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2014年4月25日;289(17):11704-11714.
doi:10.1074/jbc。M113.502542。 Epub 2014年3月10日。

核心岩藻糖上调GnT-III和Wnt靶基因的缺失:聚糖功能适应性反应的可能机制

附属公司

核心岩藻糖的缺失上调GnT III和Wnt靶基因:聚糖功能适应性反应的可能机制

池本雅子等。 生物化学杂志

摘要

在正常和病理条件下,聚糖在多种蛋白质功能中起着关键作用,但由于聚糖功能的冗余或补偿,一些糖基转移酶缺乏的小鼠没有或仅表现出轻微的表型。然而,我们对这些观察的潜在机制只有有限的了解。我们之前的研究表明,70%缺乏核心岩藻糖结构的Fut8-deficient(Fut8(-/-))小鼠在出生后3天内死亡,但其余小鼠存活长达数周,尽管它们表现出生长迟缓和肺气肿。在本研究中,我们表明,在Fut8(-/-)小鼠的小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)中,另一个N-聚糖分支结构,二分GlcNAc,通过增强负责酶N-乙酰氨基葡萄糖转移酶III(GnT-III)的基因表达而特异性上调。作为二分GlcNAc修饰的候选靶糖蛋白,我们证实Fut8(-/-)MEF中β1-整合素和N-钙粘蛋白上的二分Glc NAc水平增加。此外,利用质谱法对Fut8(-/-)小鼠血清中IgG1的聚糖分析表明,体内缺乏Fut8也会增加二等分GlcNAc的含量。作为一种潜在机制,我们发现在Fut8(-/-)MEFs中Wnt/β-catenin信号上调,并且发现一种抑制Wnt信号的抑制剂可以消除GnT-III的表达,表明Wnt/?-catenin参与GnT-II上调。此外,Fut8(-/-)MEF中的各种氧化应激相关基因也增加。这些数据表明,Fut8(-/-)小鼠通过诱导包括GnT III在内的各种基因来适应体内外的氧化应激,这可能会补偿核心岩藻糖功能的丧失。

关键词:β-连环素;二分GlcNAc;核心岩藻糖;富特8;糖基转移酶;GnT-III;凝集素;质谱(MS);氧化应激;Wnt Pathway。

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数字

图1。
图1。
二分GlcNAc水平在未来8−/−MEF公司。 A类,的符号表示N个-显示了聚糖和负责的糖基转移酶,如GnT-III、GnT-IV、GnT-V和Fut8。凝集素,如L4-PHA、E4-PHA和AAL,优先识别指示位点。B类制备的细胞裂解物(40μg蛋白质)的凝集素印迹分析未来8+/+未来8−/−采用AAL、E4-PHA和L4-PHA进行MEF。以抗β肌动蛋白为内标进行Western blot分析。
图2。
图2。
GnT-III的活性和表达水平在未来8−/−MEF公司。 A类中的、Fut8、GnT-III、GnT-IVa、b和GnT-V酶活性未来8+/+未来8−/−MEF裂解物显示为平均值±S.E(n个= 3)B类未来8+/+未来8−/−在10厘米的培养皿上生长的MEF在100%融合的情况下收获。通过实时PCR定量这些MEF中GnT-III、-IVa、-V和核糖体mRNA的表达水平。GnT-III、-IVa和-V的表达水平通过相应的核糖体RNA表达水平进行标准化。数据表示为平均比率±S.E(n个=3)。C类、Fut8、GnT-III和核糖体mRNA的表达水平未来8+/+未来8−/−并重新引入MEF(重新)通过实时PCR定量。Fut8和GnT-III的表达水平通过相应的核糖体RNA表达水平进行标准化。数据表示为平均比率±S.E(n个= 3).
图3。
图3。
总体N个-MALDI-TOF MS的聚糖结构分析。 A类,MALDI-TOF质谱N个-连接的聚糖来自未来8+/+未来8−/−MEF公司。糖类命名和低聚糖的表示符合功能性糖组学联合会提出的指南。所有观察到的离子对应于[M+Na]+B类将单个聚糖的信号强度标准化为所有检测到的聚糖(高甘露糖、bi-、tri-和四天线复合型聚糖)的总强度,以此计算聚糖流行率,并将其描述为总轮廓的百分比。C类,MS2和MS二甲基化的光谱N个-聚糖来自富特8+/+(面板iii(ii))和未来8−/−MEF公司(面板iiiiv(四))分别是。碎片离子位于米/z444.0 (第二组)和米/z426.5 (第四组)表明前体离子具有二分GlcNAc。
图4。
图4。
在IgG中观察到含有GlcNAc的聚糖呈双链1仅从未来8−/−小鼠血清。 A类、IgG的MALDI-TOF质谱1-衍生糖肽未来8+/+(上部面板)和未来8−/−(下部面板)如图所示。所有这些已鉴定的离子均来自含Asn-297的IgG11156.5 Da肽(EEQFNSTFR)。B类,糖肽谱来自血清IgG1属于未来8+/+未来8−/−老鼠。数据表示平均值±S.E(n个= 3).C类,英寸未来8−/−小鼠血清中9.7%的聚糖为二分聚糖。
图5。
图5。
凝集素分析显示,β1-整合素和N-钙粘蛋白的糖基化在富特8+/+未来8−/−MEF公司。 A类,免疫沉淀(IP(IP))β1-整合素来自未来8+/+未来8−/−MEF裂解产物由抗β1整合素抗体和AAL、E4-PHA和L4-PHA凝集素检测。工作分解结构,蛋白质印迹。B类MEF裂解物,无论是否经唾液酸酶处理,均用抗β1整合素抗体进行Western印迹。β1-整合素的聚糖结构不同于唾液酸化未来8+/+未来8−/−MEF公司。C类,凝集素印迹(AAL和E4-PHA)和来自未来8+/+未来8−/−,并重新引入(重新)进行了MEF。β1-整合素的上带(箭头)对应于成熟形式,与AAL和E4-PHA识别。D类,膜组分中的免疫沉淀N-钙粘蛋白未来8+/+未来8−/−用抗N-钙粘蛋白抗体和E4-PHA和L4-PHA凝集素检测MEF。
图6。
图6。
抑制Wnt信号诱导β-catenin和GnT-III mRNA水平下调未来8−/−MEF公司。 A类,Wnt信号抑制剂(15μIWP-2)显著降低β-catenin和GnT-III的mRNA水平。相反,当MEF与15μIWP-2英寸未来8+/+未来8−/−数据表示平均值±S.E(n个= 3).B类,磷酸化β-catenin在未来8−/−MEF公司。第S33/S37/T41页,磷酸化-Ser-33/Ser-37/Thr-41;pS552型,磷-Ser-552;第675页,磷-Ser-675。IP(IP),免疫沉淀。C类Wnt信号抑制剂可减少β-catenin在胞浆和细胞核中的积累。D类β-catenin与N-cadherin共免疫沉淀未来8+/+未来8−/−MEF公司。
图7。
图7。
Wnt信号转导级联的示意图富特8+/+未来8−/−MEF公司。Wnt由内质网分泌(急诊室)通过添加膜结合酶的棕榈酰化,和O-酰基转移酶被指定为豪猪(Wnt-on)。当分泌的Wnt与Frizzled受体结合时,β-catenin磷酸化被抑制,β-catanin在胞浆中积累,然后增加向细胞核的募集。这可能导致GnT-III的表达增加。IWP-2是Wnt信号的抑制剂未来8+/+MEF、β-连环蛋白向细胞外间隙的分泌受到抑制,磷酸化和泛素化得到适当处理。细胞内β-catenin浓度降低,其核募集也减少。这导致GnT-III基因表达受到抑制。

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