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.2004年11月23日;101(47):16549-54.
doi:10.1073/pnas.0404678101。 Epub 2004年11月9日。

Lhx2-/-小鼠发生肝纤维化

附属公司

Lhx2-/-小鼠发生肝纤维化

Ewa Wandzioch公司等。 美国国家科学院程序. .

摘要

肝纤维化是对任何类型慢性损伤的创伤愈合反应,其特征是细胞外基质(ECM)蛋白沉积逐渐增加,其主要来源是活化的肝星状细胞(HSC)。由于LIM同源框基因Lhx2在HSC中表达,并且Lhx2(-/-)小鼠的肝脏发育被破坏,我们详细分析了Lhx2(-/-)胚胎的肝脏发育。Lhx2(-/-)胚胎含有大量活化的HSC,并显示与肝纤维化相关的ECM蛋白的沉积逐渐增加,表明Lhx2抑制HSC活化。将Lhx2 cDNA转染到人HSC株中可下调活化HSC特征基因的表达。此外,Lhx2(-/-)肝脏的细胞组织受到破坏,肝内胚细胞的基因表达模式发生改变,ECM蛋白沉积增加是这些异常的先兆。总的来说,这些结果表明Lhx2负性调节HSC的激活,因此其在发育中的HSC失活似乎与慢性肝损伤的创伤愈合反应所触发的信号相似。本研究建立了一个自发和可复制的肝纤维化动物模型,并揭示了肝干细胞中Lhx2的表达对肝细胞的正确组织和分化至关重要。

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数字

图1。
图1。
细胞外基质蛋白沉积增加和细胞外基质相关基因表达增加长x2/胎儿肝脏。从E14.5 WT解剖的胎儿肝脏(A类)和长x2/(B类)突变体中的胚胎在肝脏表面和肝叶之间显示出纤维状组织(箭头所示)。E14.5 WT的组织切片(C类,G公司,、和K(K))和长x2/(D类,H(H),J型、和L(左))胎肝和E12.5 WT(E类)和长x2/(F类)胎儿肝脏。用Gordon和Sweet的方法处理的切片,对网织蛋白纤维进行银染,以显示III型胶原纤维(如箭头所示C–F类). 抗胶原蛋白IV免疫染色切片(G公司H(H),红色),抗层粘连蛋白(J型,红色)和抗纤连蛋白(K(K)L(左),绿色)抗体。(M(M))实时PCR分析比较E14.5 WT(黑条)和长x2/(灰色条)肝脏。数据以一式三份的一次实验的平均值表示。在另外两个独立制备的cDNA上进行的另外两个实验也获得了类似的结果(数据未显示)。P(P)I型胶原蛋白<0.0001,以及P(P)前羟化酶<0.005。误差线表示标准偏差。(比例尺指示1000μminA类B类,最小30μC–F类和50μminG–L.)
图2。
图2。
Lhx2在胎儿肝脏的HSC中表达,并且长x2/肝脏显示具有激活表型的HSC比例增加。WT的组织学切片(A–DG–I型)和长x2/(E类J–L型)肝脏。E13.5 WT肝切片与Lhx2反义探针杂交的共焦显微镜观察(B类,红色),随后用抗结蛋白抗体进行免疫染色(A类,绿色)显示合并图像中黄色所示的许多细胞中结蛋白和Lhx2的共存(C类,箭头)。(D类E类)E14.5 WT和突变肝脏切片分别用抗结蛋白(红色)和抗E-钙粘蛋白(绿色)抗体进行免疫染色,以显示星状细胞和内胚层细胞。(F类)WT和WT结蛋白阳性细胞相对比例的比较长x2/胎儿肝脏。用抗结蛋白抗体免疫染色的E15.5野生型和突变型肝脏切片的共聚焦显微镜(G公司,J型,绿色)和抗ASMA抗体(H(H)K(K),红色)主要显示合并图中突变肝脏细胞中这些基因的共表达(L(左),黄色)。(比例尺指示30μminA–CG–L和90μminD类E类.)
图3。
图3。
与活化HSC相关基因的相对表达水平分析。(A类)WT和突变肝脏的比较。对来源于E14.5 WT(黑条)的cDNA进行实时PCR分析长x2/(灰色条)肝脏。数据显示为三份典型实验的平均值。*,P(P)< 0.0001;**,P(P)< 0.001; ***,P(P)= 0.03. 对独立cDNA制备的另外两个分析显示出类似的结果。血小板衍生生长因子;TGFβ1,转化生长因子β1型;肿瘤坏死因子α。(B类)用Lhx2 cDNA(灰色条)或载体对照(黑色条)转染的人HSC株LX-2的比较。数据显示为三份典型实验的平均值。P(P)人类ASMA(hASMA)<0.005,以及P(P)人类I型胶原蛋白(h型胶原蛋白I)<0.01。误差线表示标准偏差。
图4。
图4。
细胞外基质蛋白沉积增加先于细胞外基质组织的破坏长x2/肝脏。E11.5 WT的横截面(A类C类)和突变型(B类D类)用抗E-钙粘蛋白抗体(绿色)对肝脏进行免疫染色,以显示成肝细胞和抗胶原蛋白IV抗体(红色)(A类B类)或用成肝细胞/肝细胞特异性抗白蛋白抗体(棕色)进行免疫染色,然后用苏木精-伊红进行复染(C类D类). E14.5 WT的横截面(E类,H(H),J型,L(左)、和N个)和突变型(F类,G公司,,K(K),M(M)、和O(运行))肝脏。切片用成肝细胞/肝细胞特异性抗白蛋白抗体(棕色)进行免疫染色,随后用苏木精-伊红进行复染(E–I公司,L(左)、和M(M))或肝外胆管特异性染色双色D凝集素(J型K(K)或用血管内皮特异性抗PECAM抗体(红色)和肝母细胞特异性抗AFP抗体(绿色)进行免疫染色(N个O(运行)). 蛋白阳性内胚层细胞均匀分布于WT肝脏的整个肝叶(E类,H(H)、和L(左)),而突变肝脏中的内胚层细胞分布不均(F类)形成导管结构(G公司,箭头)。纤维组织存在于肺门区长x2/肝脏(,箭头),血管周围(M(M))和整个肝脏的纤维隔(G公司,箭头)。突变的肝外胆道上皮似乎正常(K(K),箭头)胚胎与野生型相比(J型,箭头)胚胎。WT肝脏中形成正常的正弦网络(N个),而在突变肝脏中可以看到管腔扩张的血管状结构(箭头)(O(运行)). dv,静脉导管。(比例尺指示30μminA类,B类,G公司、和L–O型; 最小100μC类,D类,H(H)、和; 和500μminE类,F类,J型、和K(K).)
图5。
图5。
突变肝脏中形成导管结构的内胚层细胞富含表达成肝细胞/肝细胞特异性和胆管细胞特异性基因的细胞。E14.5 WT的连续横截面(A类,C类,E类、和G公司)和一个变种人(B类,D类,F类、和H(H))抗白蛋白抗体对肝脏的免疫染色(A类B类,红色),抗E-钙粘蛋白抗体(C类D类,绿色),抗AFP抗体(E类F类,红色)或抗胆管细胞特异性细胞角蛋白抗体(G公司H(H),红色)。内胚层细胞簇长x2/肝脏强烈表达所有四种标志物(B类,D类,F类、和H(H)),而野生型肝脏中的内胚层细胞表达较低水平的E-钙粘蛋白(C类)少数WT内胚层细胞表达胆管细胞特异性细胞角蛋白(G公司). (比例尺指示主图像中的100μm和30μmin插图.)

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引用人

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