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.2006年12月8日5:69。
doi:10.1186/1476-4598-5-69。

肿瘤细胞侵袭胶原基质需要协调脂质激动剂诱导的G蛋白和膜型基质金属蛋白酶-1依赖的信号

附属公司

肿瘤细胞侵袭胶原基质需要协调脂质激动剂诱导的G蛋白和膜型基质金属蛋白酶-1依赖的信号

凯文·费舍尔等。 摩尔癌症. .

摘要

背景:溶血磷脂酸(LPA)和1-磷酸鞘氨醇(S1P)是与肿瘤扩散有关的生物活性脂质信号分子。膜型基质金属蛋白酶1(MT1-MMP)是一种被认为通过细胞外基质降解参与肿瘤侵袭的膜栓化胶原酶。在本研究中,我们研究了LPA和S1P调节肿瘤细胞二维(2D)迁移和三维(3D)胶原基质侵袭的分子需求,尤其评估了MT1-MMP在这一过程中的作用。

结果:在Boyden小室实验中,LPA刺激而S1P抑制大多数肿瘤细胞株的迁移。相反,HT1080纤维肉瘤细胞在两种脂质的作用下迁移。HT1080细胞也显著侵入3D胶原基质(48小时内约700微米),以应对任何一种脂质。靶向LPA1和Rac1或S1P1、Rac1和Cdc42的siRNA分别特异性抑制LPA或S1P诱导的HT1080侵袭。对LPA诱导的HT1080在2D基质和3D基质上运动的分析表明,合成MMP抑制剂显著缩短了距离(约125微米vs.约45微米)和侵入速度(约0.09微米/min vs.约0.03微米/min)只有当细胞在3D矩阵中导航时,才表明MMPs在侵袭中的作用。此外,金属蛋白酶组织抑制剂(TIMPs)-2、-3和-4,而非TIMP-1,阻止了脂质激动剂诱导的侵袭,表明膜型(MT)-MMPs发挥作用。此外,MT1-MMP在几种肿瘤细胞系中的表达与LPA诱导的侵袭直接相关。HEK293既不表达MT1-MMP,也不在LPA存在下侵袭,用MT1-MMPcDNA转染,随后对LPA进行侵袭。当HT1080细胞接种在胶原基质之上或内部时,靶向MT1-MMP的siRNA,而不是其他MMP,抑制了脂质激动剂诱导的侵袭,从而在这个过程中确立了MT1-MMPs的必要作用。

结论:LPA是MT1-MMP依赖性肿瘤细胞侵袭3D胶原基质的基本调节因子。相反,S1P在大多数情况下似乎起到抑制性刺激的作用,而只刺激选择的肿瘤细胞株。MT1-MMP仅在肿瘤细胞通过3D屏障时需要,而在细胞在2D底物上迁移时不需要。我们证明,肿瘤细胞需要LPA/S1P受体和Rho-GTPase的协同调节才能迁移,此外,在肿瘤进展过程中需要MT1-MMP才能侵入胶原基质。

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数字

图1
图1
LPA刺激和S1P抑制大多数肿瘤细胞系的迁移在8μm聚碳酸酯明胶涂层膜和20μg/ml纤维连接蛋白上进行肿瘤细胞迁移分析。将LPA和/或S1P(1μM)添加到下室中,并允许细胞迁移4小时。取下膜,染色,并用Scion定量迁移细胞®软件和Microsoft Excel®数据表示为迁移细胞的平均数×10(±S.D.),并表示四次重复实验的结果。
图2
图2
LPA和S1P调节肿瘤细胞对三维胶原基质的侵袭(A)HT1080、A2058、SKOV3或HEK293细胞在无血清条件下,在单独或不单独存在LPA(1μM)、单独S1P(1μM)或LPA和S1P(各1μM。48小时后,对培养物进行固定、染色并获取图像,以证明LPA和S1P对肿瘤细胞侵袭的影响。箭头表示肿瘤细胞单层在侵袭开始时的位置。放大倍数=20×。比例尺=50μm。插图(面板A)=侵入HT1080电池的更高功率放大倍数。(B) A组肿瘤侵袭的定量。数据表示为每个HPF(20×)(±S.D.)的平均侵袭细胞数,最少20个字段。
图3
图3
HT1080侵袭的时间分析:LPA和S1P诱导约700μm的3D胶原基质侵袭(A)将HT1080细胞接种到3.75 mg/ml胶原凝胶(置于玻璃管中)上(详见方法),并在DMEM、LPA、S1P、LPA和S1P(各1μM)或LPA(1μM)+GM6001(5μM)存在下侵入48小时。每隔10分钟拍摄一次代表性区域的数字图像。使用变形®,获得了三口井在每个时间点的侵入距离测量值(n=15)。放大倍数=10×。比例尺=200μm。(B) 绘制A组数据与时间的关系图,并使用线性回归法计算侵袭率(见表1)。数据表示为来自三次重复实验的每个时间点的平均侵入距离(n=3口井,±S.D.)。
图4
图4
液化石油气1和S1P1调节HT1080对3D胶原基质的侵袭,分别应对LPA和S1P(A)HT1080细胞可以在LPA或S1P(1μM)存在或不存在100 ng/μl百日咳毒素(PTX)的情况下侵入。如图2所示,对细胞进行固定、染色和定量。(B) 用靶向指示基因的siRNA转染HT1080细胞,并允许其在LPA或S1P(1μM)存在的情况下入侵。数据以每HPF(20×)(±S.D.)的入侵细胞平均数报告,至少来自20个字段。使用t检验确定平均值的统计显著性,其中*=p<0.01相对于每种脂质的荧光素酶(Luc)对照。(C) 实时定量PCR(RTQ-PCR)值液化石油气1第1阶段1mRNA标准化18秒RNA用于说明指定siRNA的选择性靶向。
图5
图5
Rac1和Cdc42是LPA和S1P诱导的HT1080侵袭3D胶原基质的下游效应器(A)用靶向所示基因的siRNA转染HT1080细胞,并允许其在LPA或S1P(1μM)存在下侵入。数据表示为每个HPF(20×)(±S.D.)的平均入侵细胞数,最少20个字段。使用t检验确定平均值的统计显著性,其中*=p<0.01相对于每种脂质的荧光素酶(Luc)对照。LMNA=层粘连蛋白A/C。(B)siRNA转染HT1080细胞裂解物制备用于Western blot分析。检测裂解液中的Lamin A/C、RhoA、Rac1和Cdc42,以证明siRNA特异性,并检测肌动蛋白作为负荷对照。
图6
图6
使用改良Boyden腔的HT1080细胞运动不需要基质金属蛋白酶将HT1080细胞接种到涂有I型胶原(1 mg/ml)的多孔(8μm)聚碳酸酯膜上,并在1μm LPA或S1P存在或不存在合成MMP抑制剂(5μm GM6001、5μm TAPI-0或5μm TOPI-1)的情况下迁移4小时。取下膜,染色,并用Scion定量迁移细胞®软件和Microsoft Excel®数据表示为迁移细胞的平均数×10(±S.D.),并表示四次重复实验的结果。
图7
图7
脂质激动剂诱导HT1080细胞在2D胶原基质和3D胶原基质上运动的时程评估将Nuc-GFP HT1080细胞接种在涂有50μg/ml胶原蛋白或嵌入3.75 mg/ml I型胶原蛋白基质的2D塑料皿中,并使用变形蛋白分析其运动性®软件。每15分钟采集一次数字荧光图像,并按顺序排列。单个细胞在培养皿顶部(2D)或3.75 mg/ml胶原蛋白基质(嵌入3D)中每隔6小时移动一次,持续24小时。跟踪(由变形生成®)蓝线显示了这些细胞在24小时内的连续运动。(注:变形®在难以看到的黑色背景上创建黄色线条。因此,图像被反转,使黄线变蓝,黑底变白。)蓝色(黄色)圆圈表示单元格的当前位置,黑色(白色)圆圈指示上一个位置。随后的跟踪被转换为灰度。放大倍数=20倍。比例尺=50μm。
图8
图8
脂质激动剂诱导的肿瘤细胞运动需要3D胶原基质中的基质金属蛋白酶,而不是2D胶原基质上的基质金属酶.变形金刚生成的五个单个细胞轨迹®(灰度)在含有或不含有5μM GM6001的指定脂质的情况下(距离和速度计算见表2)。放大倍数=20×。比例尺=100μm。
图9
图9
肿瘤细胞侵袭3D胶原基质需要MT-MMP如图2所示,在1μM LPA和合成MMP抑制剂GM6001(5μM)或TIMP-1、-2、-3或-4(5μg/ml)的存在下,诱导HT1080细胞侵袭3D胶原凝胶(3.75 mg/ml)。箭头表示肿瘤细胞单层在侵袭开始时的位置。放大倍数=20×。比例尺=50μm。(B) 从A组定量HT1080侵袭。数据表示为每HPF(20×)(±S.D.)侵袭细胞的平均数,最少20个字段。
图10
图10
转染MT1-MMP cDNA的HEK293细胞侵入3D胶原凝胶以响应LPA制备肿瘤细胞裂解物用于Western blot分析。检测裂解液中的MT1-MMP,以评估四种肿瘤细胞系中的蛋白表达。检测裂解液中的肌动蛋白作为负荷控制。(B) 将pAdTrack-CMV质粒或编码MT1-MMP、MT2-MMP或MT3-MMP cDNA的质粒作为对照转染HEK293细胞,然后放置在侵袭试验中。允许细胞在存在或不存在1μM LPA的情况下侵入2.0 mg/ml胶原蛋白凝胶。数据表示为每个HPF(20×)(±S.D.)的平均入侵细胞数,最少20个字段。(C) 用编码指定基因的cDNA转染HEK293细胞的裂解液进行Western blot分析,并检测GFP、MT1-MMP、MT2-MMP、MT3-MMP或肌动蛋白作为负荷对照。TRK=pAdTrack-CMV,MT1=MT1-MMP,MT2=MT2-MMP,MT 3=MT3-MMP。
图11
图11
靶向MT1-MMP的siRNA降低明胶酶谱上的蛋白质水平和MMP-2活性(A)制备侵袭HT1080细胞裂解物进行Western blot分析,并检测MT1-MMP和Lamin A/C,以证明siRNA的效率和特异性。肌动蛋白被用作加载控制。(B) 入侵48小时后,从siRNA处理的HT1080细胞中收集条件培养基,并进行明胶酶谱分析。箭头表示MMP-9前体,以及MMP-2的前体和活性形式。
图12
图12
在3D胶原凝胶中,MT1-MMP是脂质诱导HT1080细胞侵袭所必需的(A)用对照siRNA(荧光素酶、Lamin A/C或搅乱的MT1-MMP)、靶向可溶性MMP-2或MMP-9的siRNA或靶向MT1-MMPs的siRNA(MT1-C、MT1-SP)转染HT1080细胞。在固定和定量侵袭之前,允许细胞侵入3D胶原凝胶以响应LPA或S1P 48小时,如图所示。2。数据表示为每个HPF(20×)(±S.D.)的平均入侵细胞数,每个条件至少20个字段。使用t检验确定平均值的统计显著性,其中*=p<0.01相对于荧光素酶对照。si=siRNA;Luc=荧光素酶,LMNA=拉明A/C,MT1-C=自定义MT1-MMP,MT1-SP=智能水塘®MT1-MMP,MT1-sc=置乱的MT1-MMP。(B) 如图2所示,对来自面板A的siRNA转染HT1080细胞进行成像,以证明肿瘤细胞侵袭。放大倍数=20×。比例尺=50μm。箭头表示入侵开始时单层的位置。
图13
图13
HT1080侵袭率依赖于MT1-MMP将转染siRNA靶向荧光素酶(A)、MT1-MMP(自定义)(B)或搅乱的MT1-MMP(C)的HT1080细胞接种到3.75 mg/ml胶原凝胶中的玻璃外壳中(详细信息请参见方法),并在1μM LPA存在下侵入48小时。如图3所示收集数据,并绘制出与时间(D)的关系图。采用线性回归法计算侵袭率(见表1)。数据表示为三次试验每个时间点的平均侵入率(n=3口井,±S.D.)。放大倍数=10倍。比例尺=200μm。虚线表示肿瘤细胞浸润的前方。si=siRNA;Luc=荧光素酶,MT1-C=自定义MT1-MMP,MT1-sc=置乱的MT1-MMP。
图14
图14
当细胞嵌入三维胶原基质中时,肿瘤细胞运动需要MT1-MMP显示了荧光素酶或自定义MT1-MMP siRNA转染的Nuc-GFP HT1080细胞嵌入三维胶原基质中的典型个体24小时追踪(如图7所示)。每10分钟采集一次图像。放大倍数=20×。比例尺=100μm。
图15
图15
示意图总结了LPA、S1P、RhoGTPases和MT1-MMP在肿瘤迁移和胶原基质侵袭中的作用LPA刺激肿瘤细胞迁移,而S1P抑制大多数肿瘤类型在2D基质基质上的迁移。脂质诱导的3D胶原基质侵袭,而不是迁移,需要MT1-MMP。MMP抑制剂只能阻断肿瘤细胞对3D基质的侵袭。

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引用人

工具书类

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