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.2013年12月;27(12):2116-25.
doi:10.1210/me.2013-1146。 Epub 2013年11月6日。

VDR通过阻断Ang-2-Tie-2通路和肾素-血管紧张素系统减轻急性肺损伤

附属公司

VDR通过阻断Ang-2-Tie-2通路和肾素-血管紧张素系统减轻急性肺损伤

胡安·孔等。 分子内分泌学. 2013年12月.

摘要

急性肺损伤(ALI)是与高死亡率相关的全身炎症的标志。虽然维生素D受体(VDR)在肺部高度表达,但其在肺部生理学中的作用尚不清楚。我们使用脂多糖(LPS)诱导的脓毒症模型研究VDR缺失对ALI的影响。与野生型(WT)小鼠相比,LPS激发后VDR-null小鼠表现出更严重的ALI和更高的死亡率,表现为肺血管渗漏增加、肺水肿、细胞凋亡、中性粒细胞浸润和肺部炎症,伴随着血管生成素(Ang)的过度诱导-2和肺中肌球蛋白轻链(MLC)磷酸化。1,25-二羟基维生素D通过阻断人肺动脉内皮细胞中核因子-κB的活化,阻断LPS诱导的Ang-2表达。通过使用血管紧张素-2拮抗剂L1-10预处理,VDR-null小鼠肺损伤的严重程度得到改善,这表明VDR信号通过靶向血管紧张素-2-铁-2-MLC激酶级联保护肺血管屏障。VDR-null小鼠的严重ALI也伴随着肺肾素和血管紧张素II水平的升高,血管紧张素Ⅱ1型受体阻滞剂氯沙坦预处理VDR-nuld小鼠可部分缓解LPS诱导的肺损伤的严重程度。总之,这些观察结果提供了证据,证明维生素D-VDR信号通过阻断Ang-2-Tie-2-MLC激酶级联和肾素-血管紧张素系统来预防肺损伤。

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数字

图1。
图1。
LPS攻击后VDR失活导致严重ALI。用生理盐水或LPS(20 mg/kg,ip注射)处理WT和VDR KO小鼠。A、 小鼠基因分型。PCR产物模式指示WT(+/+)、杂合子(+/−)和VDR-KO(−/−)基因型。B、 LPS处理后的小鼠存活曲线。C、 对照组(Ctrl)和LPS处理的WT和KO小鼠肺切片的苏木精和伊红染色。请注意,LPS治疗的KO小鼠肺泡间质空间更厚。D、 用中性粒细胞特异性单克隆抗体7/4对对照组和LPS处理的WT和KO小鼠的肺切片进行荧光免疫染色。E和F,LPS处理的WT和KO小鼠肺切片的TUNEL染色(E)和数据的半定量(F)。凋亡指数定义为每只小鼠随机选择50个视野中TUNEL阳性显微镜视野的百分比。箭头表示TUNEL阳性细胞。**,P(P)<.01 vs重量。
图2。
图2。
VDR缺失增加肺血管通透性并损害肺功能。WT和VDR KO小鼠经ip注射生理盐水(对照)或LPS(20 mg/kg),24小时后进行肺分析。A、 埃文斯蓝渗透性分析。B、 肺湿重和干重的差异(液体滞留)归一化为体重。C、 BAL.D中的蛋白质浓度,BAL液中的细胞数。E、 肺裂解物中的MPO活性。F、 肺弹性阻力*,P(P)< .05; **,P(P)< .01; ***,P(P)<0.001 vs相同基因型的相应对照;#,P(P)< .05; ###,P(P)<.001 vs LPS处理的WT;每个基因型中n=5-6。
图3。
图3。
BAL液中的促炎细胞因子水平。用生理盐水(对照[Ctrl])或LPS处理WT和VDR KO小鼠,并用ELISA定量BAL液中IL-6(A)和TNFα(B)的水平,P(P)<.001 vs相同基因型的相应对照;###,P(P)与LPS处理的WT相比,<.001;每个基因型中n=5-6。
图4。
图4。
VDR信号通过靶向Ang-2-Tie-2-MLCK通路减弱LPS诱导的ALI。用盐水(对照[Ctrl]或PBS)或LPS(20 mg/kg)通过ip注射治疗WT和VDR KO小鼠,并在24小时进行肺分析。A、 通过实时RT-PCR定量的Ang-2 mRNA水平;*,P(P)< .05; ***,P(P)<.001 vs相同基因型的相应对照;###,P(P)<.001 vs LPS处理的WT;n=4。B和C,BAL中Ang-2蛋白水平的Western blot分析(B)和密度定量(C);**,P(P)< .01; ***,P(P)<.001 vs相同基因型的相应对照;###,P(P)与LPS处理的WT.D相比,Ang-2蛋白和磷酸化MLC(p-MLC)水平在总肺裂解物中的Western blot分析。E、 肺总裂解物中Tie-2水平的Western blot分析。F、 Western blot数据的密度定量。**,P(P)< .01; ***,P(P)<.001 vs相同基因型的相应对照;###,P(P)<.001 vs LPS处理的WT。
图5。
图5。
1,25(OH)2通过靶向NF-κB活化下调HPAE细胞中的Ang-2。A、 RT-PCR检测HPAE细胞中人VDR mRNA转录RT,负逆转录酶控制。B、 LPS处理HPAE细胞3和6小时,RT-PCR检测Ang-2 mRNA的诱导。在有或无1,25(OH)的情况下,用LPS处理C和D、HPAE细胞2(20 nM)。24小时(C)用RT-PCR评估Ang-2 mRNA,并用密度测定法(D)半定量。在有或无1,25(OH)的情况下,用LPS处理E和F、HPAE细胞224小时后通过Western blotting(E)评估MLCK和磷酸化MLC水平,并通过密度测定法(F)进行半定量。G、 EMSA。在存在或不存在1,25(OH)的情况下,用LPS处理HPAE细胞224小时。使用以下方法制备用于EMSA的核提取物32人类第一内含子内的P标记假定κB探针ANG-2型基因。H、 ChIP分析。在存在或不存在1,25(OH)的情况下,用LPS处理HPAE细胞2持续6小时。使用抗p65抗体或非免疫IgG进行ChIP分析。使用位于人类第一内含子内假定κB位点两侧的引物进行PCR扩增ANG-2型基因。GAPDH,甘油醛-3-磷酸脱氢酶;MW,分子量;−RT,负逆转录酶;1,25VD,1,25(OH)2; p-MLC、磷酸化MLC。
图6。
图6。
阻断Ang-2信号可以改善VDR-null小鼠的肺损伤。用生理盐水或L1-10预处理WT和KO小鼠2周,然后进行LPS攻击。LPS治疗24小时后进行肺损伤分析。A、 埃文斯蓝渗透性测定。B、 BAL.C中的总蛋白浓度,总肺裂解物中的MPO活性。D、 BAL液中的IL-6水平。***,P(P)<.001 vs LPS处理的WT;##,P(P)< .01; ###,P(P)<0.001 vs LPS处理的KO;每个基因型中n=5-6。Ctrl,control。
图7。
图7。
VDR信号通过靶向RAS减弱LPS诱导的ALI。A和B、WT和KO小鼠用生理盐水(Ctrl)或LPS(20 mg/kg)治疗。在24小时时测量BAL液中的肾素活性(A)和血管紧张素II水平(B)。**,P(P)< .01; ***,P(P)<0.001 vs相同表型的对照组;#,P(P)< .05; ##,P(P)<0.001 vs相同处理的相应WT;n=5-6个基因型。给C–E、WT和KO小鼠喂食常规水或含有氯沙坦的水2周,然后进行LPS激发。LPS治疗24小时后进行肺损伤分析。C、 埃文斯蓝渗透性测定。D、 BAL流体中的总细胞数。E、 BAL液中的总蛋白质浓度。*,P(P)< .05; **,P(P)< .01; ***,P(P)<.001 vs相同处理的WT;##,P(P)< .01; ###,P(P)<.001 vs KO供给的普通水;每个基因型中n=5-6。
图8。
图8。
1,25(OH)的拟议机制2-VDR信号抑制Ang-2-Tie-2-MLCK通路和RAS级联反应以减弱LPS诱导的ALI。虚线表示猜测。p-MLC,磷酸化MLC;1,25VD,1,25(OH)2.

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