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.2023年2月11日;16(1):9.
doi:10.1186/s13045-023-01400-0。

FBXO22通过靶向MLL重排急性髓系白血病中的BACH1促进白血病发生

附属公司

FBXO22通过靶向MLL重排急性髓系白血病BACH1促进白血病发生

朱晓娜等。 血液肿瘤杂志. .

摘要

背景:选择性靶向白血病干细胞(LSC)是治疗急性髓细胞白血病(AML)的一种很有前景的方法,而确定此类治疗靶点至关重要。越来越多的证据表明FBXO22在实体瘤的发展和治疗反应中起着关键作用。然而,其在白血病发生中的潜在作用仍基本未知。

方法:我们用造血细胞特异性FBXO22基因敲除小鼠建立了混合系白血病(MLL)-AF9诱导的AML模型,以阐明FBXO2在AML进展和LSC调控中的作用,包括自我更新、细胞周期、凋亡和生存分析。免疫沉淀结合液相色谱-串联质谱分析、Western印迹和拯救实验研究FBXO22致癌作用的机制。

结果:FBXO22在AML中高表达,尤其是在MLL重排(MLLr)AML中。FBXO22敲低后,人MLLr白血病细胞出现明显增加的凋亡。虽然造血细胞中Fbxo22的条件性缺失并没有显著影响造血干细胞的功能,但Fbxo22缺失后MLL-AF9诱导的白血病发生被显著消除,同时连续移植后LSC显著减少。从机制上讲,FBXO22促进了MLLr AML细胞中BACH1的降解,BACH1过度表达抑制了MLLr-AML的进展。与此一致,BACH1杂合缺失显著逆转了Fbxo22缺陷小鼠的延迟白血病发生。

结论:FBXO22通过靶向BACH1促进MLLr AML进展,而靶向FBXO22可能是消除LSC而不影响正常造血的理想策略。

关键词:急性髓细胞白血病;BTB和CNC同源性1(BACH1);FBXO22;白血病干细胞(LSC)。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明,他们没有相互竞争的利益。

数字

图1
图1
高度表达的FBXO22是AML尤其是MLLr AML细胞生长所必需的。A类在GSE13159数据库中分析FBXO22 mRNA的表达水平。B类以组蛋白3(H3)为负荷对照,采用Western blot分析AML患者(包括1例M1或M2、9例M4和4例M5 AML样本)和非白血病患者骨髓单个核细胞(BMMC)中FBXO22蛋白的表达。C、, D类用shFBXO22#1、shFBXO22#2和shNC感染AML 3#MNCs,并用β-肌动蛋白免疫印迹FBXO22蛋白作为负载对照(C类). 计算指定日期的细胞数(D类).E类对感染shNC、shFBXO22#1和shFBXO2#2的AML 3#跨国公司进行集落形成试验(左),并计算第10天的集落数(右,n个 = 3).F类,G公司用shFBXO22#1、shFBXO2#2和shNC感染THP-1细胞,用β-actin免疫印迹FBXO22蛋白作为负荷对照(F类),并在指定日期通过CCK-8分析检测细胞增殖(G公司).H(H)对感染shNC、shFBXO22#1和shFBXO2#2的THP-1细胞进行集落形成试验(左),并计算第7天的集落数(右,n个 = 3).K(K)细胞周期()或凋亡(J型)shNC、shFBXO22#1和shFBXO22#2感染的THP-1细胞的分析(n个 = 3). 以α-微管蛋白作为负荷控制,对指示蛋白进行免疫印迹(K(K)).L(左),M(M)感染shNC或shFBXO22#1的THP-1细胞稳定转染EV或标记的shRNA-resistant FBXO22,并用β-肌动蛋白进行免疫印迹,作为负载对照(L(左)),并在指定日期通过CCK-8分析检测细胞增殖(M(M)).N个计数所示THP-1细胞的集落形成试验(左)和电镀后第7天的集落数(右,n个 = 3).O(运行)指示THP-1细胞的凋亡分析(n个 = 3). 误差条表示平均值±标准偏差。统计显著性由双尾非配对确定t吨测试(A类,E类,H(H)J型N个O(运行))或双向方差分析(D类,G公司M(M))、和显示了个值。所有实验重复三次,结果相似
图2
图2
删除Fbxo22公司不能影响正常造血。A类的示意图Fbxo22公司显示Cre重组酶活性后floxed外显子3-4缺失的floxed等位基因。的使用Mx1-芯Scl-Cre公司-急诊室导致pIpC或三苯氧胺治疗后HSC的特异性缺失。B类 Fbxo22公司通过pIpC治疗后指定时间的PBMC和BM基因分型(左)、pIpC-治疗后第21天的BM总细胞的qRT-PCR(中)和Western blot(右)评估缺失。C类,D类代表性流式细胞仪图(左)和LSK细胞百分比(LinSca-1型+c-套件+)、LT-HSC(林Sca-1型+c-套件+CD150型+CD48型),MPP1(林Sca-1型+c-套件+CD150型CD48型),MPP2(林Sca-1型+c-套件+CD150型+CD48型+)和MPP3(林Sca-1型+c-套件+CD150型CD48型+) (C类,对,n个 = 5) 和LK细胞(LinSca-1型c-套件+)、CMP(林Sca-1型c-套件+CD16/32型CD34型+)、GMP(林Sca-1型c-套件+CD16/32型+CD34型+)和MEP(林Sca-1型c-套件+CD16/32型CD34型)BM中的Fbxo22公司+/+Fbxo22公司−/−老鼠(D类,对,n个 = 5). (E–K公司)主要竞争性移植试验用Fbxo22公司+/+Fbxo22公司−/−BM CD45.2细胞(1×106)与CD45.1竞争细胞(1×106). 指定时间内供体或受体来源的PB细胞百分比(E类),并在16周时分析显示的细胞(F类K(K),n个 = 5).L(左)一期移植采用分选的LT HSC(1×10)来自Fbxo22公司+/+Fbxo22公司−/−BM细胞和1×105来自CD45.1竞争对手的BM细胞。在指定的时间点分析PB中供体或受体衍生细胞的百分比。误差条表示平均值±标准偏差。统计显著性由双尾非配对确定t吨测试。所有动物实验重复至少两次,结果相似
图3
图3
损失Fbxo22公司在连续移植过程中损害MLL-AF9诱导的小鼠AML发展。A类系列菌落和菌落编号的代表性图像(左侧)(中部和右侧,n个 = 3) 由GFP组成+从主要收件人收集的单元格。B类,C类流式细胞仪图(左)和GFP百分比+PBMC中的细胞(右,B,n个 = 5) 以及GFP的百分比+细胞和MG(GFP+Mac-1型+第1组+)在BM中(右,C类,n个 = 5) 接受二次AML细胞移植的患者。D类Giemsa-Wright染色的代表性图像(左)和成纤维细胞的频率(右)Fbxo22公司+/+Fbxo22公司−/−第二次移植的BM细胞。红色和绿色箭头分别指向具有代表性的原始细胞和分化细胞。E类,F类大体病理学(左,E类)和相对重量(右,E类)苏木精-伊红染色(F类)二级受体的肝脏和脾脏(n个 = 5).G公司,H(H)受体小鼠的存活曲线Fbxo22公司+/+Fbxo22公司−/−MLL-AF9型+第二次BM细胞(G公司)和第三次移植(H(H)) (n个 = 6). 误差条表示平均值±标准偏差。统计显著性由双尾非配对确定t吨测试(A类E类)或对数库测试(G公司,H(H))、和显示了个值。所有动物实验至少重复两次,结果相似
图4
图4
损失Fbxo22公司损害LSC的功能。A类,B类流式细胞术图(左)和MKs的百分比(A类)和LGMP(B类)来自主要移植受体的BM(右,n个 = 6).C类,D类流式细胞仪图(左)和MKs的百分比(C类)和LGMP(D类)来自二次移植受体的BM(右,n个 = 5).E类序列菌落和菌落编号(n个 = 3) 由…组成Fbxo22公司+/+Fbxo22型−/−从主要受体收集的LGMP细胞。F类收件人的生存曲线Fbxo22公司+/+Fbxo22公司−/−二次移植后的LGMP细胞(n个 = 6).G公司限制稀释分析,比较Fbxo22公司+/+Fbxo22公司−/−MLL-AF9型+骨髓细胞。指示的GFP+ Fbxo22公司+/+Fbxo22型−/−MLL-AF9型+从主要受体收集的BM细胞与2×10共移植5骨髓竞争细胞转化为致死性辐射受体。利用L-Calc软件计算竞争性再填充单位(CRU)。H(H),细胞周期(H(H))或凋亡()二次移植受者骨髓中LGMP细胞的分析Fbxo22公司+/+Fbxo22公司−/−AML细胞(n个 = 5–6). 误差条表示平均值±标准偏差。统计显著性由双尾非配对确定t吨测试(A类E类H(H),)或对数库测试(F类)、和显示了值。所有动物实验重复至少两次,结果相似
图5
图5
FBXO22促进MLLr AML细胞中BACH1的降解。A类通过LC-MS/MS鉴定THP-1细胞中FBXO22相互作用蛋白的工作流程,以及在两个独立实验中鉴定的28个重叠蛋白的热图分析。B类对标记FBXO22转染THP-1细胞的输入物和免疫沉淀中的指示蛋白进行Western blot分析。C类THP-1细胞内源性BACH1输入和免疫沉淀中指示蛋白的Western blot分析。D类Western blot分析三个克隆衍生的THP-1细胞系中的指示蛋白,这些细胞系中FBXO22缺失(gFBXO22#1、gFBXO2#2和gFBXO 22#3),并且有三个阴性对照(gNC)。E类感染shNC、shFBXO22#1和/或shFBXO2#2的THP-1和MV4-11细胞中指示蛋白的Western blot分析。星号表示非特定带。F类MLL-AF9中指示蛋白的Western blot分析+原代受者AML BM细胞注射Fbxo22公司+/+,Fbxo22公司−/−,Scl-Cre公司+;Fbxo22公司飞行/飞行Scl-Cre公司;Fbxo22型飞行/飞行AML细胞。G公司感染EV和标记FBXO22的THP-1细胞中指示蛋白的Western blot分析。H(H)慢病毒将编码FBXO22的Dox诱导表达系统引入THP-1。通过Dox给药指定时间对THP-1细胞中的指示蛋白进行Western blot分析。CHX(100μg/ml)处理THP-1 gNC#1和gFBXO22#3细胞系指定时间的指示蛋白的Western blot分析。J型PDX032110数据库中AML患者FBXO22和BACH1蛋白表达水平之间的Pearson相关性。K(K)比较FBXO22之间BACH1蛋白表达水平和FBXO22PDX032110数据库中的蛋白质表达组。将样本分类为FBXO22和FBXO22蛋白质表达采用最大选择秩统计法。L(左)感染EV和标记FBXO22的THP-1 gFBXO22#3细胞中指示蛋白的Western blot分析4Cl(10 mM)持续24小时。M(M),N个用EV和Flag标记的FBXO22感染的THP-1 gFBXO22#3细胞(M(M))、THP-1 gNC#1和gFBXO22#3细胞(N个)用10μM MG132处理6 h,收获并提交体内泛素化分析,然后用所示抗体进行Western blot分析。误差条表示平均值±标准偏差。统计显著性由双尾非配对确定t吨测试(K(K))和显示了个值。所有实验重复至少三次,结果相似。中的数字D类L(左)显示蛋白质水平的量化
图6
图6
BACH1抑制MLLr AML进展。A类分选GFP中指示蛋白的Western blot分析+招标书+AML细胞感染电动汽车巴赫1。星号表示非特定带区。B类流式细胞仪图(左)和GFP百分比+招标书+第二受体PBMC中的细胞(右)(n个 = 6).C类,D类流式细胞术图(左)和GFP的百分比+招标书+单元格(C类)或MK(D类)来自第二接收人的BM(右,n个 = 6).E类Giemsa-Wright染色的代表性图像电动汽车巴赫1第二次移植的BM细胞。右边显示了原始细胞频率的量化。红色和绿色箭头分别指向具有代表性的原始细胞和分化细胞。F类,G公司大体病理学(左)和相对重量(右)(F),苏木精-伊红染色(G公司)二级受体的肝脏和脾脏(n个 = 6).H(H)收件人的生存曲线电动汽车巴赫1GFP公司+招标书+二次移植后的细胞(n个 = 7).,J型细胞周期()或凋亡(J型)GFP分析+招标书+来自第二受体的BM中的细胞(n个 = 7–8). 误差条表示平均值±标准偏差。统计显著性由双尾非配对确定t吨测试(B类F类、和,J型)或对数库测试(H(H))、和显示了个值。所有动物实验重复至少两次,结果相似
图7
图7
FBXO22介导的BACH1降解可维持AML进展。A类通过Western blot在BM-GFP中评估指示蛋白+原代移植后来自指定小鼠的细胞。这些数字显示了蛋白质水平的量化。星号表示非特定带。B类GFP的百分比+来自移植了Fbxo22公司+/+巴赫1+/+, Fbxo22公司−/−巴赫1+/+, Fbxo22公司+/+巴赫1+/−Fbxo22公司−/−巴赫1+/−AML细胞(n个 = 5).C类第二次移植时所示小鼠骨髓细胞Giemsa-Wright染色的代表性图像。右边显示了原始细胞频率的量化。D类,E类大体病理学(左,D类),相对重量(右,D类)苏木精-伊红染色(E类)二级受体的肝脏和脾脏(n个 = 5).F类二次受者注射Fbxo22公司+/+巴赫1+/+, Fbxo22公司−/−巴赫1+/+, Fbxo22公司+/+巴赫1+/−Fbxo22型−/−巴赫1+/−AML细胞(n个 = 7). 误差条表示平均值±标准偏差。统计显著性由双尾非配对确定t吨测试(B类D类)或对数库测试(F类)、和显示了个值。所有动物实验重复至少两次,结果相似

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    1. Dohner H、Weisdorf DJ、Bloomfield CD。急性髓细胞白血病。《N Engl J Med.2015》;373:1136–1152. doi:10.1056/NEJMra1406184。-内政部-公共医学
    1. 癌症基因组图谱研究N.Ley TJ、Miller C、Ding L、Raphael BJ、Mungall AJ等。成人新发急性髓性白血病的基因组和表观遗传学景观。《新英格兰医学杂志》2013;368:2059–2074. doi:10.1056/NEJMoa1301689。-内政部-项目管理咨询公司-公共医学
    1. Shlush LI、Mitchell A、Heisler L、Abelson S、Ng SWK、Trotman-Grant A等。追踪急性髓性白血病复发至干细胞的起源。自然。2017;547:104–108. doi:10.1038/nature22993。-内政部-公共医学
    1. Shlush LI、Zandi S、Mitchell A、Chen WC、Brandwein JM、Gupta V等。急性白血病中白血病前造血干细胞的鉴定。自然。2014;506:328–333. doi:10.1038/nature13038。-内政部-项目管理咨询公司-公共医学
    1. Muntean AG,Hess JL公司。混合白血病的发病机制。病理学年鉴。2012;7:283–301. doi:10.1146/annurev-pathol-011811-132434。-内政部-项目管理咨询公司-公共医学

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