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生命科学联盟。2023年2月;6(2):e202201801。
2022年11月29日在线发布。 doi(操作界面):10.26508/lsa.202201801
PMCID公司:项目经理C9711858
PMID:36446522

果蝇属pVALIUM10 TRiP RNAi线路导致基于网关的转基因的非期望沉默

迪米特里耶·斯坦科维奇,资源,形式化分析,验证,调查,可视化,方法,写作原稿,写作-评论和编辑,1 加博尔·索尔达斯,概念化,形式化分析,验证,方法,写作原稿,写作-评论和编辑,2米尔卡·乌利洛娃,概念化,资源,数据管理,形式化分析,监督,资金获取,验证,调查,可视化,方法,写作原稿,写作-评论和编辑通讯作者1

果蝇属pVALIUM10 TRiP RNAi株通过靶向attB位点,导致在Gateway克隆技术的帮助下产生的转基因报告子和过表达株被意外击倒。

摘要

使用双链RNA的转录后基因沉默技术彻底改变了功能遗传学领域,使各种生物的基因功能快速而容易地被破坏。果蝇属,许多转基因RNAi株已在大规模工作中产生,包括果蝇属转基因RNAi项目(TRiP),促进体内几乎所有果蝇属具有时空分辨率的基因。现有的转基因RNAi株系代表了苍蝇群落的基本资源,为解决与基础和生物医学研究领域相关的广泛生物学问题提供了前所未有的机会。然而,应注意RNAi方法的效率和特异性。在这里,我们证明了基于pVALIUM10的RNAi株(占总TRiP收集量的约13%)(13410个基于pVARIUM TRiP的RNAi株中的1808个)会导致从Gateway目的载体表达的转基因的非目标沉默。沉默是通过靶向位点特异性重组产生的attB1和attB2序列介导的,并包含在转录的mRNA中。从Gateway表达载体中删除这些attB位点可以防止沉默并恢复预期的转基因表达。

介绍

dsRNA-介导的转录后基因沉默,也称为RNAi,是一种古老的抗病毒防御机制,已被用作各种培养细胞、植物和动物模型系统中反向功能遗传学的有力工具(Kennerdell&Carthew,1998年;Lohmann等人,1999年;Wargelius等人,1999年;Wianny&Zernicka-Goetz,2000年;Zamore等人,2000年). dsRNA沉默依赖于一种名为Dicer的高度保守的RNase III酶,该酶识别dsRNA并将其加工成21-23 bp的小片段(siRNA)。当加载到多蛋白RNA诱导的沉默复合物中时,引导链有助于与互补的靶向RNA配对,这些互补的靶RNA随后会被Argonaut蛋白的作用降解(Tomari&Zamore,2005年). 果蝇属,通过使用转基因二进制表达系统(如Gal4/UAS)表达dsRNA,可以实现时空控制的RNAi敲除(Brand&Perrimon,1993年). 最初的转基因RNAi系是使用从一个质粒转录的连接性反向重复序列质粒生成的(Kennerdell&Carthew,1998年)或两个(佐丹奴等人,2002年)相反的启动子。然而,这些载体是不稳定的,并且通常用于克隆的菌株不能很好地耐受(哈根和沃伦,1983年;Piccin等人,2001年),这个问题后来通过在重复序列之间引入内含子间隔符来解决(Lee&Carthew,2003年;Bao&Cagan,2006年). 这一循序渐进的进展导致了pVALIUM(蠕虫attB-loxP-intron-UAS-MCS)的开发,这是一种通用的转基因RNAi文库生成载体系统。pVALIUM RNAi载体包含眼睛颜色选择标记(朱砂),一个attB位点,使phiC31介导的位点定向整合到预定义的基因组位置,白色自由贸易区内含子促进dsRNA的加工,一盒两个UAS五聚体,其中一个两侧有loxP位点以调节dsRNA表达水平,以及多个克隆位点(MCS)(Ni等人,2008年).

基于pVALIUM10的高效转基因RNAi库存在果蝇属转基因RNAi项目(TRiP;https://fgr.hms.harvard.edu/fly-in-vivo-rnai)哈佛医学院https://fgr.hms.harvard.edu代表了果蝇属社区(Perkins等人,2015年). 撰写本文时,布卢明顿有1808种基于pVALIUM10的转基因TRiP RNAi库存果蝇属库存中心(BDSC;https://bdsc.indiana.edu/index.html) (佩里蒙等人,2010年). pVALIUM10载体携带吉普赛人显著提高击倒效率的绝缘体,以及两个倒置的“attR1-选择-attR2”盒,通过位点特异性网关体外重组促进dsRNA片段的克隆(Ni等人,2009年;Reece-Hoyes&Walhout,2018年). 通过LR克隆酶催化attL和attR位点之间的重组,可以很容易地将长度为400–600 bp且两侧有attL1和attL2重组位点的所需单个片段从入口载体转移到pVALIUM10目的载体,从而产生UAS驱动的dsRNA表达载体(Ni等人,2009年).

Gateway克隆技术还经常用于生成用于表位标记或未标记蛋白质表达的转基因构建物,利用果蝇属网关质粒收集果蝇属基因组资源中心(DGRC;https://dgrc.bio.indiana.edu/). 重要的是,与pVALIUM10 dsRNA质粒一样,网关表达载体的产生依赖于attL和attR位点之间的重组,从而形成attB1和attB2位点。

在这里,我们证明了pVALIUM10衍生的RNAi株会导致通过Gateway克隆技术产生的转基因报告基因和过表达株遭到不良的敲除。它们通过靶向作为转录mRNA一部分的attB位点来实现这一目的。从Gateway表达目的载体中删除attB1和attB2序列会消除这种影响并恢复预期的转基因表达水平。

结果

多个pVALIUM10 RNAi系对RNase H1::GFP报告基因的意外脱靶沉默

基于RNAi的体内基因筛查已被证明在识别多种肿瘤的发育和病理过程中涉及的新基因方面非常成功果蝇属使用组织特异性Gal4驱动线表达的体组织(Lesch等人,2010年;Neey等人,2010年;Saj等人,2010年;Port等人,2011年;Zeng等人,2015;Pletcher等人,2019年;Rotelli等人,2019年;Zhou等人,2019年;Graca等人,2021年;Rylee等人,2022年). 因此,我们着手进行候选基因筛查,旨在确定控制基因组稳定性的因素。在潜在候选基因的预筛选过程中,我们观察到pVALIUM10-based的表达BuGZ公司RNAi[TRiP.JF02830]在发育中的三龄翼膜囊区的RNAi线,使用球蛋白Gal4,无人机-mRFP(nub>mRFP)驱动系,有效抑制多表位标记的BuGZ转基因(BuGZ公司FlyFos[v318366]) (Sarov等人,2006年) (图1A、B和D). 使用独立的BuGZ公司RNAi[KK104498]从维也纳出发的线路果蝇属资源中心(VDRC)KK RNAi库(图1C和D). 受这些结果的鼓舞,两个BuGZ RNAi株都被纳入候选基因筛选,该筛选基于用nub>mRFP驱动程序。作为基因组稳定性的读数,我们使用了通过重组核糖核酸酶H1将序列从果蝇属网关质粒收集。这导致在多泛素启动子的控制下C末端GFP标记的RNase H1的表达(图2A和B). RNase H1酶识别并分解转录过程中出现的R环,即DNA:RNA杂交体,如果无法解决,将对基因组稳定性构成威胁(圣佩雷拉和阿奎莱拉,2015年;Crossley等人,2019年). 出乎意料的是,我们观察到RNase H1::GFP信号在表达BuGZ公司RNAi[TRiP.JF02830]但不是BuGZ公司RNAi[KK104498]线路(图2C、D和H). 令人惊讶的是,基于pVALIUM10的RNA酶H1::GFP也有类似的下调myc公司RNAi[TRiP.JF01761]但不是myc公司RNAi[TRiP.HMS01538]myc公司RNAi[GD2948]分别来自pVALIUM20和pMF3载体(图1D2E–H型). 所有三个myc公司其他人已经证明RNAi线路有效(Aughey等人,2016年;Kim-Yip&Nystul,2018年;Rust等人,2018;Ledru等人,2022年). 这些结果表明,受试的pVALIUM10 TRiP RNAi株而非pVALIUM20、KK或GD株可能会导致RNase H1::GFP转基因的不良沉默。我们进一步推测,从pVALIUM10表达的dsRNA包含与触发这种意想不到的脱靶效应的靶基因特异性序列无关的片段。

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pVALIUM10和KK RNAi线路可有效沉默。

(A、B、C)pVALIUM10的表达BuGZ公司RNAi[行程JF02830](B,B’)和基于KKBuGZ公司RNAi[KK104498]使用球蛋白Gal4,UAS-myr-mRFP驾驶员(核心>mRFP,淡蓝色)导致BuGZ显著减少FlyFos[v318366]翼盘(WDs)囊区相对于铰链和凹槽的转基因蛋白质,并控制WD(A,A')。显微照片显示了从7日龄AEL三龄幼虫分离的WDs的多个共焦切片的投影。多岩坑-标记为BuGZFlyFos[v318366]用抗GFP抗体(白色)免疫染色观察蛋白质。用DAPI(洋红色)对细胞核进行复染。比例尺:100µ米。(D)用于克隆和过度表达dsRNA的各种载体的示意图。在缺乏靶向特异性抗体的情况下,可以在内源性调控序列的控制下,借助表达多孔标记蛋白的FlyFos转基因来评估RNAi功效。

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基于pVALIUM10的株系导致RNase H1::GFP转基因报告子的非靶向沉默。

(A)转基因的示意图pUWG-R酶H1表达多泛素C末端GFP标记的RNase H1::GFP蛋白的报告构建(联合国大学)启动程序。这个核糖核酸酶H1编码序列的两侧是通过LR克隆酶催化的网关介导的重组产生的attB1和attB2位点。(B、C、D、E、F、G)用GFP特异性抗体进行的免疫染色显示,细胞核蛋白结构域(mRFP,浅蓝色)中的RNase H1::GFP水平显著降低,其中pVALIUM10基于BuGZ公司RNAi[行程JF02830](C) 以及myc公司RNAi[TRiP.JF01761](E) RNAi系使用球蛋白Gal4,UAS-myr-mRFP驾驶员(nub>mRFP). 在对照WD(B)和KK-based表达后,未观察到RNase H1::GFP信号的下调BuGZ公司RNAi[KK104498](D) ,基于pVALIUM20myc公司RNAi[TRiP.HMS01538](F) ,或基于GDmyc公司RNAi[GD2948](G) 。显微照片显示了从7日龄AEL三龄幼虫分离的WDs的多个共焦切片的投影。用DAPI(洋红色)对细胞核进行复染。比例尺:100µ米。(H)RNase H1::GFP信号的定量描述为眼袋和凹口区域之间的相对强度比。采用Tukey多重比较检验,通过单因素方差分析确定统计显著性;n≥3**P(P)< 0.01, ****P(P)<0.0001,不适用,无显著性。(一)pVALIUM10 RNAi系的产生依赖于LR克隆酶介导的dsRNA片段从进入载体到pVALIUM10目的载体的重组(Ni等人,2009年). 由pVALIUM10 dsRNA表达载体产生的dsRNA发夹是siRNA物种的来源,siRNA物种不仅针对感兴趣的转录物(目标ORF),还针对通过相同重组机制产生的任何网关表达载体中的attB1和attB2位点。

此图的源数据可用。

pVALIUM10 RNAi和Gateway表达质粒共享attB重组位点

为了确定pVALIUM10 TRiP RNAi通过dsRNA介导的RNase H1::GFP转基因敲除的潜在靶点,我们比较了质粒序列。我们发现attB1和attB2位点在基于Gateway的表达载体(包括pUWG和pVALIUM10 TRiP RNAi质粒)之间共享。attB1和attB2位点的长度为25 bp,由LR克隆酶介导的attL和attR序列之间的重组产生。考虑到attB1和attB2位点的重复,在pVALIUM10 TRiP RNAis中乘客和引导靶序列片段的两侧,这些序列被转录,可能有助于Dicer的dsRNA干环底物。基于这些结果,我们假设由attB1和attB2产生的dsRNA可以通过attB位点靶向并沉默基于网关的转基因(图2I).

pVALIUM10 RNAi系通过attB位点沉默Gateway转基因

为了验证我们的假设,我们克隆了m樱桃色将序列编码到pUWG网关表达载体(pUWG-m樱桃色)允许普遍表达m樱桃色转录本两侧为attB1和attB2位点。pUWG-m樱桃色然后将载体用作重叠PCR的模板,以生成pUWGΔattB-m樱桃色缺少attB站点的构造(图3A). 这两种质粒都被用于通过标准品建立转基因蝇系果蝇属种系转化法(Rubin&Spradling,1982年). 易感性或抵抗力ubi-m樱桃(pUWG)-m樱桃色)和联合国大学ΔattB-m樱桃色(pUWG)ΔattB-m樱桃色)然后,通过驱动不同的RNAi株,在nub-Gal4合金驱动程序。使用抗RFP抗体对三龄翼型椎间盘进行免疫染色,发现ubi-mCherry和ubi的模式相同ΔattB-对照组中的樱桃转基因(节点>)背景(图3B和C). 相比之下,ubi-mCherry的水平,而不是ubiΔattB-mCherry转基因蛋白在过表达BuGZ公司myc公司pVALIUM10 TRiP RNAi线路(图3D、E、H–J和M),而当BuGZ公司myc公司分别使用KK和pVALIUM20 RNAi线路敲除(图3F-H和K-M). 重要的是,使用一组额外的pVALIUM10 TRiP RNAi序列,以靶向性为靶点,重新描述了ubi-mCherry的attB位点依赖性沉默附件3,嘴唇4,yki公司,DH44型,ftz-f1型,杂志,小子、和行动β基因(图S1).

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pVALIUM10 RNAi序列通过attB1和attB2位点沉默Gateway转基因。

(A)转基因示意图pUWG-m樱桃色和突变型pUWG公司ΔattB-m樱桃色记者构建。mCherry由多泛素表达(联合国大学)启动程序。(B、C) ubi-m樱桃和突变型联合国大学ΔattB-m樱桃色记者在翅膀的影像盘上显示出类似的表达模式。(D、E、F、G、H、I、J、K、L、M) ubi-m樱桃被pVALIUM10有效下调BuGZ公司RNAi[行程JF02830]myc公司RNAi[TRiP.JF01761]球蛋白Gal4驾驶员(节点>)相对于WD的其余部分(D、H、I、M)。(东、西、中、日)相反,attB1和attB2序列的缺失使得联合国大学ΔattB-m樱桃色报告者对pVALIUM10 RNAi介导的沉默具有耐药性(E,H,J,M)。(F、G、H、K、L、M)都不是基于KK(BuGZ公司RNA干扰[KK104498])也不基于pVALIUM20(myc公司RNAi[TRiP.HMS01538])RNAi株系影响未修饰或突变报告基因结构(F、G、H、K、L、M)表达的mCherry水平。显微照片显示了用抗mRFP抗体(白色)免疫染色的第7天AEL三龄幼虫分离的WDs的多个共焦切片的投影。用DAPI(洋红色)对细胞核进行复染。比例尺:100µ米。(高、中)mCherry信号的量化描述为眼袋和眼窝区域(H,M)之间的相对强度比。每组中的上标文字表示使用的RNAi类型。采用Tukey多重比较检验,通过单因素方差分析确定统计显著性;n≥3**P(P)< 0.01, ****P(P)<0.0001,不适用,无显著性。(N、O、P、Q)pVALIUM10的表达BuGZ公司RNAi[行程JF02830](O) 在翼袋中使用球蛋白Gal4,无人机-mRFP驾驶员(核心>mRFP)与对照组(N)和基于KK的SmD3::3xHA水平相比降低BuGZ公司RNA干扰[KK104498](P) ●●●●。注意SmD3的病灶:对照组中的3xHA蛋白(N“)和BuGZ公司RNAi[KK104498]不存在于BuGZ公司RNAi[行程JF02830]-表达细胞(O”)。显微照片显示了用抗-HA抗体(白色,N',O',P';红色,N“,O”,P“)免疫染色的第7天AEL三龄幼虫分离的WDs的多个或单个共焦切片的投影。用DAPI(洋红色)对细胞核进行复染。比例尺:100或5μm(N“,O”,P“)。(问)眼袋区SmD3::3xHA信号强度(Q,左)和SmD3:::3xHA-阳性点刺(Q,右)的定量。分别采用Tukey多重比较检验和Kruskal–Wallis检验进行单因素方差分析,确定统计学显著性;n≥6**P(P)< 0.01, ***P(P)<0.001,无显著性差异。

此图的源数据可用。

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pVALIUM10 RNAi序列通过attB1和attB2位点沉默Gateway转基因。

(A、B、C、D、E、F、G、H、I、J、K、L、M、N、O、P)重量ubi-m樱桃但不是联合国大学ΔattB-m樱桃色缺乏attB1和attB2序列的报告者通过靶向pVALIUM10 RNAi株在眼袋区域有效下调附件3(A、B)、,yki公司,(C,D),行动β(E,F),频率-频率f1(G,H),DH44型(I,嘴唇4(K,L),杂志(M,N),和小子(O,P)转录本在球蛋白Gal4驾驶员(节点>)相对于WD的其余部分。显微照片显示了用抗mRFP抗体(白色)免疫染色的第7天AEL三龄幼虫分离的WDs的多个共焦切片的投影。用DAPI(洋红色)对细胞核进行复染。交叉保持在29°C。比例尺:100µ米。

最后,我们测试了pVALIUM10 TRiP RNAi系是否也可能干扰含有UAS诱导型attB的转录物,例如从Gateway目的地载体pGW-HA.attB表达的转基因苍蝇ORF(Bischof等人,2014年). 为此,我们评估了pVALIUM10或KK-BuGZ-RNAi株存在时SmD3::3xHA蛋白的水平。与之相反,对照组的翼囊细胞中SmD3::3xHA蛋白和阳性点刺的富集(节点>)和BuGZ公司RNAi[KK104498]在表达翼盘时,总水平和阳性穿孔数在年明显减少nub>BuGZRNAi[TRiP.JF02830]单元格(图3N-Q). 这些结果表明,由pVALIUM10 RNAi载体产生的dsRNA发夹产生attB1和attB2-siRNAs,指导含有此类靶位点的转录物的破坏。这种通过attB位点的离靶沉默是基于pVALIUM10的RNAi谱线所特有的。attB1和attB2位点的缺失使得网关衍生转录物对非预期pVALIUM10 TRiP RNAi沉默具有抵抗力。

讨论

利用转基因RNAi实现候选基因的发育阶段和组织特异性敲除,并在果蝇属在过去二十年里已经司空见惯了(Dietzl等人,2007年;Port等人,2011年;Blake等人,2017年;胡等,2017). 近年来,我们对RNAi机制的认识和高效生成新型RNAi结构的工具都有了很大的发展。因此,建立了几个独立的转基因RNAi库存集合,包括维也纳果蝇属库存中心(VDRC,23411 RNAi线路;https://stockcenter.vdrc.at/control/main网站),布鲁明顿果蝇属库存中心(BDSC,13698 RNAi线路;https://bdsc.indiana.edu/)和国家遗传学研究所(NIG,12365 RNAi株;https://shigen.nig.ac.jp/fly/nigfly/)在写作时。然而,尽管转基因技术被广泛应用,但对基因表达的转基因操作仍可能产生无法预料的后果。VDRC KK收集的大部分RNAi株被发现产生表型,因为二次插入和随后的异位表达顶部基因(Green等人,2014年;Visser等人,2016年). 最近,范德格拉夫(van der Graaf)及其同事报告称,转基因插入到常用的附件40第二条染色体上的着落位点可以降低LINC复合体成员Msp300的表达,从而导致核大小、形状和定位表型(范德格拉夫等人,2022 预打印).

在这里,我们证明了基于pVALIUM10的RNAi株导致从Gateway表达载体或可能包含attB1和attB2位点的任何转录物表达的ORF的非靶向沉默。我们表明,删除这些站点可以消除不受欢迎的击倒。鉴于Gateway表达载体广泛用于生成转基因蛋白报告子和标记过表达构建物,我们的结果表明,同时使用pVALIUM10 TRiP RNAi可能会导致与所研究的生物过程无关的实验伪影。

值得注意的是,在pVALIUM10载体的原始出版物中,作者通过比较发夹序列和果蝇属基因组(Ni等人,2009年),它不包含与attB1和attB2序列等效的内源性21-nt延伸。然而,作为转基因工具箱果蝇属在不断扩大的情况下,每一个额外的转基因都有可能与现有的RNAi株产生合成效应。因此,我们建议研究人员在开始实验之前验证TRiP RNAi系的类型或表达载体序列。例如,我们不建议将基于pVALIUM10的RNAi与FlyORF的3xHA标记过表达株结合(网址:https://flyorf.ch) (Bischof等人,2014年)或fly-FUCCI(基于荧光泛素的细胞周期指示剂)细胞系,通过表达两个荧光标记的降解子,可以实时可视化细胞周期动态(Zielke等人,2014年). 在这两种情况下,转基因都是通过Gateway反应产生的,并且包含插入ORF两侧的attB位点(Bischof等人,2014年;Zielke等人,2014年)这可能导致转录本的非目标沉默。此外,这一发现加强了这样一种观点,即RNAi实验应该遵循过去几十年建立的标准,包括研究可能的非靶向效应以消除意外基因的敲除,使用多个独立的RNAi株来重述表型,并确认靶向基因产品的敲除(Echeverri等人,2006年;Green等人,2014年;卡亚·乔珀和施诺勒,2016年).

材料和方法

蝇类和畜牧业

以下内容果蝇属使用菌株:w个1118(BDSC;RRID:BDSC_3605),nubbin-Gal4,UAS-myr-mRFP(nub>mRFP),BuGZ公司FlyFos[v318366](VDRC),BuGZ公司RNAi[TRiP.JF02830](BDSC;RRID:BDSC_27996),BuGZ公司RNAi[KK104498](VDRC),唇部4核糖核酸干扰[TRiP.HMO5136](BDSC;RRID:BDSC_28925),myc公司RNAi[TRiP.JF01761](BDSC;RRID:BDSC_25783),myc公司RNAi[TRiP.HMS01538](BDSC;RRID:BDSC_36123),myc公司RNAi[GD2948](VDRC),行动βRNAi[TRiP.JF03276](BDSC;RRID:BDSC_29597),ftz-f1型RNAi[TRiP.JF02738](BDSC;RRID:BDSC_27659),yki公司RNAi[TRiP.JF03119](BDSC;RRID:BDSC_31965),附件3RNAi[TRiP.JF02303](BDSC;RRID:BDSC_26741),DH44型RNAi【TRiP.JF01822】(BDSC;RRID:BDSC_25804),小子RNA干扰[TRiP.HM05078](BDSC;RRID:BDSC_28590),杂志RNA干扰[TRiP.HM05142](BDSC;RRID:BDSC_28931),SmD3::3xHA[飞行ORF F003987](FlyORF),以及ubi-核酸H1::GFP,ubi-m樱桃、和联合国大学ΔattB-m樱桃色(本研究)。全部果蝇属股票列于表S1中。除非另有规定,否则所有杂交组合都是在25°C下建立并保持的,饮食由0.8%琼脂、8%玉米粉、1%大豆粉、1.8%干酵母、8%麦芽提取物和2.2%甜菜糖浆组成,并添加0.625%丙酸和0.15%尼泊金。w个1118行被用作控件。

质粒和转基因株系的产生

的ORFrnh1号机组(FBgn0023171号)被放大了黑腹果蝇cDNA(w个1118)使用含有NotI和SalI限制位点的引物。排除了终止密码子,以便对蛋白质进行C末端标记。ORF被克隆到Gateway pENTR 4双选择载体(Cat#A10465;Thermo Fisher Scientific)。然后根据制造商的说明(类别号11791020;赛默飞世尔科技公司),使用LR克隆酶II酶混合物将ORF重组到pUWG载体(类别号1284;DGRC)。的编码顺序m樱桃色(GenBank:AY678264.1号)用特异性引物扩增,克隆到包含终止密码子的pENTR 4双选择载体(Cat#A10465;Invitrogen)中,然后重组到pUWG载体-m樱桃色). 采用重叠PCR策略生成pUWGΔattB-m樱桃色由LR重组导致的缺乏attB位点的结构。使用原始pUWG进行三次单独的PCR以产生用于组装的片段-m樱桃色质粒作为模板。第一对引物的正向引物含有XhoI限制位点,而反向引物含有一个XbaI限制位点。用于合成下游片段的反向和正向引物的部分互补性使最终产物中的attB位点被排除。将最终PCR产物连接到pUWG中-m樱桃色用XbaI和XhoI消化质粒。通过标准P-元件介导的转化,使用w个1118 果蝇属应变。表S2列出了所有引物和质粒。

组织解剖和免疫染色

三龄翼状椎间盘解剖果蝇属幼虫(产卵后7天)在室温下用4%多聚甲醛固定在含有0.1%Triton X(PBS-T)的PBS中25分钟。用PBS-T洗涤固定组织三次。将初级抗体在封闭缓冲液(含有0.3%BSA的PBS-T)中稀释,并在4°C下对组织染色过夜。使用了以下主要抗体:兔抗mRFP(1:500,Cat#PM005,RRID:AB_591279;MBL国际)、山羊抗GFP(1:50,Cat#ab6673,RRID:AB_305643;Abcam)和兔抗HA(1:1000,Cat#AB 9110,RRID:1AB_307019;Abcam)。清洗后,将样品与相应的Alexa Fluor 488(1:2000,Cat#A-11034,RRID:AB_2576217;Thermo Fisher Scientific)-、Cy2(1:2000、Cat#705-225-147,RRID:AB_2307341;Jackson ImmunoResearch Labs)-或Cy3(1:2000;Cat#711-165-152,RRID:1AB_2307443;Jackson-ImunoResource Labs)培养-在4°C下过夜,结合二级抗体,并用DAPI(5 mg/ml储备的1:1000稀释液,Cat#6335.1;Carl Roth GmbH)洗涤和复染,以观察细胞核。纸巾安装在DABCO–Mowiol 4-88(类别号D2522和类别号81381;Sigma-Aldrich)的玻璃载玻片上。

图像采集和处理

使用配备20×UPlan S-Apo(NA 0.85)、40×UPlan-FL(NA 1.30)和60×UPlanApo(NA 1.35)物镜的Olympus FV1000共焦显微镜获得共焦图像和共焦叠加。最大Z投影来自1.4的连续截面-µm步使用FluoView 1000软件(奥林巴斯)(RRID:SCR_014215)和斐济(https://fiji.sc/)(RRID:SCR_002285)。在Adobe Photoshop CC(Adobe Systems,Inc.)(RRID:SCR_014199)中执行最终图像处理,包括面板组装、亮度和对比度调整。这些方案是在Adobe Illustrator CC(Adobe Systems,Inc.)(RRID:SCR_010279)和BioRender.com网站(RRID:SCR_018361;生物渲染)。

mCherry、RNase H1::GFP和SmD3::3xHA信号的定量

荧光信号强度通过斐济量化(https://fiji.sc/)(RRID:SCR_002285)。对于mCherry和RNase H1::GFP,在眼袋区域的中间创建一个方形选择,并测量平均强度;然后,将相同的选择移到凹槽的中间,重复测量。将这两个值进行分割,以生成每个翼盘的囊/囊强度比。对于SmD3::3xHA,测量并划分袋区域中SmD3::3xHA和mRFP信号的平均强度,以产生每个翼盘的归一化值。使用独立WD核蛋白域的缩放图像来计算每1000个SmD3::3xHA-阳性点的数量-µ2区域。在GraphPad Prism(RRID:SCR_002798)中,通过使用Tukey多重比较试验(信号强度)或Kruskal–Wallis试验(puntae)的单向方差分析确定统计显著性。

补充材料

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致谢

我们感谢诺伯特·佩里蒙对这篇文章的讨论和评论。我们感谢布卢明顿果蝇属维也纳股票中心(BDSC,美国印第安纳州布卢明顿)果蝇属资源中心(VDRC,奥地利维也纳)果蝇属基因组资源中心(DGRC,由美国印第安纳州布卢明顿NIH拨款2P40OD010949支持)和苏黎世ORFeome项目(瑞士苏黎世FlyORF)提供苍蝇种群和质粒。我们感谢蒂娜·布雷瑟(Tina Bresser)创造了转基因品系,感谢尼尔斯·特谢尔(Nils Teuscher)提供了苍蝇种群维护和技术援助。这项工作由德国研究基金会(DFG,German Research Foundation)根据德国卓越战略-CECAD(EXC 2030-390661388)资助。

作者贡献

  • D Stanković:资源、形式分析、验证、调查、可视化、方法和写作初稿、审查和编辑。
  • 哥伦布:概念化、形式分析、验证、方法论和写作初稿、审查和编辑。
  • M Uhlirova:概念化、资源、数据管理、形式分析、监督、资金获取、验证、调查、可视化、方法论,以及撰写初稿、审查和编辑。

利益冲突声明

提交人声明他们没有利益冲突。

工具书类

  • Aughey GN、Grice SJ、Liu J-L(2016)果蝇Myc和CTP合成酶之间的相互作用.公共科学图书馆-基因 12:e1005867。10.1371/journal.pgen.1005867[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Bao S、Cagan R(2006)用于RNA干扰的快速克隆反向重复序列.核糖核酸 12: 2020–2024. 10.1261/rna.258406[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Bischof J、Sheils EM、Björklund M、Basler K(2014)果蝇ORFeome转基因文库的建立.Nat协议 9: 1607–1620. 10.1038/nprot.2014.105[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Blake AJ、Finger DS、Hardy VL、Ables ET(2017年)基于RNAi的果蝇生殖系干细胞基因功能分析技术.摩尔生物法 1622: 161–184. 10.1007/978-1-4939-7108-4_13[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • AH品牌,佩里蒙N(1993)靶向基因表达作为改变细胞命运和产生显性表型的手段.开发 118: 401–415. 10.1242/dev.118.2.401[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Crossley MP、Bocek M、Cimprich KA(2019年)R环作为细胞调节器和基因组威胁.分子电池 73: 398–411. 2016年10月10日/j.molcel.2019.01.024[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Dietzl G、Chen D、Schnorrer F、Su KC、Barinova Y、Fellner M、Gasser B、Kinsey K、Oppel S、Scheiblauer S等(2007)用于果蝇条件基因失活的全基因组转基因RNAi文库.自然 448: 151–156. 10.1038/性质05954[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Echeverri CJ、Beachy PA、Baum B、Boutros M、Buchholz F、Chanda SK、Downward J、Ellenberg J、Fraser AG、Hacohen N等人(2006年)将大规模RNAi筛查中报告假阳性的风险降至最低.Nat方法 : 777–779. 10.1038/nmeth1006-777[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • 佐丹奴·E、伦迪纳·R、佩卢索一世、福利亚·M(2002)黑腹果蝇对称转录转基因引发的RNAi.遗传学 160: 637–648. 10.1093/基因/160.2.637[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Graca FA、Sheffield N、Puppa M、Finkelstein D、Hunt LC、Demontis F(2021年)大规模转基因RNAi筛选确定调节果蝇肌纤维大小的转录因子.公共科学图书馆-基因 17:e1009926。10.1371/日记本第109926页[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Green EW、Fedele G、Giorgini F、Kyriacou CP(2014)果蝇RNAi采集受显性表型影响.Nat方法 11: 222–223. 10.1038/nmeth.2856[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Hagan CE,Warren GJ(1983年)大肠杆菌质粒中发生频率低但可变的缺失可恢复回文DNA的活性.基因 24: 317–326. 10.1016/0378-1119(83)90092-6 [公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Hu Y、Comjean A、Roesel C、Vinayagam A、Flockhart I、Zirin J、Perkins L、Perrimon N、Mohr SE(2017)FlyRNAi.org——果蝇RNAi筛选中心和转基因RNAi项目数据库:2017年更新.核酸研究 45:D672–D678。10.1093/nar/gkw977[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • 卡亚·乔普尔A,施诺勒F(2016)果蝇体内全基因组RNAi应用指南.摩尔生物法 1478: 117–143. 10.1007/978-1-4939-6371-3_6 [公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Kennerdell JR,Carthew RW(1998年)利用dsRNA-介导的基因干扰证明卷曲和卷曲2在无翼路径中起作用.单元格 95: 1017–1026. 10.1016/s0092-8674(00)81725-0[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Kim Yip RP,Nystul TG(2018)Wingless促进卵泡干细胞EGFR信号传导以维持自我更新.开发 145:开发168716。2012年10月12日/星期168716[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Ledru M、Clark CA、Brown J、Verghese S、Ferrara S、Goodspeed A、Su TT(2022年)差异基因表达分析确定了果蝇辐射诱导再生过程中细胞命运可塑性的决定因素.公共科学图书馆-基因 18:e1009989。10.1371/journal.pgen.1009989[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Lee YS,Carthew RW(2003)为果蝇制作更好的RNAi载体:内含子间隔的使用.方法 30: 322–329. 10.1016/s1046-2023(03)00051-3[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Lesch C、Jo J、Wu Y、Fish GS、Galko MJ(2010)果蝇幼虫靶向UAS-RNAi筛选确定调控不同细胞过程的伤口闭合基因.遗传学 186: 943–957. 10.1534/基因110.121822[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Lohmann JU、Endl I、Bosch TC(1999)九头蛇发育基因的沉默.求文献一篇 214: 211–214. 2006年10月10日/dbio.1999.9407[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Neely GG、Kuba K、Cammarato A、Isobe K、Amann S、Zhang L、Murata M、Elmen L、Gupta V、Arora S等(2010)全球体内果蝇RNAi筛查确定NOT3是心脏功能的保守调节器.单元格 141: 142–153. 2016年10月10日/j.cell.2010.02.023[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Ni JQ、Markstein M、Binari R、Pfeiffer B、Liu LP、Villalta C、Booker M、Perkins L、Perrimon N(2008)黑腹果蝇靶向转基因RNA干扰的载体和参数.Nat方法 5: 49–51. 10.1038/nmeth1146[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Ni JQ、Liu LP、Binari R、Hardy R、Shim HS、Cavallaro A、Booker M、Pfeiffer BD、Markstein M、Wang H等(2009)用于神经遗传学的转基因RNAi系果蝇资源.遗传学 182: 1089–1100. 10.1534/基因109.103630[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Perkins LA、Holderbaum L、Tao R、Hu Y、Sopko R、McCall K、Yang Zhou D、Flockhart I、Binari R、Shim HS等(2015)哈佛医学院转基因RNAi项目:资源和验证.遗传学 201: 843–852. 10.1534/遗传学115.180208[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Perrimon N、Ni JQ、Perkins L(2010)体内RNAi:今天和明天.冷泉Harb Perspect生物 2:a003640。10.1101/cshperspect.a003640[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Piccin A、Salameh A、Benna C、Sandrelli F、Mazzotta G、Zodan M、Rosato E、Kyriacou CP、Costa R(2001)使用GAL4驱动的发夹RNA结合异源间隔区对果蝇成年表型进行有效和可遗传的功能敲除.核酸研究 29:E55–E65。10.1093/nar/29.12.e55[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Pletcher RC、Hardman SL、Intagliata SF、Lawson RL、Page A、Tennessen JM(2019)利用黑腹果蝇TRiP RNAi收集物进行基因筛查,以确定眼睛发育所需的代谢酶.G3(贝塞斯达) 9: 2061–2070. 10.1534/g3.119.400193[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • F港、豪斯曼G港、巴斯勒K港(2011年)全基因组RNA干扰筛选发现两个p24蛋白作为无翼分泌的调节器.EMBO代表 12: 1144–1152. 2011.165年10月10日[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Reece-Hoyes JS,Walhout AJM(2018年)网关重组克隆.冷泉Harb协议 2018:排名前094912。101年10月10日/天,顶部094912[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Rotelli MD、Bolling AM、Killion AW、Weinberg AJ、Dixon MJ、Calvi BR(2019年)果蝇翅膀组织生长所需基因的RNAi筛选.G3(贝塞斯达) 9: 3087–3100. 10.1534/g3.119.400581[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Rubin GM,Spradling AC(1982年)转座因子载体对果蝇的遗传转化.科学类 218: 348–353. 10.1126/科学6289436[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Rust K、Tiwari MD、Mishra VK、Grawe F、Wodarz A(2018年)Myc和Tip60染色质重塑复合体控制果蝇成神经细胞的维持和极性.浮雕J 37:e98659。10.15252/embj.201798659[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Rylee J、Mahato S、Aldrich J、Bergh E、Sizemore B、Feder LE、Grega S、Helms K、Maar M、Britt SG等人(2022年)TRiP RNAi筛选鉴定果蝇光感受器分化所需的分子.G3(贝塞斯达) 12:jkac257。10.1093/g3journal/jkac257[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Saj A、Arziman Z、Stempfle D、van Belle W、Sauder U、Horn T、Dürrenberger M、Paro R、Boutros M、Merdes G(2010)果蝇缺口调节器的体外和体内RNAi联合筛查揭示了广泛的缺口相互作用网络.开发人员单元格 18: 862–876. 2016年10月10日/j.devcel.2010.03.013[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Santos Pereira JM,阿奎莱拉A(2015)R环:基因组动力学和功能的新调节剂.Nat Rev基因 16: 583–597. 10.1038/编号3961[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Sarov M、Schneider S、Pozniakovski A、Roguev A、Ernst S、Zhang Y、Hyman AA、Stewart AF(2006)用于秀丽隐杆线虫功能基因组学的重组管道.Nat方法 : 839–844. 10.1038/nmeth933[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Tomari Y,Zamore PD(2005)前景:RNAi机器.基因开发 19: 517–529. 10.1101/gad.1284105[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • van der Graaf K、Srivastav S、Singh P、McNew JA、Stern M(2022)果蝇attP40对接位点及其衍生物是MSP300的插入突变.生物Rxiv10.1101/2022.05.14.491875(预印本于2022年5月15日发布)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Vissers JH、Manning SA、Kulkarni A、Harvey KF(2016)果蝇RNAi文库调节Hippo通路依赖性组织生长.国家公社 7: 10368. 10.1038/ncomms10368[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Wargelius A、Ellingsen S、Fjose A(1999)双标记RNA诱导斑马鱼胚胎特异性发育缺陷.生物化学-生物物理研究委员会 263: 156–161. 2006年10月10日/bbrc.1999.1343[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Wianny F、Zernicka-Goetz M(2000)双链RNA对小鼠早期发育中基因功能的特异性干扰.Nat细胞生物学 2: 70–75. 10.1038/35000016 [公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Zamore PD、Tuschl T、Sharp PA、Bartel DP(2000)RNAi:双标记RNA以21至23个核苷酸间隔指导ATP依赖的mRNA切割.单元格 101: 25–33. 10.1016/s0092-8674(00)80620-0[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • 曾X、韩L、辛格SR、刘H、纽穆勒RA、严D、胡Y、刘Y、刘伟、林X等(2015)全基因组RNAi筛查确定果蝇肠道干细胞调节相关网络.单元格代表 10: 1226–1238. 2016年10月10日/j.celrep.2015.01.051[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • 周杰,徐磊,段X,刘伟,赵X,王X,尚伟,方X,杨浩,贾L,等(2019)大规模RNAi筛选确定Dhpr是线粒体形态和组织稳态的调节因子.科学进展 5:eaax0365。10.1126/sciadv传真0365[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
  • Zielke N、Korzelius J、van Straaten M、Bender K、Schuhknecht GFP、Dutta D、Xiang J、Edgar BA(2014)Fly-FUCCI:研究复杂组织细胞增殖的通用工具.单元格代表 7: 588–598. 2016年10月10日/j.celrep.2014.03.020[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]

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