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.2006年2月;4(2):e31。
doi:10.1371/journal.pbio.0040031。 Epub 2005年12月27日。

Sirt1通过抑制胰腺β细胞UCP2调节胰岛素分泌

附属公司

Sirt1通过抑制胰腺β细胞UCP2调节胰岛素分泌

劳拉·博尔多内等。 公共科学图书馆生物. 2006年2月.

勘误表in

  • 《公共科学图书馆·生物》。2006年9月;4(9):e295
  • 更正:Sirt1通过抑制胰腺β细胞中的UCP2调节胰岛素分泌。
    Bordone L、Motta MC、Picard F、Robinson A、Jhala US、Apfeld J、McDonagh T、Lemieux M、McBurney M、Szilvasi A、Easlon EJ、Lin SJ、Guarente L。 Bordone L等人。 《公共科学图书馆·生物》。2015年12月29日;13(12):e1002346。doi:10.1371/journal.pbio.1002346。eCollection 2015年12月。 《公共科学图书馆·生物》。2015 PMID:26714029 免费PMC文章。 没有可用的摘要。

摘要

Sir2和胰岛素/IGF-1是影响低等生物体衰老的主要途径。在秀丽隐杆线虫中,Sir2和胰岛素/IGF-1途径之间可能存在遗传联系。在这里我们研究哺乳动物中的这种联系。我们发现Sirt1正向调节胰腺β细胞的胰岛素分泌。Sirt1通过直接与UCP2启动子结合来抑制解偶联蛋白(UCP)基因UCP2。在SiRNA降低Sirt1的β细胞系中,UCP2水平升高,胰岛素分泌减弱。UCP2的上调与葡萄糖刺激后细胞无法增加ATP水平有关。敲除UCP2可恢复Sirt1减少的细胞分泌胰岛素的能力,表明UCP2导致葡萄糖刺激的胰岛素分泌缺陷。食物缺乏可诱导小鼠胰腺UCP2,这可能是通过降低胰腺中NAD(烟酸衍生物)水平和下调Sirt1而发生的。Sirt1基因敲除小鼠表现出组成性高UCP2表达。我们的研究结果表明,Sirt1调节β细胞中的UCP2,从而影响胰岛素分泌。

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数字

图1
图1。Sirt1定位于朗格汉斯群岛
如前所述,对野生型小鼠的胰腺进行切片和染色。(A) 使用DAPI进行核染色(左上角)。使用Sirt1抗体的免疫荧光(右上角);胰腺同一切片苏木精伊红染色(左下);使用兔二级抗体进行免疫荧光控制(右下)。(B) 用胰岛素抗体(蓝色)、胰高血糖素抗体(红色)或生长抑素抗体(绿色)对野生型(WT)、Sirt1+/-杂合子(HET)或Sirt1−/-纯合子KO小鼠的胰腺进行染色(如左列所示)。显示了所有三种基因型小鼠的代表性胰岛。皱褶也是银染的,用于形态测量(右栏)。岛屿显示为深色图形,其面积是使用Image-Pro 4.1 Plus软件通过扫描确定的。(C) 面积显示为整个胰腺面积的百分比。
图2
图2。Sirt1 KO小鼠的胰岛素水平较低
(A) 野生型(开放条形)或Sirt1 KO小鼠(黑色条形)的血浆胰岛素水平随意或O/N饥饿后(n个=12野生型,11 KO*第页<0.03英寸随意O/N饥饿小鼠(ANOVA)。(B) 注射葡萄糖后2、10或20分钟Sirt1 KO小鼠(黑条)与野生型小鼠(开条)的血浆胰岛素水平比较(n个=4或5*第页与野生型方差分析相比,<0.05)。(C) 20 mM葡萄糖诱导1小时后,从野生型(开栅)或Sirt1 KO小鼠(黑栅)分离的胰岛中的胰岛素分泌(n个= 4, *第页<0.005(野生型,方差分析)。(D) 野生型(开条)和Sirt1 KO(黑条)小鼠的葡萄糖水平(n个=12野生型,11 KO*第页< 0.03随意,方差分析)。(E) 野生型(黑色)和Sirt1 KO(绿色)小鼠的葡萄糖耐量试验(n个= 6, *第页20、40、60和120分钟时<0.05)。
图3
图3。Sirt1是INS-1和MIN6细胞胰岛素分泌的正调节因子
(A) 使用Sirt1抗体(绿色)和DAPI染色(蓝色)在INS-1细胞中进行免疫荧光。Sirt1的核定位是显而易见的。(B) 与4 mM葡萄糖对照组相比,16.7 mM葡萄糖(+)诱导INS-1细胞胰岛素分泌。左侧显示没有烟酰胺,右侧显示在诱导前用10 mM烟酰胺治疗48小时(n个=3个实验,一式三份*第页在无烟酰胺实验中<0.05,方差分析)。(C) 与对照细胞(pSUPER)相比,INS-1细胞中Sirt1蛋白(SiRNA-Sirt1)敲低水平的Western blot。(D) 感染pSUPERretro-SiRNA-GFP对照细胞(开条)或pSUPER retro-Sirt1敲除细胞(黑条)的INS-1细胞被诱导分泌胰岛素,如(B)所示(n个=3个实验,一式三份*第页对照实验中<0.008,方差分析)。(E) 与对照细胞(pSUPER)相比,MIN6细胞中Sirt1蛋白(SiRNA-Sirt1)敲低水平的Western blot。(F) 在不存在或存在烟酰胺的情况下,用pSUPER对照载体(开条)或SiRNA-Sirt1载体(黑条)在MIN6细胞中诱导葡萄糖分泌(20mM对4mM)(n个=3个实验,一式三份*第页无烟酰胺对照组<0.05,方差分析)。(G) 用对照或SiRNA Sirt1载体稳定转染INS-1细胞的葡萄糖摄取。添加后10分钟通过流式细胞术测定2-NBDG荧光,并以任意单位表示(n个=2*第页<0.0005(与无葡萄糖相比)。
图4
图4。在Sirt1敲除细胞和Sirt1 KO小鼠中UCP2上调
(A) 用控制载体(pSUPER)或SiRNA-Sort1载体(SiRNA-Sirt1)对细胞中胰岛素基因INS-1进行Northern杂交。(B和C)使用特定抗体对参与胰岛素合成和分泌的靶点进行Western blot分析:cEBP/β,胰岛素受体α和β,以及kir6.2,K+通道受体亚单位。(D) 用16.7mM葡萄糖(+)或4mM葡萄糖(-)处理的INS-1对照细胞(开条)或Sirt1敲除细胞(黑条)中ATP/ADP水平的测量(n个=3个实验,一式三份*第页pSUPER实验中<0.005;方差分析)。(E) INS-1对照细胞(pSUPER)或敲除细胞(SiRNA-Sirt1)中UCP2的Western blot分析。(F) INS-1对照细胞(pSUPER)或敲除细胞(SiRNA-Sirt1)中UCP2的Northern blot分析。(G) 添加葡萄糖后INS-1细胞中的NADH水平由自身荧光测定[46],并以任意单位表示。使用稳定转染对照或Sirt1 SiRNA载体的细胞(n个= 2, *第页<0.05(与无葡萄糖相比)。(H) 两个野生型或两个Sirt1 KO小鼠分离胰岛中的UCP2蛋白水平。在所有Western和Northern印迹中,微管蛋白或肌动蛋白被用作负荷控制。
图5
图5。Sirt1与UCP2启动子结合并抑制基因
(A) 体外CAT试验。用UCP2启动子驱动的CAT报告子转染293T细胞。如图所示,细胞也被Sirt1与否和PPARγ与否联合转染。CAT活性测定(n个=3个实验,一式三份*第页在无Sirt1转染实验中,ANOVA为<0.05)。(B) UCP2启动子中引物集(箭头)的示意图(示意图和摘录的DNA序列)。(C) 如图所示,使用Sirt1抗体或Gal4对照抗体在INS-1对照细胞(1-3通道)或Sirt1敲除细胞(4-6列)上进行染色质免疫沉淀(IP)。用指定的引物进行PCR。INPUT(第7-10列)是指对免疫沉淀前制备的样品进行的PCR。PCR阴性对照(减去DNA)也显示出来(第11列和第12列)。
图6
图6。Sirt1敲除细胞中UCP2的敲除恢复葡萄糖诱导的胰岛素分泌
(A) 对照INS-1细胞中UCP2 RNA的Northern blot,以及Sirt1(SiRNA-Sirt1)、UCP2(SiRNA UCP2)或Sirt1和UCP2两者(SiRNA Sirt1-SiRNA UCP2)敲除的细胞。通过密度测定法对RNA进行定量,将对照细胞中UCP2的水平设置为1.0。(B) 用16.7 mM葡萄糖(+)或4mM葡萄糖(-)处理1 h后,INS-1控制细胞和Sirt1、UCP2或Sirt1和UCP2均下调的细胞中的胰岛素分泌(n个=3个实验,一式三份*第页SiRNA Sirt1-SiRNA UCP2中<0.05,方差分析)。
图7
图7。喂食或饥饿野生型小鼠的UCP2 mRNA或蛋白质水平
(A) 两人全胰腺UCP2的Northern杂交随意小鼠和两只小鼠饥饿18小时(B)两只小鼠分离胰岛中UCP2的Western blot随意还有两只饥饿的老鼠。(C) 野生型(WT)或Sirt1 KO幼崽UCP2的Western blot随意或饥饿18小时。所示实验是所分析的四对野生型和KO窝友的代表。(D) 喂食或饥饿的野生型或Sirt1 KO小鼠UCP2的RT-PCR。
图8
图8。喂食和饥饿小鼠的NAD和NADH水平
对7只喂食和7只饥饿野生型小鼠的胰腺进行了测量,其水平以nmol/g组织表示。饥饿小鼠体内NAD的减少与第页<0.0005,而喂食组与饥饿组的NADH水平没有显著差异。

中的注释

  • sirt1基因根据饮食促进胰岛素分泌。
    Chanut F号。 Chanut F号。 《公共科学图书馆·生物》。2006年2月;4(2):e44。doi:10.1371/journal.pbio.0040044。Epub 2005年12月27日。 《公共科学图书馆·生物》。2006 PMID:20076530 免费PMC文章。 没有可用的摘要。

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