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.2021年11月27日;21(1):627。
doi:10.1186/s12935-021-02332-w。

miR-29c下调通过调节肺癌恶病质中白血病抑制因子的活性促进肌肉萎缩

附属公司

miR-29c的下调通过调节肺癌恶病质中白血病抑制因子的活性促进肌肉萎缩

谢凯如等。 癌细胞Int. .

摘要

背景:癌症恶病质是一种以显著减重为特征的消瘦性疾病,可归因于骨骼肌无力。在癌症发展过程中,microRNAs充当致癌基因或肿瘤抑制因子。此外,它们还与肌肉发育和消瘦有关。本研究旨在探讨miR-29c与肺癌恶病质肌肉萎缩的机制及其相关性。

方法:表达分析数据取自癌症基因组图谱(TCGA)数据库。qRT-PCR分析以探讨miR-29c和白血病抑制因子(LIF)的表达水平。利用Lewis肺癌(LLC)细胞系建立恶病质模型,探讨miR-29c和LIF在肺癌恶病质中的作用。此外,还进行了体外(C2C12肌管)和体内(LLC荷瘤小鼠)实验,以探讨miR-29c和LIF在肺恶病质中的机制。

结果:对肺癌恶病质模型的分析表明,miR-29c下调,其表达与肌肉分解代谢活性呈负相关。miR-29c的过度表达减轻了恶病质表型。机制研究表明,LIF是miR-29c的直接靶基因,在体内外均上调。分析表明,LIF通过JAK/STAT和MAP-激酶途径促进肌肉萎缩。

结论:研究结果表明miR-29c与恶病质表型呈负相关,miR-29c-LIF轴是癌症恶病质的潜在治疗靶点。

关键词:恶病质;白血病抑制因子;肌肉萎缩;miR-29c。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有相互竞争的利益。

数字

图1
图1
肺腺癌组织中miR-29c的低表达水平与生存相关A类LUAD中miR-29c的Kaplan-Meier曲线用于总生存率(OS)、进展后生存率(PPS)和无进展生存率(FP)。BmiR-29c在LUAD中下调。基于TCGA数据库的数据,miR-29c在39个LUAD组织和配对正常组织中的表达水平。学生的t吨-测试*P(P) < 0.05.C在LLC小鼠模型中miR-29c被抑制。采用qRT-PCR分析检测了miR-29c在LLC荷瘤小鼠肿瘤和对照组小鼠肺中的表达水平。数据(n个=3)由学生分析t吨-测试**P(P) < 0.01.D类miR-29c在LLC细胞中被下调。采用qRT-PCR分析检测LLC细胞中miR-29c和miR-21的表达水平。数据(n个 = 3) 由Student’s分析t吨-测试****P(P) < 0.0001
图2
图2
LLC细胞中miR-29c的高表达可改善肌肉分解代谢和肌管萎缩。A类miR-29c模拟转染后,LLC细胞中miR-29c的表达水平升高。通过qRT-PCR分析测定miR-29c的microRNA水平。数据(n=3)由Student’st吨-测试***P(P) < 0.001.B,CLLC细胞中miR-29c的高表达可改善C2C12肌管的分解代谢反应。用转染miR-29c模拟物或其阴性对照物的LLC细胞条件培养液处理C2C12肌管48小时。通过蛋白质印迹法评估参与分解代谢反应的蛋白质。数据(n=3)由Student’st吨-测试*P(P) < 0.05, ***P(P) < 0.001, ****P(P) < 0.0001.D类LLC中miR-29c的高表达可改善C2C12肌管萎缩。C2C12肌管按照B,C并分析MHC染色肌管的肌管直径(48小时)。E类LLC中miR-29c的高表达可改善C2C12肌管萎缩。C2C12肌管按照B,C并分析肌管直径(48h)。数据(n=3)由Student’st吨-测试****P(P) < 0.0001
图3
图3
抑制LLC细胞中miR-29c的表达可导致肌肉分解代谢和肌管萎缩。A类miR-29c抑制剂转染后,LLC细胞中miR-29c的表达水平受到抑制。通过qRT-PCR分析测定miR-29c的microRNA水平。数据(n=3)由Student’st吨-测试****P(P) < 0.0001.B,CLLC细胞中miR-29c的抑制表达诱导C2C12肌管中的分解代谢反应。用转染miR-29c抑制剂或其阴性对照的LLC细胞条件培养液处理C2C12肌管48小时。通过蛋白质印迹法评估参与分解代谢反应的蛋白质。数据(n=3)由Student’st吨-测试*P(P) < 0.05, **P(P) < 0.01, ****P(P) < 0.0001.D类抑制LLC中miR-29c的表达可导致C2C12肌管萎缩。C2C12肌管按照B,C并分析MHC染色肌管的肌管直径(48小时)。E类抑制LLC中miR-29c的表达可导致C2C12肌管萎缩。C2C12肌管按照B,C并分析肌管直径(48h)。数据(n=3)由Student’st吨-测试****P(P) < 0.0001
图4
图4
miR-29c通过靶向恶病质诱导因子LIF发挥其活性。A类miRWALK中miR-29c潜在靶基因集的文氏图(http://mirwalk.umm.uni-heidelberg.de/),目标扫描(http://www.targetscan.org/)miRDB公司(http://mirdb.org/)以及高表达恶病质诱导因子的数据集。B含LIF 3′-UTR或LIF 3’-UTR突变体的荧光素酶质粒的构建。CLIF是miR-29c的潜在靶基因。293T细胞中萤光素酶活性的测定。数据(n=3)由Student的t吨-测试****P(P) < 0.0001纳秒P(P) > 0.05.D类用转染miR-29c模拟物或其阴性对照物的LLC细胞条件培养液处理C2C12肌管48小时。免疫印迹法检测LIF蛋白。数据(n=3)由Student’st吨-测试***P(P) < 0.001.E类C2C12肌管用转染有miR-29c抑制剂或其阴性对照的LLC细胞的条件培养基处理48小时。免疫印迹法检测LIF蛋白。数据(n=3)由Student’st吨-测试***P(P) < 0.001
图5
图5
LLC肿瘤诱发的癌症恶病质导致体重减轻和骨骼肌无力。A类LLC细胞和PBS注射后22天C57BL/6小鼠体重增长曲线。BLLC荷瘤小鼠患有癌症恶病质。CN组和TB组无瘤体、腓肠肌和胫骨前肌的重量变化。数据(n=8)分析如下t吨-测试**P(P) < 0.01, ***P(P) < 0.001, ****P(P) < 0.0001.CLLC荷瘤小鼠肌肉萎缩。CN和TB小鼠腓肠肌H&E染色中间横截面的代表性图像。数据(n=8)经χ分析2分析****P(P) < 0.0001
图6
图6
LIF和相关信号通路在LLC恶病质模型中被激活。A类通过western blotting检测腓肠肌组织中参与分解代谢反应和LIF信号通路的蛋白。数据(n=3)由Student’st吨-测试*P(P) < 0.05; **P(P) < 0.01; ***P(P) < 0.001.BLIF在恶病质小鼠骨骼肌中升高。通过qRT-PCR分析测定LIF的mRNA水平。数据(n=3)由Student的t吨-测试*P(P) < 0.05.C腓肠肌组织LIF的代表性免疫组织化学(IHC)染色(Brown代表LIF蛋白)
图7
图7
LIF通过JAK/STAT和MAP-激酶途径促进癌症诱导的肌肉萎缩。A类LCM在C2C12肌管中诱导分解代谢反应。用LLC细胞条件培养液处理C2C12肌管48小时。通过蛋白质印迹法评估参与分解代谢反应的蛋白质。数据(n=3)由Student’st吨-测试*P(P) < 0.05; **P(P) < 0.01; ***P(P) < 0.001.BC2C12肌管中LIF升高。C2C12肌管按照A类通过qRT-PCR分析测定C2C12肌管中LIF的mRNA水平。数据(n=3)由Student’st吨-测试****P(P) < 0.0001.CLIF及其信号通路在C2C12肌管中被激活。C2C12肌管按照A类通过western blotting评估LIF信号通路中的蛋白质。数据(n=3)由Student’st吨-测试*P(P) < 0.05; ***P(P) < 0.001.D类LCM诱导C2C12肌管萎缩。C2C12肌管按照A类C2C12肌管的代表性免疫荧光(MHC,红色)图像。E类LCM诱导C2C12肌管萎缩。C2C12肌管按照A类并分析肌管直径(48h)。数据(n=3)由Student’st吨-测试****P(P) < 0.0001.F类miR-29c直接靶向LIF。用LIF siRNA转染C2C12肌管,并用LLC细胞的条件培养基处理48小时。采用western blotting检测C2C12肌管中LIF、atogin1和MuRF1的蛋白水平。数据(n=3)由Student’st吨-测试*P(P) < 0.05; **P(P) < 0.01; ***P(P) < 0.001
图8
图8
miR-29c的下调通过调节LIF活性导致肌肉萎缩。A类LLC中miR-29c的高表达抑制LIF信号通路。用转染miR-29c模拟物或其阴性对照物的LLC细胞条件培养液处理C2C12肌管48小时。通过western blotting评估LIF信号通路中的蛋白。数据(n=3)由Student’st吨-测试*P(P) < 0.05; **P(P) < 0.01.B抑制LLC中miR-29c的表达激活LIF信号通路。用转染miR-29c抑制剂或其阴性对照的LLC细胞条件培养液处理C2C12肌管48小时。通过western blotting评估LIF信号通路中的蛋白。数据(n=3)由Student’st吨-测试*P(P) < 0.05; **P(P) < 0.01.CmiR-29c直接针对LIF。用LIF siRNA转染C2C12肌管,并用转染miR-29c抑制剂的LLC细胞条件培养液处理48小时。通过western blotting评估LIF、atogin1和MuRF1的蛋白水平。数据(n=3)由Student’st吨-测试*P(P) < 0.05

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