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.2014年4月25日;289(17):11927-11944.
doi:10.1074/jbc。M113.539965。 Epub 2014年2月12日。

转录因子NF-κB/RelA调控基因表达

附属公司

转录因子NF-κB/RelA调控基因表达

李雪玲等。 生物化学杂志. .

摘要

调节剂(M)是修饰转录因子(TF)活性并影响其靶基因(TG)表达的蛋白质。为了发现NF-κB/RelA的调节剂,我们首先使用液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)鉴定了365个NF-κ的B/RelA-结合蛋白。我们使用概率模型从我们的LC-MS/MS和ChIP-Seq(ChIP后接下一代测序)组合数据、已发布的RelA调节剂和TG以及基因表达谱概要中推断8349(M,NF-κB/RelA,TG)三联体及其调节作用模式。衍生调控网络的层次聚类揭示了功能性子网络,并提出了调节RelA转录活性的新途径。TG数量最多、作用模式非随机分布最多的调制器(用香农熵测量)与已发表的报告一致。我们的结果为实验验证提供了一系列可测试的假设。我们确定的NF-κB/RelA调节剂之一是STAT1。推断的(STAT1,NF-κB/RelA,TG)三联体通过LC-选择性反应监测质谱和人类纤维肉瘤细胞中STAT1缺失的结果进行了验证。总的来说,我们已经确定了562个NF-κB/RelA调节剂,这些调节剂是潜在的药物靶点,并阐明了通过调节剂实现NFκB/RelA多重功能的机制。我们的方法可以很容易地应用于其他TF。

关键词:调制作用方式;计算生物学;功能基因组学;基因表达;调制网络;NF-κB转录因子;蛋白质组学;转录调控;转录靶基因。

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数字

图1。
图1。
RelA调制器预测中的接收机-运算子曲线和精度-再调用曲线。 A类,接收器-操作员曲线下的面积(世界车王争霸赛)通过改变bins的阈值(见“实验程序”)预测调节剂,将四种类型的蛋白质作为基准阳性:新的结合蛋白(本研究中新发现的RelA结合蛋白)、现有的结合蛋白质(从PIANA数据库和其他来源收集的结合蛋白),两个新集合的重叠(我们两个LC-MS/MS实验中RelA的重叠结合蛋白)和所有结合蛋白(本研究中新鉴定的结合蛋白RelA和数据库中收集的结合蛋白)。B类,通过改变所有结合蛋白的bins阈值(见“实验程序”),在调节剂预测的精确重新调用曲线下的面积。
图2。
图2。
新鉴定的RelA相关蛋白的映射蛋白网络。这些蛋白质根据其相应的功能或途径进行彩色编码。
图3。
图3。
前20个特定调制器的三元组和动作模式。彩色编码边缘表示动作模式。这个粉红色椭圆形指出前20个调制器,其中包括正文中列出的所有前10个特定调制器。
图4。
图4。
分析了10个调制器的模式分布。六个人数字在每个bin图中,表示相应的六种彩色编码动作模式的三元组数。
图5。
图5。
M-TG网络的层次聚类。两种调制器的树状图(左边)和靶基因(顶部)根据β̂的值生成(热图)。轮廓矩形对应于功能模块。集群(A、B、C、I、II和III)和模块(A-I、A-II等)的顶级富集GO术语列在插入.
图6。
图6。
网络模块A-I、A-II、B-I和B-III中重要三元组的动作模式。 表示调制器,以及是TG。小型正方形根据相应调制器和TG组成的三元组的动作模式进行彩色编码(颜色方案与图2和图3相同:深绿色,抑制衰减;浅绿色,抑制增强;黄色的,抑制反转,浅橙色、活化反转;深橙色,活化增强;红色,激活衰减)。这个数值在每个广场第页β̂的值。仅提供具有统计意义的三联体。
图7。
图7。
通过SRM实验验证STAT1与RelA的相关性。AQUA表示使用稳定同位素标记的合成肽和HPLC-MS对蛋白质进行绝对定量。AQUA肽是与感兴趣肽相对应的合成胰蛋白酶肽。
图8。
图8。
STAT1调控的RelA依赖基因及其相应作用模式的实验验证。 误差线代表S.E。

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