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.2005年10月;7(10):1021-8.
doi:10.1038/ncb1302。 Epub 2005年9月18日。

Bcl-X(L)对InsP3R调控的内质网凋亡通路

附属公司

Bcl-X(L)对InsP3R调控的内质网凋亡通路

卡尔·怀特等。 Nat细胞生物学. 2005年10月.

勘误表in

  • 自然细胞生物学。2006年3月;8(3):299

摘要

Bcl-2蛋白家族成员调节线粒体外膜的通透性以控制细胞凋亡。然而,这些蛋白质也定位于内质网(ER),其功能意义尚存在争议。在此,我们提供证据表明,抗凋亡Bcl-2蛋白调节肌醇1,4,5-三磷酸受体(InsP(3)R)ER-Ca(2+)释放通道,导致细胞凋亡抵抗增加,线粒体生物能增强。抗凋亡Bcl-X(L)与InsP(3)R的羧基末端相互作用,使内质网膜中的单个InsP(3。促凋亡蛋白Bax和tBid通过阻断Bcl-X(L)与InsP(3)R的生化相互作用来对抗这种效应。这些数据支持一种新的模型,其中Bcl-X(L)是InsP(3R的直接效应器,增加了其对InsP(三)的敏感性,并使ER Ca(2+)的释放更敏感地与细胞外信号耦合。因此,通过Ca(2+)依赖性信号转导,内质网与线粒体之间更为敏感和动态的耦合,可增强细胞生物能量学并维持生存,从而保护细胞免受凋亡。

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图1
图1
Bcl-X的相互作用L(左)使用InsPR()Bcl-X公司L(左)绑定到全长类型1、2和3 InsPR.DT40-InsP裂解液稳定表达大鼠1型InsP的R-KO细胞R和内源性表达2型和3型InsP的COS-7细胞R、 与GST–Bcl-X孵育L(左),并绑定InsP用异形特异性抗体检测R(前三组)。底部面板:内源性Bcl-X的联合免疫沉淀L(左)和类型3 InsP来自COS-7细胞的R。(b条)全长InsP的结构域结构R及其C末端区域。(c(c))Bcl-X公司L(左)在InsP的C端结合R.GST–Bcl-XL(左)未能下拉带有V5标签的1–600 type 1 InsPR片段在COS-7细胞中表达(顶面板)。1–600 InsP的表达R通过使用V5特异性抗体的细胞裂解物的western blot进行验证(第3道)。大鼠1型InsPR缺乏前600个残基(Δ1–600 InsPR) 在COS-7细胞中的表达与内源性InsP一起被成功下调R-1(中间面板)。GST–Bcl-X公司L(左)有效结合1型InsP的C末端2512–2750个残基R(底部面板)。所描绘的所有蛋白质斑点都是三个独立实验的代表。
图2
图2
Bcl-X的影响L(左)在InsP上R单通道活动。()从Sf9细胞中分离的核制剂,其内源性仅表达1型InsPR.贴片吸管接近孤立的细胞核,其上方可见完整的细胞;比例尺,15μM。(b条)InsP公司R通道活动。典型InsPR饱和(10μM)或低(10 nM)InsP条件下的单通道电流记录; 在没有或存在重组Bcl-X的情况下L(左)(rBcl-X)L(左); 1μM);或使用10 nM InsP瞬时转染Bcl-X的细胞内L(左).rBcl-X未诱发通道活动L(左)(1μM)单独使用。移液管[Ca2+]为1μM,最适合通道活性;箭头表示零电流水平。(c(c))Bcl-X的影响总结L(左)在InsP上R通道活动。在含有10 nM InsP的移液管中,开放概率(P(P)o(o))从0.022±0.001增加(n个=2)至0.61±0.09(n个=10),添加1μM rBcl-XL(左)(n个=中使用的补丁数P(P)o(o)确定)。类似地,当Bcl-XL(左)过度表达,P(P)o(o)增加到0.42±0.05(n个= 11). Bcl-X公司L(左)还增加了激活通道的数量(N个A类). 在10 nM InsP中,N个A类从0.10±0.07增加(n个=20)在控制条件下至1.00±0.16(n个=54)和1.18±0.17(n个=61)存在重组或表达的Bcl-XL(左)分别是。产品所示的总ER离子通量N个A类P(P)o(o)Bcl-X增加L(左)(注意对数刻度)。星号表示P(P)<0.001,未配对t吨-测试。His-和Flag-taged rBcl-XL(左)使用不同纯化方案产生的,同样有效,而His-tagged NCS-1不与InsP相互作用R(参考文献32),单独或与10 nM InsP组合均无影响(未显示数据)。(d日)InsP的依赖性[Ca上的R通道活性2+]在通道的细胞质表面。[Ca的影响2+]P(P)o(o),N个A类N个A类P(P)o(o)在10μM InsP存在下(黑色倒三角形),10 nM InsP(绿色圆圈),10 nM InsP+1μM rBcl-XL(左)(蓝色钻石)和10 nM InsP+Bcl-X公司L(左)表达式(红色方块)。
图3
图3
tBid和Bax拮抗Bcl-X的作用L(左)在InsP上R通道活动。()tBid和Bax抑制Bcl-X的结合L(左)至InsPR.COS-7细胞裂解物与GST–Bcl-X孵育L(左)在没有或存在重组tBid(2–200 nM;上面板)或重组Bax(200 nM,下面板)的情况下,以及结合的InsP用3型抗体检测到R。两个实验均使用重组神经元钙传感器-1(NCS-1)控制总蛋白浓度。数据是三个独立实验的代表。(b条)tBid和Bax抑制Bcl-X的电生理效应L(左)典型的电流迹线显示了在10 nM InsP存在下100 nM重组tBid或Bax的影响从瞬时转染Bcl-X的细胞中分离出的细胞核L(左).移液管[Ca2+]为1μM。(c(c))增加100 nM tBid或Bax减少P(P)o(o)0.28±0.06(n个=5)至0.07±0.03(n个=3)和0.09±0.05(n个=3)。同样,N个A类从0.74±0.14减少(n个=38)至0.26±0.10(n个=33)在有tBid的情况下,达到0.09±0.05(n个=33)在Bax存在的情况下。产品N个A类P(P)o(o)也减少了。星号表示P(P)<0.001,未配对t吨-测试。
图4
图4
Bcl-X的相互作用L(左)使用InsPR对Bcl-X至关重要L(左)对ER Ca的影响2+调控和抑制细胞凋亡。()空向量pIRES2-DsRed2或pBcl-XL(左)-IRES2-DsRed2在DT40-WT和DT40-InsP中稳定表达R-KO细胞。1型和3型InsP的表达水平R、 Bcl-X公司L(左)western blot检测OxPhos复合物IV(COXIV;亚单位1)。线粒体复合物IV蛋白在Bcl-X中的表达没有改变L(左)-表达克隆。描述的斑点是三个独立实验的代表。(b条)Bcl-X的影响L(左)钙的表达2+ER含量(Ca2+急诊室). 描述细胞质[Ca变化的典型记录2+]([钙2+])在DT40-WT和DT40-InsP中应用1μM thapsigargin(TG)稳定转染Bcl-X的R-KO细胞L(左)或仅矢量。2+急诊室通过[Ca的单细胞成像间接估计2+]thapsigargin对ER-Ca急性抑制的反应2+吸收。每条记录道代表图像区域内至少六个细胞的平均值±标准偏差。条形图总结了thapsigargin的作用;数据表示多个试验中至少30个细胞的平均值±标准偏差。星号表示P(P)<0.05,方差分析。静息平均值[Ca2+]范围为80至100 nM,四个细胞系的重复克隆之间没有显著差异(数据未显示)。(c(c))[加利福尼亚州2+]5μg ml的瞬态响应−1稳定转染Bcl-X的DT40-WT细胞中的抗BCR抗体(抗IgM)L(左)或仅矢量。汇总数据代表了多项试验中至少30个细胞的峰值振幅(平均值±s.e.m)。(d日)用20μg ml处理后的细胞活力−1DT40-WT(固体符号)和DT40-InsP的抗BCR抗体(抗IgM)(时间0)稳定表达Bcl-X的R-KO(开放符号)细胞L(左)(红色)或单独矢量(与中相同的克隆b条). 使用独立克隆获得了类似的结果(参见补充信息,图S3)。
图5
图5
Bcl-XL(左)–InsP公司R相互作用调节[Ca2+]信号和线粒体NADH水平。()自发[Ca2+]三个代表性DT40-WT细胞中的振荡,稳定地单独表达载体(左)或Bcl-XL(左)(中间)和DT40-InsP表达Bcl-X的R-KO细胞L(左)(右)。(b条)仅矢量和Bcl-X之间振荡细胞的频率和数量差异(平均值±s.e.m.)L(左)-表达细胞。(c(c))DT40-WT和DT40-InsP的NAD(P)H荧光测量表达Bcl-X的R-KO细胞L(左)或载体,响应5μg ml−1抗BCR抗体(抗IgM)和FCCP(2μM)。四个独立实验的平均(±s.e.m.)静息NAD(P)H荧光和NAD(P)H荧光在抗IgM刺激下的变化绘制于d日.星号表示P(P)<0.001,方差分析。使用独立克隆获得了类似的结果(参见补充信息,图S4)。

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