Diphenyleneiodonium, an inhibitor of NOXes and DUOXes, is also an iodide-specific transporter

doi:10.1016/j.fob.2013.11.007

.2013年12月7日4:55-9。

doi:10.1016/j.fob.2013.11.007。 2013年电子收集。

二苯亚碘铵是NOXes和DUOXes的抑制剂，也是碘特异性转运蛋白

C马萨特¹, N朱斯蒂¹, R博文斯², J E Dumont公司¹, F Miot公司¹, J范·桑德¹

附属公司

¹比利时伦尼克路808号Erasme校区布鲁塞尔自由大学医学院IRIBHM。
²比利时Lennik路808号Erasme校区布鲁塞尔自由大学医学院生理学实验室。

PMID： 24371722
预防性维修识别码：项目经理3871273
内政部： 2016年10月10日/j.fob.2013.1007

二苯亚碘铵是NOXes和DUOXes的抑制剂，也是碘特异性转运蛋白

C马萨特等人。 FEBS开放式生物. 2013.

.2013年12月7日4:55-9。

doi:10.1016/j.fob.2013.11.007。 2013年电子收集。

作者

C马萨特¹, N朱斯蒂¹, R博文斯², J E Dumont公司¹, F米奥特¹, J范·桑德¹

附属公司

¹IRIBHM，布鲁塞尔自由大学医学院，比利时伦尼克808路伊拉斯姆校区。
²比利时Lennik路808号Erasme校区布鲁塞尔自由大学医学院生理学实验室。

PMID： 24371722
预防性维修识别码：项目经理3871273
内政部： 2016年10月10日/j.fob.2013.1007

摘要

NADPH氧化酶（NOXes）和双氧化酶（DUOXes）生成O2（.-）和H2O2。二苯亚碘铵（DPI）抑制这些酶的活性，通常用作一种特定的抑制剂。此处显示，DPI的浓度与抑制O2衍生物生成的浓度类似，激活了放射性碘的流出，但在甲状腺细胞、PCCl3大鼠甲状腺细胞系和表达碘转运蛋白NIS的COS细胞系中，激活了其类似物（99m）TcO4（-）或K（+）阳离子模拟物（86）Rb（+）的流出。因此，应谨慎解释DPI的作用，尤其是对甲状腺细胞的作用。

关键词：DPI，二亚苯基碘；DUOX；DUOXes，双氧化酶；二苯亚碘；辣根过氧化物酶II型；HVA，高香草酸；碘流出；KRH、Krebs–Ringer Hepes培养基；甲基巯基咪唑；NIS，钠/碘转运体；氮氧化物；NOXes、NADPH氧化酶；氧自由基生成；甲状腺。

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数字

图1
DPI对平衡（空柱）和H时碘吸收水平的影响₂O（运行）₂猪甲状腺切片的产量（填充柱）。孵育时间为90分钟。结果为2头猪甲状腺的平均值。在没有DPI的情况下，猪1和2的摄取控制值分别为23.6±4和18.5±3（重复的平均值）。H₂O（运行）₂在没有DPI的情况下，对照值分别为421±12和482±18（重复的平均值）ng H₂O（运行）₂/猪1和猪2的湿重组织分别为100mg。

图2
比较相同范围的DPI（空柱）和碘（填充柱）浓度对猪甲状腺切片平衡时碘摄取值的影响。用DPI或KI孵育1h。结果为2只猪甲状腺的平均值。猪1和猪2的摄取控制值分别为12.05±1.4和7.1±0.1（重复的平均值）。（组织与中等放射性的比率）

图3
DPI对¹²⁵我⁻和⁸⁶卢比⁺COS–NIS预加载细胞的流出。示踪剂从细胞到培养基的流出量表示为细胞总摄取量的百分比。这个¹²⁵我⁻在本实验中，平衡摄取量为24.6。（对照组与NaClO的比率₄处理过的细胞）。空圆：控制。填充正方形：DPI 10μM。

图4
DPI对¹²⁵我⁻和^9900万TcO公司₄⁻PCCl3和COS–NIS预加载细胞的流出。在流出开始时添加DPI。平衡时的摄取值¹²⁵我⁻PCCl分别为24±1和24±0.05_三和COS–NIS细胞。平衡时的摄取值^9900万TcO公司₄⁻PCCl分别为216±6和228±9_三和COS–NIS细胞（重复的平均值）。的结果¹²⁵我⁻和^99百万TcO公司₄⁻流出量表示为细胞总摄取量的百分比。空圆：控制。填充正方形：DPI 10μM。

图5
温度对DPI作用的影响¹²⁵我⁻PCCl3预加载细胞的流出。细胞被装载了¹²⁵我⁻37°C下45分钟，然后在37°C或22°C或15°C下用2×1 ml KRH快速冲洗。然后在37°C（□）或22°C（Δ）或15°C（○）下添加1毫升KRH，并在这些温度下测量流出量。箭头结合了每个温度下的基础和DPI刺激释放曲线。空符号：基本释放。填充符号：DPI刺激释放。

图6
DPI对H影响的可逆性研究₂O（运行）₂PCCl3细胞的产生或碘摄取（C/M）。实验方案由3个称为A、B或C的连续培养组成。¹²⁵我⁻用于摄取（C/M）测量或用于H的HVA和过氧酶II₂O（运行）₂仅在温育C中添加测量值，持续45分钟¹²⁵我⁻摄入，H为90分钟₂O（运行）₂生产。培养A和B各持续45分钟。DPI 10μM单独添加在A或B中，或单独添加在C中。空列：控件。填充柱：DPI 10μM。

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