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比较研究
.2003年4月15日;17(8):991-1008.
doi:10.1101/gad.1074403。 Epub 2003年4月2日。

秀丽隐杆线虫的microRNA

附属机构
比较研究

秀丽隐杆线虫的microRNA

李·P·林等。 基因开发. .

摘要

MicroRNAs(miRNAs)是一类丰富的微小RNAs,被认为可以调节植物和动物中蛋白质编码基因的表达。在本研究中,我们描述了一种识别多个基因组中保守的miRNA基因的计算程序。应用这个称为MiRscan的程序,结合分子鉴定和验证方法,我们已经鉴定出线虫秀丽隐杆线虫中的大多数miRNA基因。已验证的miRNA基因总数为88个,尚待检测或验证的基因不超过35个。这88个miRNA基因代表48个基因家族;其中46个家族(包括88个基因中的86个)在briggsae隐杆线虫中保守,22个家族在人类中保守。超过三分之一的蠕虫miRNAs,包括新发现的lin-4和let-7基因家族成员,在幼虫发育过程中有差异表达,这表明这些miRNA在介导幼虫发育转变中发挥作用。大多数存在于非常高的稳态水平,每个细胞超过1000个分子,有些细胞超过50000个分子。我们对蠕虫miRNA及其表达模式的普查有助于定义这类非编码RNA,为功能研究奠定基础,并为其他物种中miRNA基因的更全面分析提供了工具。

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图1
图1
MiRscan用于在两个基因组的对齐片段中识别miRNA基因的标准。(A类)MiRscan评分的七个组成部分mir-232型属于线虫/C.briggsae这些组件在MiRscan预测的上下文中进行注释mir-232型,预测的miRNA残基用紫色圈出,验证的miRNA(表2)残基用绿色圈出。括号中是每个成分的得分,将其相加得出总得分为13.9。MiRscan预测在共识范围内可视化秀丽隐杆线虫/亮杆线虫二级结构,由ClustalW(Thompson等人,1994年)和Alidot(Hofacker和Stadler,1999年)生成。显示的是秀丽线虫残基着色的序列表示保守序列和配对电位。残留物保存于C.布里格斯为红色,在保持其预测的配对或不配对状态时变化的残基为蓝色(保持配对的变体残基也用黑色圈出),既不保持序列也不保持配对的残基为灰色。(B类)每个MiRscan标准的估计相对重要性。估计基于50个先前识别的线虫miRNAs的训练集与约36000个潜在茎环的背景集之间的相对熵。由于配对和保守性被用于识别潜在的干环,这些类型的标准在区分miRNA基因和非蛋白编码基因组序列方面的总贡献被低估了。同样,由于只评估了距离回路2-9 bp的候选值,因此低估了距离回路距离的总贡献。
图2
图2
miRNA基因的计算鉴定。(A类)35697的MiRscan分数分布秀丽线虫可能形成茎环并在中具有松散保守性的序列C.布里格斯。请注意Y(Y)-轴是不连续的,因此可以更容易地看到作为MiRscan训练集的50个先前报告的miRNA基因的分数(红色)。这50个基因的得分被绞死,以防止其价值膨胀,因为它们存在于训练集中。(B类)高得分分布尾部的扩展视图。该视图捕获了训练集50个基因中的49个(红色)。先前报告的58个miRNA位点满足当前指定为miRNA基因的标准(Ambros等人,2003年)的中位数得分为13.9(绿色箭头)。请注意,该中位数得分是50人训练集第29个和第30个最高得分位点得分之间的中点;也就是说,它被指定为包括之前报道的8个miRNA基因后的中位得分,这些基因不在训练集中,因为它们在鉴定保守发夹时丢失了,通常是因为它们缺乏足够的miRNAC.布里格斯同源性。图中显示了通过克隆验证的基因得分(黄色),以及尚未克隆但通过Northern分析验证的六个基因得分(紫色)。(C类)通过MiRscan和Northern印迹鉴定的miRNA基因的示例用于验证它们。茎环注释如图1A所示,但描述的是DNA序列而非RNA序列。Northern杂交显示了野生型(N2)或dcr-1型蠕虫,使用我们的标准方案(Std.)或额外的聚乙二醇沉淀步骤进行分离,以富集小RNA(Enr.)。纯合子蠕虫dcr-1型种群降低了Dicer活性,增加了miRNA前体的水平(例如,miR-250-L和miR-255-L),这有助于验证miRNA位点,尤其是那些未检测到成熟miRNA的位点(例如,miR-255)。RNA标记(左边车道)为18、21、24、60、78和119 nt。所示miR-250干环的miR扫描得分为14.7。mir-250反向补体得分更高,为18.4分,但Northern分析未检测到。因此,预测mir-250型该基因被指定为具有更高核心的分值,尽管不正确,但具有替代茎环(表1;图2B)。
图3
图3
对齐秀丽线虫和人类miRNA序列,可以在家族中组合在一起。人类miRNAs(Hs公司)是在人类细胞中鉴定的miRNAs(Lagos-Quintana等人,2001年;Mourelatos等人,2002年),或是在其他脊椎动物中鉴定的micRNAs的直系物(Lagos-Quintata等人,2002、2003年;Lim等人,2003年)。
图4
图4
的表达式秀丽线虫幼虫发育期间的miRNAs。分析混合阶段N2蠕虫(M)、胚胎(E)、幼虫阶段(L1、L2、L3、L4)、成虫(A)、,glp-4(bn2)成年(G)、N2涂抹器(D)、混合阶段him-8(e1489)蠕虫(H)和N2饥饿抑制L1幼虫(sL1)。强烈信号用黑色矩形表示,微弱信号用灰色矩形表示。87人中秀丽线虫在发育期的北方人(miR-41、miR-78、miR-249、miR-253、miR-256和miR-255)中未检测到6个miRNAs。(A类)miRNAs在线虫发育过程中组成性表达。(B类)stRNA,线-4第7列和类似表达的miRNAs,它们在幼虫发育期间开始表达,并在成年期保持表达。(C类)具有不连续发育表达模式的miRNA。(D类)dauer期表达增强的miRNAs的Northern分析。为了控制加载,对用于miR-234和miR-248的印迹以及用于miR-247的印迹进行了U6 snRNA(U6)的重复。用荧光成像仪定量显示,U6信号的车道到车道的变化是原来的三倍。按照U6信号标准化,miR-248信号在dauer期是大多数其他阶段的四倍,除了glp-4型成人的miR-234信号是正常人的两倍,而dauer和L1的miR-244信号最高,这些阶段的信号大约是其他阶段平均值的两倍。(E类)Northern分析线-4RNA及其paralog,miR-237。
图5
图5
miRNA表达的定量分析。(A类)Northern杂交用于量化miR-66的丰度。从用于克隆的野生型(N2)混合阶段蠕虫和glp-4(bn2)用合成miRNA标准的浓缩过程对年轻成年蠕虫进行重复运行。当来自HeLa细胞的总RNA被替换时,来自标准的信号没有改变大肠杆菌tRNA作为RNA载体,表明其他miRNA的存在并不影响miRNA的膜固定或探针的杂交。(B类)miR-66浓度过程定量的标准曲线。数据的最佳拟合是由等式表示的直线 = 3.3x个0.96(右2 = 0.99). 平均信号的内插glp-4型车道表示glp-4型样品中含有240 pg miR-66(折线)。(C类)miRNA和U6 snRNA的分子丰度glp-4型样品测定如所示A类B类。然后,考虑到用于制备样品的动物数量,以及在RNA制备早期添加到制备中的放射性标记miRNA的产量,计算每个细胞的平均分子数。进行了类似实验,以确定HeLa RNA样品中所示人类miRNA的数量。(D类)miRNA分子丰度与克隆频率的相关性。混合阶段RNA样品中的分子数量按照glp-4型样本,然后绘制成miRNAs从该混合阶段人群中克隆的次数的函数(表1)。该线最适合数据,并由方程式表示 = 0.32x个(右2 = 0.78)。
图6
图6
miRNA(红色)和miRNA*(蓝色)序列在其预测的折叠前体的背景下。已排序克隆的数量显示在括号中。对于每个miRNA和miRNA*,有色残基是最常见的克隆物种的残基。一些miRNA*s和大多数miRNAs的测序克隆之间存在3′异质性。miRNA*s测序克隆中未发现5′末端的异质性,而miRNA*测序克隆的异质性很少见;当它发生时,在代表每个miRNA的许多克隆中没有观察到超过一个。
图7
图7
显示克隆miRNA的MiR扫描分数与miRNA克隆和测序次数之间不存在相关性的曲线图。表2的80个克隆位点中有9个没有得分(左边)因为这些基因的潜在同源物在现有的C.布里格斯排序读取。

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