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.2022年3月21日;18(6):2527-2539.
doi:10.7150/ijbs.69266。 eCollection 2022年。

TDG通过DNMT3A/TIMP2轴抑制人结肠癌细胞的迁移和侵袭

附属公司

TDG通过DNMT3A/TIMP2轴抑制人类结肠癌细胞的迁移和侵袭

苗吉玉等。 国际生物科学杂志. .

摘要

背景:结直肠癌是最常见的恶性肿瘤之一,复发率和死亡率都很高。胸腺嘧啶DNA糖基化酶(TDG)是碱基切除修复途径中的关键分子。近年来,TDG在肿瘤发展中的作用越来越受到重视。然而,TDG在CRC中的具体功能尚不清楚。方法:采用迁移和侵袭实验分别评估TDG和DNA甲基转移酶3α(DNMT3A)在大肠癌中的生物学功能。在裸鼠中进行肿瘤转移试验,以确定体内TDG的作用。TDG和DNMT3A之间的相互作用通过免疫共沉淀(co-IP)测定。染色质免疫沉淀分析(ChIP)用于预测DNMT3A的DNA结合位点。我们还进行了甲基化特异性PCR(MSP)来检测TIMP2甲基化的变化。结果:TDG抑制人结肠癌细胞的迁移和侵袭在体外体内TDG通过与DNMT3A结合促进其泛素化和降解。TDG对siDNMT3A的干扰也抑制人结肠癌细胞的迁移和侵袭。此外,ChIP、MSP和救援实验结果证实,TDG加速DNMT3A的降解,显著调节TIMP2的转录和表达,从而影响人类结肠癌细胞的迁移和侵袭。结论:我们的研究结果表明,TDG通过DNMT3A-TIMP2轴抑制人结肠癌细胞的迁移和侵袭,这可能是CRC发展和治疗的潜在治疗策略。

关键词:大肠癌;DNMT3A;TDG;TIMP2;转移;甲基化。

PubMed免责声明

利益冲突声明

竞争利益:作者声明不存在竞争利益。

数字

图1
图1
CRC患者组织和细胞中的生物信息学分析和TDG表达。(A)不同病理分类CRC患者中TDG的表达。(B)TDG低表达与预后不良有关。(C)与结直肠癌相比,转移性结直肠癌中TDG的表达降低。(D-E)用qRT-PCR和western blotting检测TDG在NCM460和CRC细胞中的表达*P(P)<0.05, **P(P)<0.01, ***P(P)<0.001.
图2
图2
TDG抑制结肠癌细胞的迁移、侵袭和转移。(A-B)通过qRT-PCR和western blotting检测TDG的过表达效率。(C)采用跨阱法检测结肠癌细胞的迁移和侵袭。(D-E)通过qRT-PCR和蛋白质印迹检测迁移和侵袭相关分子。F.裸鼠转移瘤模型的构建*P(P)<0.05, **P(P)<0.01, ***P(P)<0.001.
图3
图3
TDG与DNMT3A相互作用。(A-B)用TDG质粒转染后,通过qRT-PCR和蛋白质印迹检测DNMT3A的表达。(C-D)应用Co-IP活化TDG和DNMT3A的结合。(E)CHX促进了DNMT3A的降解速率。(F)MG132抑制TDG引起的DNMT3A的下降。(G)TDG增加DNMT3A的泛素化水平*P(P)<0.05, **P(P)<0.01, ***P(P)<0.001.
图4
图4
siDNMT3A抑制结肠癌细胞的迁移和侵袭。(A-B)用qRT-PCR和western blotting检测DNMT3A的抑制效率。(C)采用跨阱法检测结肠癌细胞的迁移和侵袭。(D-E)转染siDNMT3A-1/2后,用qRT-PCR和western blotting检测迁移和侵袭相关分子*P(P)<0.05, **P(P)<0.01, ***P(P)<0.001.
图5
图5
DNMT3A可以调节TIMP2的表达。(A)从UCLCAN数据库分析的CRC中TIMP2高度甲基化。(B)5-Aza促进TIMP2mRNA的表达。(C)ChIP检测TIMP2启动子的DNMT3A结合区。(D)MSP检测TIMP2启动子甲基化水平*P(P)<0.05, **P(P)<0.01, ***P(P)<0.001.
图6
图6
DNMT3A部分逆转了TDG在结肠癌细胞中的作用。(A)MSP检测TIMP2启动子甲基化水平。(B)对结肠癌细胞(C+C:Ctrl.+Control,T+C:TDG+Control,C+D:Ctrl.+DNMT3A,T+D:TDG+DNMT3A)的迁移和侵袭进行跨孔分析。(C-D)用qRT-PCR和western blotting检测TIMP2的表达*P(P)<0.05, **P(P)<0.01, ***P(P)<0.001.
图7
图7
大肠癌中TDG介导的TIMP2去甲基化模型。

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