电流。答:显示应用Ba前后P15大鼠脊髓薄片线性电压放大器诱发全细胞电流的典型示例的轨迹2+。减去的钡灵敏电流为弱整流(A,底部)。B类:显示施加Ba前后代表性电压步骤的痕迹2+(100微米)。

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