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.2013年5月24日;288(21):14936-48.
doi:10.1074/jbc。M112.434597。 Epub 2013年4月5日。

垂体腺苷酸环化酶激活多肽(PACAP)通过激活核因子κB(NF-κB)途径促进PC12细胞的存活和神经发生:参与细胞外信号调节激酶(ERK)、钙和c-REL

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垂体腺苷酸环化酶激活多肽(PACAP)通过激活核因子κB(NF-κB)途径促进PC12细胞的存活和神经发生:参与细胞外信号调节激酶(ERK)、钙和c-REL

命运之爱Manecka等。 生物化学杂志. .

摘要

垂体腺苷酸环化酶激活多肽(PACAP)是一种促进神经元存活和突起生长的营养因子。然而,所涉及的信号通路和转录机制尚未完全阐明。我们之前的研究旨在描述PACAP分化PC12细胞的转录组特征,结果显示编码NF-κB转录因子p100/p52亚单位的核因子κB2(NF-κ)基因的表达增加。在此,我们研究了NF-κB通路在PACAP促进神经元分化中的作用。我们首先表明,NF-κB通路阻断后,PACAP驱动的PC12细胞存活和神经炎延伸受到抑制。PACAP刺激c-Rel和p52 NF-κB亚单位基因表达和核移位,而c-Rel下调抑制神经肽诱导的细胞存活和神经发生。ERK1/2和Ca(2+)阻滞剂抑制PACAP诱导的c-Rel核转位。此外,神经肽刺激NF-κB p100亚单位加工成p52,表明NF-κ的B替代途径激活。综上所述,我们的数据显示,PACAP通过激活NF-κB通路促进PC12细胞的存活和神经生成,最有可能是通过涉及ERK1/2激酶、Ca(2+)和c-Rel/p52二聚体的经典和替代信号级联。

关键词:钙;细胞分化;细胞存活;ERK;NF-κB;神经突起生长;神经肽;神经营养因子;PACAP;PC12细胞。

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数字

图1。
图1。
PS-1145对PACAP调节PC12细胞活力和caspase活性的影响。 A类,PC12细胞暴露于PACAP(100 n)在有无PS-1145(10μ)用MTT法评估细胞存活率。B类,PC12细胞暴露于PACAP(100 n)在没有或存在PS-1145(10μ)用Apo-ONE试剂盒评估PC12细胞中Caspase-3/7的活性,并以每分钟相对荧光单位(RFU)表示。数据表示为平均值±S.E(误差线)相对于控制值(n个= 6). *,< 0.05; **,<0.01(曼希特尼U型测试)。实验重复了三次,结果相似。
图2。
图2。
PS-1145对PACAP诱导的神经突起生长的影响。 A类,细胞未经处理或用PACAP处理(100 n)有无PS-1145(10μ)持续6、24或48小时。B类C,100个细胞的轴突数量(B类)和神经突起长度(C)使用共焦显微镜和ImageJ软件进行测定。数据表示为平均值±S.E(误差线)相对于控制值(n个>30).比例尺,100微米**,<0.01;***,<0.001(学生的t吨测试)。实验重复了三次,结果相似。
图3。
图3。
PACAP效应的动力学分析(100 n)和TNF-α(10 n)NF-κB亚单位的mRNA水平。用PACAP处理PC12细胞(A类,C,E类、和G公司)或TNF-α(B类,,F类、和H(H))对于指定的时间和RelA(A类B类),c-相对(C),第50页(E类F类)和第52页(G公司H(H))实时PCR定量基因表达。数据表示为平均值±S.E(误差线)相对于控制值(n个= 4). *,< 0.05; **,<0.01;***,<0.001(曼-惠特尼U型测试)。实验重复了两次,结果相似。
图4。
图4。
PACAP和TNF-α对NF-κB亚单位亚细胞定位的影响。 A类,PC12细胞与PACAP孵育(100 n)或TNF-α(10 n)持续2 h,然后使用针对不同NF-κB亚单位的抗体和荧光结合二级抗体进行免疫细胞化学。用DAPI标记Nuclei。B–F类,RelA的细胞核和细胞质荧光(B类),版本B(C),c-相对(),第50页(E类)和第52页(F类)使用ImageJ软件进行测量。数据表示为平均值±S.E(误差线)相对于控制值(n个>30). **,<0.01;***,<0.001(学生的t吨测试)。实验重复了三次,结果相似。G公司,用PACAP处理PC12细胞(100 n)或TNF-α(10 n)持续2h,制备细胞质和细胞核组分。使用抗RelA和抗RelB抗体进行Western blotting,以评估亚单位的核移位。拉明A被用作核分数的标记。细胞质组分和核组分分别称为细胞。.
图5。
图5。
c-Rel和RelA沉默对NF-κB亚单位mRNA和蛋白水平的影响。在转染PC12细胞48小时后,分析对照、c-Rel或RelA siRNA、c-Rel和RelA的表达。A类B类,c-相对(A类)和RelA(B类)实时PCR定量基因表达。数据以平均值±标准误差表示(误差线)相对于控制值(n个= 4). *,<0.05(曼希特尼U型测试)。实验重复了三次,结果相似。C,使用针对c-Rel的抗体进行免疫细胞化学(C)和Rel-A()亚单位之后是荧光结合二级抗体。细胞核用DAPI标记。数据表示为平均值±S.E(误差线)相对于控制值(n个>30)。***,<0.001(学生t吨测试)。实验重复了三次,结果相似。E类使用ImageJ软件测量c-Rel和RelA的细胞质和核荧光。siRNA处理后RelA的蛋白质印迹。α-管蛋白被用作负荷控制。
图6。
图6。
c-Rel和RelA沉默对PACAP刺激的PC12细胞活性的影响。用对照c-Rel或RelA siRNA转染PC12细胞后24小时,用PACAP(100 n)处理PC12细胞)用MTT法评估细胞活力。数据表示为平均值±S.E(误差线)相对于控制值(n个= 6). *,<0.05(曼希特尼U型测试)。实验重复了两次,结果相似。
图7。
图7。
c-Rel和RelA沉默对PACAP诱导的神经突起生长的影响。用对照c-Rel或RelA siRNA转染PC12细胞后24小时,用PACAP(100 n)处理PC12细胞)48小时,每个细胞的突起数量(A类)和神经突起长度(B类)通过共焦显微镜和ImageJ分析确定。数据以平均值±标准误差表示(误差线)相对于控制值(n个>30). *,< 0.05; **,<0.01(学生的t吨测试)。实验重复了三次,结果相似。
图8。
图8。
MEK抑制剂对PACAP诱导的c-Rel核转位的影响。 A类B类,用U0126(10μ,A类)或PD98059(50μ,B类)在不存在或存在PACAP的情况下持续1小时(100 n)持续2小时。使用针对NF-κB的c-Rel亚基的抗体进行免疫细胞化学,然后使用荧光染料偶联的第二抗体。用DAPI标记Nuclei。C使用ImageJ软件测量c-Rel的核荧光。数据表示为平均值±S.E(误差线)相对于控制值(n个>30). ***,<0.001(学生的t吨测试)。实验重复了三次,结果相似。
图9。
图9。
钙的作用2+活化抑制剂对PACAP诱导的c-Rel核移位的影响。 A类B类用氯化镍预处理PC12细胞2(3米,A类)或EGTA(0.3米,B类)在没有或存在PACAP的情况下持续1小时(100 n)使用针对NF-κB的c-Rel亚单位的抗体和荧光结合的二级抗体进行免疫细胞化学。用DAPI标记Nuclei。C使用ImageJ软件测量c-Rel的核荧光。数据表示为平均值±S.E(误差线)相对于控制值(n个>30). ***,<0.001(学生的t吨测试)。实验重复了三次,结果相似。
图10。
图10。
蛋白激酶抑制剂对PACAP诱导的c-Rel核转位的影响。 A类B类用白屈菜红碱(Chel,5μ,A类)或沃特曼(麦汁,0.5μ,B类)在不存在或存在PACAP的情况下持续1小时(100 n)持续2小时。使用针对NF-κB的c-Rel亚基的抗体进行免疫细胞化学,然后使用荧光染料偶联的第二抗体。用DAPI标记Nuclei。C使用ImageJ软件测量c-Rel的核荧光。数据表示为平均值±S.E(误差线)相对于控制值(n个>30). ***,<0.001(学生的t吨测试)。实验重复了三次,结果相似。
图11。
图11。
PACAP对ERK激活的影响。用U0126(10μ),PD98059(50μ),或氯化镍2(3米)用PACAP孵育前1小时(100 n)用磷酸化ERK(P-ERK)抗体进行5分钟的免疫印迹,并用α-微管蛋白抗体作为负荷对照。
图12。
图12。
PACAP对p100成熟的影响。经或未经PACAP处理的细胞的蛋白质提取物(100 n)用Western blotting分析p100蛋白的加工过程。使用ImageJ软件测量相对强度。
图13。
图13。
示意图总结了PACAP诱导PC12细胞中NF-κB活化所涉及的假定细胞内事件。PACAP的作用可能通过Epac或新的cAMP传感器触发NIK的cAMP-依赖性激活(26)。反过来,NIK将激活IKK复合物的IKK1亚单位,该复合物由催化型IKK1-同型二聚体组成,允许产生c-Rel/p52二聚体,这些二聚体由IκB蛋白维持在细胞质中。NIK还通过激活ERK1/2激酶来激活IKK2,这是一种异二聚体IKK复合物的亚单位,包括催化型IKK1和IKK_2亚单位以及调节蛋白NEMO。MAP激酶途径也可被钙激活2+动员。激活的IKK2诱导IκB及其核转位的c-Rel/p52释放,以调节PACAP诱导的存活和神经发生相关基因的表达。

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