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.2018年3月15日;37(6):e98452。
doi:10.15252/embj.201798452。 Epub 2018年1月15日。

RNA核富集序列的高通量鉴定

附属公司

RNA核富集序列的高通量鉴定

Chinmay J Shukla公司等。 欧洲工商管理硕士J. .

摘要

在后基因组时代,已经确定了数千个假定的非编码调控区域,如增强子、启动子、长非编码RNA(lncRNAs)和小肽骨干。这些不断增长的目录需要高通量分析来大规模测试其功能。大规模平行报告分析大大增强了对非编码DNA元素的理解全体在这里,我们提出了一种大规模并行RNA分析(MPRNA),可以分析10000个或更多RNA片段的RNA功能。我们应用MPRNA鉴定lncRNA中基于RNA的核定位域。我们检测了11969个寡核苷酸,其中38个人类lncRNA与细胞溶质转录物融合。在细胞分馏和条形码测序后,我们确定了109个独特的RNA区域,这些区域显著丰富了细胞核中的细胞溶质转录物,包括富含细胞质的基序。这些核富集序列高度保守,在全球核分馏测序中表现过度。重要的是,其中许多区域通过单分子RNA荧光独立验证就地杂交。总的来说,我们证明了MPRNA在未来基于RNA的功能研究中的实用性。

关键词:RNA;区域从头推断;高通量报告分析;lncRNA;核定位。

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数字

图1
图1。大规模平行核糖核酸含量测定(MPRNA)以识别核糖核酸核浓缩信号
  1. 实验概述。最左边:寡核苷酸池设计。双链DNA(dsDNA)寡核苷酸是通过计算扫描110 nt窗口中38个亲本lncRNA转录物(表EV1)设计的,序列寡核苷酸之间间隔10 nt。这些lncRNA衍生序列(灰色)附加了独特的条形码和通用的引物结合位点,产生了11969个153 bp的寡核苷酸(表EV1)。lncRNA中的垂直线表示剪接连接。从左数第二个:示意图总结了每个寡核苷酸的设计。从右数第二个:记者设计。将寡核苷酸池克隆到报告质粒中,作为fsSox2型(minCMV,最小CMV启动子;pA,多聚腺苷酸化序列)。最右边:MPRA工作流。这个fsSox2型●将寡核苷酸报告池瞬时转染到HeLa细胞中。在表达48小时后,收集并分离细胞以分离细胞核,并通过靶向RNA测序量化每个寡核苷酸的核富集。来自未分离细胞的匹配全细胞裂解物作为对照。

  2. 读取映射和规范化。读取的前10 nt与条形码序列之间的完美匹配用于“映射”读取。为了保证映射过程的健壮性,我们在条形码上游的90个碱基对中允许不超过两个不匹配(请参阅我们的分析包中的“mapReads”函数-请参阅代码可用性部分)。使用“normCounts”表将计数标准化为库大小(请参阅分析包和GEO数据,请参阅代码和数据可用性部分)。

  3. 每个核苷酸的计数基于每个寡核苷酸的标准化计数进行建模。当核苷酸“A”与寡核苷酸i重叠时1,我2,我和我4,该核苷酸的计数由每个寡核苷酸(i)的计数中位数建模1–i4; 请参阅我们的分析管道中的“modelNucCounts”函数)。

  4. 然后使用核苷酸计数通过以下方式推断差异区域:(1):找到候选区域并为其中的每一个分配汇总统计数据;接下来(2):通过排列样本标签生成空候选区域并使用它们分配经验P(P)第1步对候选区域的价值,以确定重要区域。

  5. 差分区域调用可以正确识别马拉特1实线:核(红色)和全细胞(灰色)组分中的每核苷酸丰度,沿着马拉特1转录本,基于包含该核苷酸的所有寡核苷酸的聚集行为(阴影区域:±SD,六个生物复制品的中位数)。

图EV1
图EV1。每项的质量评估MPRNA
  1. 寡核苷酸在克隆质粒池中的分布。(i) 对于几个不同的寡聚体,显示均匀计数的单峰表示极少量的累积,以及(ii)整个寡聚物表示(零计数时的小起伏)。

  2. 核浓缩NEAT1公司,GAPDH、,SNHG5系列由每个生物复制中的qRT-PCR测定(左)(误差条:±SD)。六个重复组中位数±SD的核富集。

  3. 使用材料和方法中概述的方案,与GFP质粒共转染的HeLa细胞的转染效率。

  4. 每个样品中的初始寡聚物回收率均大于70%。平均而言,只有0.2%的寡聚物(即?5寡聚体)未在核馏分样品中检测到,而在总(全细胞裂解物)样品中未检测到?0.4%(即?50寡聚体内)。

  5. 条形图显示了技术复制品(TR)和生物复制品(BR)分离的核(N)和总分数(T)不同样品的所有读数的绘图百分比。

  6. 显示同一寡核苷酸计数之间复制间差异的方框图。检测到的技术差异较低,这表明技术复制品之间的计数差异较小。实心水平线是中间值,而下铰链和上铰链对应于第一和第三个四分位(25第个和75第个百分位数)。上部晶须从铰链延伸至最大值,距离铰链不超过1.5×IQR。较低的晶须从铰链延伸至铰链最大1.5×IQR的最小值。晶须末端以外的数据为离群值,单独绘制。

  7. 人和小鼠中与人RRD、小鼠RRD和其他核苷酸重叠的核苷酸的CDF图FIRRE公司基因座。类似于马拉特1M区和E区,MPRNA重述了已知RNA核保留元件RRD的功能FIRRE公司轨迹。由于实验是在人类HeLa细胞中进行的FIRRE公司RRD是核浓缩的,而小鼠FIRRE公司RRD不影响fsSox2型(P(P)值:Mann–Whitney检验人类FIRRE转录物中RRD核苷酸与人类和小鼠FIRRE抄本中其他非RRD核苷酸的比较)。

  8. 差异区域调用正确识别的核保留元素FIRRE公司实线:核(红色)和全细胞(灰色)部分的每核苷酸丰度,沿FIRRE公司转录物,基于包含该核苷酸的所有寡核苷酸的聚集行为(阴影区域±SD,六个生物复制的中间基)。

图2
图2。新型lnc核糖核酸核浓缩信号
  1. A–E

    识别具有不同亚细胞定位模式的lncRNAs中的差异区域(DR)。数据如图1E所示。已建立的亚细胞定位模式范围从(A),占据单个突出的核焦点(ANRIL公司,FISH类别1)至(E),表现为弥漫的,主要是细胞溶质模式(编号_024412,鱼类5类;卡维利, 2015).

  2. F类

    每10 kb lncRNA序列平铺发现的DR数量对于每个FISH类都是相似的。

  3. G公司

    DRs比大多数lncRNA序列更保守。比较DR中核苷酸的相位坐标分数的箱线图(红色)寡核苷酸池中的所有其他核苷酸(灰色).P(P)值:Mann–Whitney试验。实心水平线是中间值,而下铰链和上铰链对应于第一和第三个四分位(25第个和75第个百分位数)。上部晶须从铰链延伸至最大值,距离铰链不超过1.5×IQR(其中IQR是四分位范围内)。较低的晶须从铰链延伸至铰链最大1.5×IQR的最小值。晶须末端以外的数据为离群值,单独绘制。

图3
图3。lnc中丰富的母题核糖核酸核浓缩信号
  1. A类

    在DRs中丰富的新57 nt基序的位置权重矩阵(PWM)XIST公司(E类值<0.05)。

  2. B

    在整个XIST公司基因座。

  3. C类

    多序列比对XIST公司图案(有色核苷酸)在XIST公司DR。相邻序列用灰色表示。

  4. D类

    21种不同lncRNAs的DR中富集的新型富C 15 nt基序的PWM(E类值<0.05)。

  5. E类

    这一主题在整个马拉特1轨迹。

  6. F类

    该图案不同实例的多重序列比对(有色核苷酸)它们出现在所示lncRNAs的DR中。

  7. G公司

    与MPRNA中的所有其他寡核苷酸相比,具有图2A-F和附录图S2中描述的新基序的寡核苷酸在核部分中显著富集。P(P)值:Mann–Whitney试验。实心水平线是中间值,而下铰链和上铰链对应于第一和第三个四分位(25第个和75第个百分位数)。上部晶须从铰链延伸至最大值,距离铰链不超过1.5×IQR。较低的晶须从铰链延伸至铰链最大1.5×IQR的最小值。晶须末端以外的数据为离群值,单独绘制。

  8. H、 我

    新的核富集基序影响内源性人类转录物的定位。与HeLa和A549细胞中所有其他转录物相比,人类mRNA和lncRNA转录物的核富集与发现的基序至少出现一次的比较(ENCODE项目联盟,2012年)。P(P)值:Mann–Whitney检验(与所有其他lincRNA相比,具有至少一个基序出现的lincRNA;与所有其他mRNA相比,至少具有一个基模出现的mRNA)。实心水平线是中位数,而下铰链和上铰链对应于第一个和第三个四分位数(25第个和75第个百分位数)。上部晶须从铰链延伸至最大值,距离铰链不超过1.5×IQR。较低的晶须从铰链延伸至铰链最大1.5×IQR的最小值。晶须末端以外的数据为离群值,单独绘制。

图4
图4。差异区域足以重定向核糖核酸亚细胞定位
  1. 代表XIST公司lncRNA的富C基序区和新的差异区图1XIST公司在(B–D)中进行了检查。数据如图1E所示。

  2. smFISH实验概述和示例。fsSox2型将报告结构与单个小基序和长DR融合。典型的smRNA‐FISH图像:(左边)未修改的fsSox2型记者(中间的)fsSox2型熔接成三串列XIST公司图案,以及(正确的)fsSox2型融合到富C基序的三个串联实例中(比例尺=20μm,蓝色:Hoechst 33342)。

  3. 典型的smRNA-FISH图像(左边)未修改的fsSox2型,马拉特1区域M(左数第二),图1灾难恢复(右数第二),XIST公司灾难恢复(右侧).

  4. 核定位的smFISH量化fsSox2型与指示基序和DR融合的报告构建体(P(P)值:Mann–Whitney试验)。实心水平线是中间值,而下铰链和上铰链对应于第一和第三个四分位(25第个和75第个百分位数)。上部晶须从铰链延伸至最大值,距离铰链不超过1.5×IQR。下须从铰链延伸到最小值,最大为铰链的1.5×IQR。晶须末端以外的数据为离群值,单独绘制。

中的注释

  • 没有出路:当RNA元素促进核保留时。
    Agostini F、Ule J、Zagalak JA。 Agostini F等人。 EMBO J.2018年3月15日;37(6):e99123。doi:10.15252/embj.201899123。Epub 2018年2月27日。 EMBO J.2018年。 PMID:29487065 免费PMC文章。

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