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.2005年6月;79(11):6588-97.
doi:10.1128/JVI.79.11.6588-6597.2005。

人偏肺病毒M2基因开放阅读框1和2的缺失:对RNA合成、衰减和免疫原性的影响

附属机构

人偏肺病毒M2基因开放阅读框1和2的缺失:对RNA合成、衰减和免疫原性的影响

乌苏拉·J·巴赫霍尔茨等。 J维罗尔. 2005年6月.

摘要

人偏肺病毒M2基因包含两个重叠的开放阅读框,即M2-1和M2-2。证实了从这些ORF中分离出的M2-1和M2-2蛋白的表达,并恢复了重组HMPVs,其中M2-1和M3-2的表达被单独或一起消融[rdeltaM2-1、rdeltaM3-2和rdeltaM1(1+2)]。每一种M2突变病毒都能在Vero细胞中引导高效的多周期生长。缺乏M2-1的HMPV的恢复能力与人类呼吸道合胞病毒形成对比,M2-1是人类呼吸道合细胞病毒的重要转录因子。当上游M2-1 ORF的翻译被沉默时,下游HMPV M2-2 ORF的表达没有减少,表明它是单独启动的。rdeltaM2-2突变体的mRNA积累量增加了两到五倍,与基因组模板一致,表明M2-2在调节RNA合成中起作用。在仓鼠中测试复制和免疫原性。经鼻感染rdeltaM2-1或rdeltaM1(1+2)的动物在感染后第3天或第5天的肺部或鼻甲中没有可恢复的病毒,也没有产生HMPV中和血清抗体或对HMPV挑战的抵抗。因此,M2-1似乎对病毒在体内的显著复制至关重要。在感染rdeltaM2-2的动物中,仅在12只动物中的1只中发现病毒,仅在一天内在鼻甲中发现病毒。然而,所有动物都产生了高滴度的HMPV-中和血清抗体,并对野生型HMPV的攻击具有高度保护。HMPV rdeltaM2-2病毒是一种有希望的高度减毒HMPV疫苗候选。

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数字

图1。
图1。
HMPV M2基因缺失突变体概述。(A) HMPV基因组图(顶部;比例尺近似)和引入的突变。ORF显示为开放矩形,氨基酸长度如下所示。用于克隆的限制位点的位置如上所示;PacI和KpnI位点是天然存在的,NheI和BsiWI位点(盒装)是通过定点突变产生的(参考文献和本研究)。图中还显示了一个额外的基因,该基因编码如前所述构建的增强型GFP基因(5):对于每个突变体,分别在添加和不添加该GFP基因的情况下生成一个版本(例如,rgHMPV和rHMPV)。放大显示含有M2基因的PacI-BsiWI片段,ORF显示为开放矩形,括号中显示氨基酸长度;基因开始和结束信号分别显示为黑色三角形和矩形。沉默ORF的突变包括引入的终止密码子(恒星)、M2-2 ORF的部分缺失或M2基因的全部缺失(在ΔM2(1+2)的情况下)以及基因间(ig)区域的13 nt。框中列出了修改后的M2基因的核苷酸长度。用RT-PCR分析重组病毒。从感染重组体的Vero细胞中分离出总细胞RNA。第一链合成是使用横跨HMPV nt 4656到4676的第一链引物完成的。使用相同的引物和横跨HMPV nt 5529至5508的反向引物进行PCR,并在2%琼脂糖凝胶(面板a右侧)上分离产物,以确认存在缺失。(B) 沉默M2-1和M2-2 ORF的突变细节。HMPV的M2-1 ORF上游末端(HMPV nt 4724至4768)显示与M2-1消融表达相关的突变(顶框)。M2-2 ORF的上游端与M2-1 ORF的下游端重叠(HMPV nt 5234至5288),显示M2-2(底部框)的消融表达涉及突变。野生型序列位于每个框的顶部,引入的更改如下所示。翻译开始和结束密码都是黑体字。在氨基酸水平上,终止密码子显示为星星。ΔM2-2突变体中涉及的缺失的上游端显示为(Δ)。编码蛋白的身份如右图所示。
图2。
图2。
对用表达质粒转染或感染野生型或突变型HMPV的细胞中表达的HMPV蛋白进行Western blot分析。(A) 用质粒pT7-N、pT7-P或pT7-M2-1转染稳定表达T7 RNA聚合酶的BHK-21细胞,在T7启动子(5)的控制下携带指示的HMPV ORF(分别为1到3通道)。或者,Vero细胞在1个PFU/cell的输入MOI下感染rHMPV、rΔM2-1、rΔM2-2、r△M2(1+2)或HMPV CAN97-83,或者被模拟感染(分别为通道4至9)。在转染或感染后72 h收获细胞,制备裂解物,并在还原和变性条件下使用4-12%梯度凝胶进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳。将Western blot转移到硝化纤维素后,将膜与纯化HMPV(5,6)的兔超免疫血清孵育,然后与辣根过氧化物酶结合的山羊抗兔抗体孵育。结合抗体通过化学发光显示。N、P和M2-1蛋白以及可能与M蛋白对应的物种都被标记。(B) 感染带有或不带有与M2-2蛋白融合的HA表位标签的GFP表达重组体72小时后,获取Vero细胞细胞裂解物的Western blot。将膜与HMPV(上面板)的高免疫血清或HA表位(HA-7;Sigma)的小鼠单克隆一级抗体(下面板)孵育。
图3。
图3。
细胞内HMPV M2 RNA的Northern blot分析。将感染了野生型和M2突变型病毒并为图2所示实验采集的一等分Vero细胞用于分离细胞内总RNA。细胞感染rHMPV、rΔM2-1、r△M2-2和rΔM1(1+2),或HMPV CAN97-83病毒或被模拟感染(分别为1至6道)。RNA在含有0.44 M甲醛的1%琼脂糖凝胶上电泳,转移到尼龙膜上,并与[α-32P] HMPV M2特异的标记双链DNA探针。用荧光成像仪检测放射性。单反子M2信使核糖核酸和M2-SH和M2-SH-G读通信使核糖核酸(5,6)在右边被鉴定。
图4。
图4。
细胞内HMPV RNA积累的Northern印迹时程分析。用rgHMPV或指示的M2突变体感染Vero细胞的复制培养物,并在12、24、36、48和72小时后收获。分离细胞内总RNA,如图3图例所示进行分离,并分别使用SP6和T7 RNA聚合酶从F cDNA体外合成的单链负义(上面板)和正义(下面板)RNA探针通过Northern杂交进行分析。
图5:。
图5:。
(A) rgHMPV和M2突变体的多步生长动力学比较。Vero细胞在0.01 PFU/cell的MOI下感染rgHMPV、rgΔM2-1、rg△M2-2或rg△M2(1+2)。每隔24小时,取培养基样品(0.5 ml的2-ml覆盖物),并用等量的含有5μg/ml胰蛋白酶的新鲜培养基代替。样本通过斑块分析和抗HMPV抗血清免疫染色进行分析。每个时间点由两个孔表示,每个病毒滴定重复进行。显示了平均值。(B) 在感染后4天,以0.03的MOI用所示重组体对Vero细胞进行间接免疫荧光检测。细胞用4%缓冲多聚甲醛固定,并用1%Triton X-100渗透。用兔对HMPV的高免疫血清观察HMPV抗原,然后用Alexa488-结合的山羊抗兔抗体(分子探针)。用4′,6-二氨基-2-苯基吲哚(DAPI;Sigma)进行核染色质染色(蓝色)。

类似文章

引用人

工具书类

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