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.2002年11月;110(10):1493-501.
doi:10.1172/JCI16356。

非特异性炎症刺激对CD8T细胞介导的抗菌免疫的拯救作用

附属公司

非特异性炎症刺激对CD8T细胞介导的抗菌免疫的拯救作用

罗马A Tuma等。 临床研究杂志. 2002年11月.

摘要

通过过继转移病原特异性T细胞重建保护性免疫在细胞免疫受损患者中已取得成功。然而,体外扩增的CD8-CTL的体内有效性是可变的。例如,如果T细胞输注后48小时内发生挑战性感染,过继转移的单核细胞增生李斯特菌特异性CD8 CTL只能提供保护性免疫。在这里,我们显示转移的CTL在淋巴腔中持续存在数周,但在转移后的第一周内,它们对细菌挑战的反应降低。虽然在感染前不到48小时转移的T细胞增殖,但在感染前7天转移的T细胞死亡。值得注意的是,在T细胞输注时用抗CD40抗体治疗小鼠,可重新编程转移T细胞,使其增殖,并在7天后细菌攻击时产生保护性免疫。我们的研究首次证明,CD40介导的刺激可以独立于并发抗原暴露影响CD8 T细胞活化。通过短暂的非特异性炎症刺激调节CD8 T细胞长期反应性的能力对过继免疫治疗具有重要意义。

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数字

图1
图1
体外-扩增LLO91-99–特异性CD8 CTL具有效应表型,并在肽脉冲APC第二次体外刺激后7-14天保留不同的TCR Vβ谱。()用单克隆抗体染色CD8α、CD62L、Thy1.1、CD44、CD25和H2-K的CD8 CTL株d日四聚体与LLO络合91-99左面板:活CD8和Thy1.1 T细胞上的点图门控。中间和右侧面板:活体CD8 T细胞上的点图。上象限中的数字表示CD8 T细胞总数的百分比。(b条)LLO特异性溶解度百分比91-99–存在不同浓度LLO的特定CD8 CTL线91-99肽的测定方法51使用P815(H2)进行Cr释放试验d日)目标细胞。(c(c))体外刺激后,通过标准细胞内细胞因子染色评估CD8 CTL株产生的TNF和IFN-γ。(d日)用TCR Vβ特异性抗体对CD8 CTL细胞系进行TCR Vα表达染色。LLO的百分比91-99-用每种TCR抗体染色的特异性CD8 CTL显示出来。数据是两个独立实验的代表。
图2
图2
CD8 CTL维持效应器表型,在转移到原始、同基因受体后不会增殖。(d日)6×10转让后三天和七天6Thy1.1 CD8 CTL进入Thy1.2 BALB/c受体,对脾细胞进行CD8α、Thy1.1、CD44、CD25和LLO染色91-99氢-Kd日四聚体。()活CD8 T细胞上的点图是门控的,Thy1.1阳性细胞的百分比(轴)和LLO91-99(x个轴)。(b条)Thy1.1和LLO染色阳性的细胞绝对数91-99转移后第3天和第7天;每个点代表一只单独的鼠标。(c(c))LLO公司91-99–转移前用CFSE标记特异性CD8 CTL,以及CFSE的百分比+提示转移后3天的Thy1.1 CD8 T细胞。(d日)LLO的激活标记物表达91-99–转移72小时后测定特异性T细胞。Thy1.1的着色显示在x个轴,并用LLO染色91-99氢-Kd日CD62L、CD25和CD44的四聚体和轴。活CD8 T细胞上的点图被选通。(,c(c),以及d日)点图代表每组三到四只小鼠。
图3
图3
91-99–特异性CD8 CTL对野生型具有高度的保护性免疫力单核细胞增生李斯特菌T细胞输注后30分钟或48小时(Lm)感染(). T细胞受体没有受到LLO挑战的保护92系列 单核细胞增生李斯特菌CTL输注后30分钟,显示体内抗原特异性(b条). 每个器官的CFU显示在对数刻度轴。指示了CTL转移和感染之间的时间间隔。对照组动物接受PBS,而实验组动物接受6×106LLO公司91-99–特定CD8 CTL*检测下限。数据是每组2到3只动物的平均值和SD,是两个独立实验的代表。
图4
图4
转移的CTL所产生的保护性免疫与感染72小时后的扩张相关。()我们注射了6×106T细胞进入受体,随后感染野生型单核细胞增生李斯特菌或LLO92系列 单核细胞增生李斯特菌转移后30分钟或48小时。感染72小时后,对脾细胞进行CD8α、Thy1.1和LLO染色91-99氢-Kd日四聚体。活体CD8淋巴细胞上的点图是门控的。Thy1.1的着色显示在轴,四聚体染色x个轴。点图表示每组4-6只动物。(b条)CD8 CTL用CFSE标记,并转移到感染或未感染的受体小鼠中。转移Thy1.1 CFSE荧光72小时后+、LLO91-99–测定特异性T细胞。(c(c))由Thy1.1和H2-K测定的转移T细胞绝对数d日四聚体在各种条件下绘制。车道1,Lm92系列CTL转移后30分钟感染;第2车道,CTL转移后30分钟Lm感染;3巷,CTL转移48小时后Lm感染;第4泳道,CTL转移后7天Lm感染;第5通道,无Lm感染,CTL转移后第3天;第6通道,无Lm感染,CTL转移后第7天;第7泳道,CTL转移后7天Lm感染。5、6和7在输注CTL前2天和1天以及感染后12小时腹腔注射100μg抗CD40抗体。每个点代表一个单独的鼠标*,†条件*和之间转移的T细胞绝对数量的差异达到统计显著性(P(P)<0.05(学生)t吨测试)。
图5
图5
输注7天后,转移的CTL失去了保护性免疫力和扩张能力。抗CD40抗体(FGK45)治疗可防止保护性丧失。()收件人收到6×106LLO公司91-99–特定CTL并感染野生型单核细胞增生李斯特菌7天后。在感染72小时后,对肝脏和脾脏中的细菌进行计数。左面板:无FGK45;在CTL转移前2天和1天以及感染后12小时,对右侧面板100μg FGK45进行腹腔注射。对照组动物接受PBS(b条)左面板:LLO正向散射(FSC)91-99–在FGK45存在(灰度直方图)或不存在(黑线)的情况下转移后7天的特定CTL。右侧面板:每组2-3只小鼠的平均FSC强度。(c(c))感染72小时后,对脾细胞进行CD8α、Thy1.1和LLO染色91-99氢-Kd日四聚体。右上象限显示CD8淋巴细胞总数的百分比。(d日)CTL转移和FGK45给药后两周,如但在不感染受体的情况下,用LLO在体外重新刺激脾细胞91-99.存在不同浓度LLO的特异性溶解百分比91-99肽由标准品测定51铬释放测定,使用P815(H2d日)目标细胞。钻石,加上体内FGK45;正方形,不含体内FGK45。中的数据是每组2到3只动物的平均值和SD,是两个独立实验的代表。点图位于c(c)代表五到六种动物。中的数据d日是两种动物的平均值和SD。
图6
图6
CD4 T细胞记忆不能恢复输注LLO的能力91-99–特异性CD8 CTL,在转移后7天扩大或授予保护性免疫力。()我们转移了6×106LLO公司91-99–特定CTL进入受体小鼠并感染野生型小鼠单核细胞增生李斯特菌7天后。感染前30分钟,50×106早于28天用LLO免疫BALB/c小鼠的脾细胞92系列 单核细胞增生李斯特菌注入CTL受体。感染后72小时,对脾脏和肝脏进行培养;细菌计数绘制在轴。(b条)我们转移了6×106LLO公司91-99–感染LLO的受体小鼠的特异性CTL92系列 单核细胞增生李斯特菌提前28天以上。输注CTL七天后,受体感染了野生型单核细胞增生李斯特菌,72小时后,对脾细胞进行CD8α和Thy1.1染色,并用LLO染色91-99氢-Kd日四聚体。活CD8 T细胞上的点图被选通。Thy1.1的着色显示在轴,四聚体染色显示在x个轴。右上象限中的数字表示CD8 T细胞总数的百分比。数据代表每组两只动物。
图7
图7
抗CD40抗体给药的时间决定了CTL对体内感染反应的结果。将CTL注入受体小鼠并用单核细胞增生李斯特菌7天后。感染72小时后测定肝脏和脾脏的细菌计数。动物在指定的时间点接受抗CD40抗体或同种对照。实验动物接受6×106感染前7天的CTL(1-4通道)。对照组动物腹腔注射PBS(第5和第6栏)。数据代表每组三只动物。CTL转染前1天、2天和感染后12小时的1巷CD40单抗;通道2、CD40单抗在CTL转移前1天和2天;通道3,CD40单克隆抗体感染后12小时;通道4,在CTL转移前1天、2天和感染后12小时进行同型控制;第5道,在CTL转移前1天、2天和感染后12小时进行同型控制;CTL转移前1天和2天以及感染后12小时,CD40单克隆抗体第6通道。检测下限,50。
图8
图8
体内CD40刺激促进记忆性T细胞与输注效应性T细胞的分化。()将CTL注入1天和2天前接受抗CD40抗体的受体小鼠。受试者在7天后被感染,并在感染12小时后再次服用抗CD40抗体。三周后,小鼠被重新注入10万只野生型单核细胞增生李斯特菌72小时后,对脾细胞进行CD8α、Thy1.1和CD62L染色,并用LLO染色91-99氢-Kd日四聚体。活CD8 T细胞上的点图被选通。Thy1.1显示在轴,四聚体染色显示在x个轴。上象限中的数字表示CD8 T细胞总数的百分比。(b条)在CTL输注后30分钟,在未注射抗CD40抗体的情况下感染受体小鼠。3周后对这些受试者进行挑战,并按照这些地块代表每组三只动物。

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    1. Walter EA等人。通过移植供体的T细胞克隆,重建异基因骨髓受者的细胞免疫对抗巨细胞病毒。《新英格兰医学杂志》,1995年;333:1038–1044.-公共医学
    1. Papadopoulos EB等。输注供体白细胞治疗异基因骨髓移植后EB病毒相关淋巴增生性疾病。《N Engl J Med.1994》;330:1185–1191.-公共医学
    1. Rooney CM等。输注细胞毒性T细胞预防和治疗异基因移植受者中EB病毒诱导的淋巴瘤。鲜血。1998;92:1549–1555.-公共医学
    1. Zajac AJ等。由于激活的T细胞持续存在而没有效应器功能,导致病毒免疫逃避。《实验医学杂志》1998;188:2199–2204.-项目管理咨询公司-公共医学
    1. Brodie SJ等。转移的HIV-1特异性细胞毒性T细胞的体内迁移和功能。《国家医学》,1999年;5:34–41.-公共医学

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