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.2005年12月8日;438(7069):820-7.
doi:10.1038/nature04186。

VEGFR1阳性造血骨髓祖细胞启动转移前生态位

附属公司

VEGFR1阳性造血骨髓祖细胞启动转移前生态位

罗珊德拉·卡普兰等。 自然. .

摘要

肿瘤细胞转移到预定位置的细胞和分子机制基本上尚不清楚。在这里,我们证明表达血管内皮生长因子受体1(VEGFR1;也称为Flt1)的骨髓源性造血祖细胞位于肿瘤特异性转移前部位,并在肿瘤细胞到达之前形成细胞簇。使用抗体或通过从野生型小鼠骨髓中去除VEGFR1(+)细胞来阻止VEGFR1-功能,可以消除这些转移前簇的形成并防止肿瘤转移,而使用选定的Id3(分化抑制因子3)进行重建-在Id3基因敲除小鼠中,有活性的VEGFR1+细胞建立簇形成和肿瘤转移。我们还发现,VEGFR1+细胞表达VLA-4(也称为整合素α4beta1),肿瘤特异性生长因子上调了常驻成纤维细胞中的纤维连接蛋白(VLA-4配体),为进入的肿瘤细胞提供了一个允许的生态位。从不同肿瘤类型获得的条件培养基具有独特的转移扩散模式,可重定向纤维连接蛋白的表达和簇形成,从而改变转移情况。这些发现证明了VEGFR1+造血祖细胞在调节转移中的需求,并表明纤维连接蛋白和VEGFR1+VLA-4+簇的表达模式决定了器官特异性肿瘤的扩散。

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图1
图1。骨髓源性细胞形成转移前生态位
,β-加仑+照射后和LLC细胞植入前,肺中很少观察到骨髓细胞(左图)(n个= 6). 第14天,β-gal+骨髓衍生簇出现在肺实质中(左中面板和箭头区域的放大插图;n个=25),在第23天与微转移相关(右图,箭头),在总转移中相关(右表,插图;n个= 12). 图中还显示了一簇位于终末细支气管和支气管静脉之间的相关基质,这是一个常见的转移部位(右中幅)。B、 终末细支气管;五、 支气管静脉。b条、GFP+照射后和DsRed标记的B16细胞植入前肺中的骨髓(左图;n个= 6). 第14天,GFP+(绿色)BMDC没有DsRed+(红色)肿瘤细胞(左中面板和插图;n个= 12). 从第18天开始,几个DsRed+B16细胞粘附于GFP+骨髓簇(右中面板),第23天,DsRed+肿瘤细胞在簇状部位增殖(右幅;n个= 8). DAPI染色(蓝色)显示细胞核。c(c),显示骨髓源性GFP流式细胞术数据的图表+BMDC和DsRed+肺中的B16细胞,以及第14天(左侧面板)和第18天(右侧面板)的两个流程图(n个= 30; 错误条显示s.e.m.)。d日、GFP+用B16条件培养基动员的BMDCs,然后与单独接受培养基的动物(左图;P(P)< 0.01). 插图显示四天后肿瘤细胞成簇增殖(右侧插图;n个= 6).e(电子),皮内LLC或B16肿瘤动物中每×100目标场的簇数(n个= 12). 左上方面板上的比例尺应用于面板(左、左中、右中,80µm;左中插图,8µm,右中插图,20µm。右插图,47µm),b条(左,左中,80µm;左中插图,8µm;右中,右,40µm)和d日(40µm;右侧插图,20µm)。
图2
图2。前代谢簇由VEGFR1组成+造血祖细胞
,肿瘤植入前照射肺组织中VEGFR1染色(左侧面板和插图;n个=10)和LLC细胞植入后14天,肺中出现簇状物(右图,箭头所示;n个=18,3.9±0.2%细胞,VEGFR1染色每×100目标场,P(P)< 0.05).b条,c(c),第14天LLC肿瘤动物肺部的双重免疫荧光。b条,VEGFR1+(红色)和GFP+(绿色)骨髓细胞(左侧面板),VEGFR1+(红色)和CD133+(绿色)(右侧面板)。c(c),VEGFR1+(红色)和CD117+(绿色)。d日,VEGFR1+出生第40天和肿瘤发生前c-Myc转基因淋巴结中的簇(中间面板和插图显示VEGFR1+细胞(红色)),与未转基因的野生型窝友淋巴结(左侧面板)和120天c-Myc转基因淋巴结淋巴瘤(右侧面板)进行比较。在右侧面板的插图中,箭头指示VEGFR1+簇状(红色)被淋巴瘤包围(绿色)(n个= 6). 右下角的比例尺应用于面板(80µm;左侧插图,40µm),b条(20µm),c(c)(20µm)和d日(80µm;插图,8µm)。
图3
图3。VEGFR1在转移前人体组织中的表达
a–f、乳腺癌患者恶性和非恶性组织中VEGFR1染色的细胞簇(n个=15),肺(n个=15)和胃肠道(n个=3)癌症。淋巴结有乳腺癌转移的证据(,红色箭头表示肿瘤)和同一患者无恶性肿瘤的淋巴结(b条). 原发性肺腺癌(c(c))和邻近的“正常”肺没有肿瘤(d日,红色箭头表示VEGFR1+单元格)。无VEGFR1+淋巴结内可见簇状物(b条,插图;n个=6)和肺组织(d日,插图;n个=3)来自非癌症患者。图示为胃食管交界处的原发性腺鳞癌(e(电子))和一个无癌的肝淋巴结((f)). 插入(英寸)e(电子),(f),显示VEGFR1(红色)和c-Kit(绿色)的共同免疫荧光。右下角的比例尺适用于所有面板(40µm;插图,40µm.)。
图4
图4。抑制骨髓细胞归巢防止转移
,VEGFR1+-所选骨髓(R1-pos)允许微转移(红色箭头,中图),但可防止野生型(左图)在LLC植入24天后出现血管充足的大转移。插图显示CD31(内皮标记物)表达。骨髓VEGFR1缺失+细胞(非R1)消除簇和转移(右侧面板)(P(P)方差分析结果<0.01)。该表显示了每个×100目标场的簇和微转移数量*表示转移瘤充满肺部。(R1-pos,n个= 4; 非R1,n个= 4; 野生型,n个= 6; 非R1加野生型,n个= 4).b条,在LLC肿瘤小鼠中使用VEGFR1(抗R1)和VEGFR2(抗R2)抗体治疗可防止肿瘤聚集和转移(P(P)方差分析结果<0.01;对于所有组,n个= 5). 野生型肺中的箭头表示巨大的LLC转移。反R2中的箭头显示一个簇,插图显示簇内的微转移。T、 肿瘤细胞。该表显示了每×100个目标视野中肺部的簇和LLC微转移的数量*表明转移充满了组织。右下角的比例尺应用于面板(20µm;野生型嵌入,26µm,R1-pos嵌入,32µm)和b条(40µm;抗R2嵌入,20µm)。
图5
图5。VLA-4/纤维连接蛋白途径介导簇形成
a–c在肿瘤植入14天后,野生型小鼠形成表达VLA-4(插图,VEGFR1(红色)和VLA-4,MMP9和Id3(插图,血管内皮生长因子R1(绿色)和Id3)的簇。d日,给予VEGFR1的LLC肿瘤Id3敲除(KO)小鼠的肺组织+GFP公司+BMDC(P(P)方差分析结果<0.01;n个= 6). 绿色箭头显示上部插图中的区域。红色箭头(下插图)显示GFP的转移部位+血管内皮生长因子受体1+细胞。e(电子),野生型肺的基线纤维连接蛋白表达(n个=6)(左侧面板)。转移前肺的支气管周围区域在第三天基质纤维连接蛋白增加(中图,箭头),在第14天最大表达(右图)。插图中,PDGRFα的表达表明常驻成纤维细胞分泌纤维连接蛋白。(f)定量RT-PCR显示与野生型相比,LLC肿瘤小鼠肺部纤维连接蛋白表达增加(*P(P)方差分析<0.05;n个=6),并且在患有B16黑色素瘤的动物的肺中具有类似的早期趋势。右上角的比例尺应用于面板,b条,c(c)(40µm;插图,8µm),d日(80µm;右上插图,20µm,右下插图,80µm)和e(电子)(40µm;插图,20µm)。
图6
图6。LLC转移到非典型部位的重定向
,b条,通过定量RT-PCR分析,输卵管中纤连蛋白的表达增加()和肠道(b条)给予MCM的小鼠与野生型和LCM治疗的小鼠进行比较。对于输卵管*P(P)在第3-5天和**P(P)与野生型相比,第7-9天<0.001,肠道*P(P)通过方差分析,与野生型相比,第7-9天<0.001(n个= 6).c(c)条件培养基中VEGF和PlGF水平的ELISA检测(一式三份)(*P(P)与L-LCM相比<0.05**P(P)通过方差分析,与单独培养基相比,<0.01)。d日,Transwell迁移分析(一式三份)显示VEGFR1的迁移增强+连接LCM和MCM的电池(**P(P)<0.001(方差分析)。e(电子),MCM治疗将LLC的转移转移转移至B16黑色素瘤转移部位,如脾(左面板)、肾(左中间面板)、肠(右中间面板)和输卵管(右面板)。箭头表示转移边界的区域,如插图所示(n个= 6). T、 LLC肿瘤细胞。右下角的比例尺应用于面板e(电子)(200µm;插图,20µm)。

中的注释

  • 癌症生物学:大使们建立了新的网站。
    Steeg PS公司。 Steeg PS公司。 自然。2005年12月8日;438(7069):750-1. doi:10.1038/438750b。 自然。2005 PMID:16341000 没有可用的摘要。
  • VEGFR1活性无关的转移形成。
    Dawson MR、Duda DG、Fukumura D、Jain RK。 Dawson MR等人。 自然。2009年9月17日;461(7262):E4;讨论E5。doi:10.1038/nature08254。 自然。2009. PMID:19759568 免费PMC文章。

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