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Nat Rev癌症。作者手稿;PMC 2021年9月1日提供。
以最终编辑形式发布为:
2021年1月22日在线发布。 doi(操作界面):10.1038/s41568-020-00323-z
PMCID公司:PMC8353572号
NIHMSID公司:美国国家卫生研究院1724143
PMID:33483715

CAR T细胞机制和功能的最新进展和发现

摘要

本综述讨论了过去三年来我们对嵌合抗原受体(CAR)T细胞疗效和安全性的认识的主要进展和变化。最近,该领域已经深入了解了CAR的各种分子模块如何影响信号传递和功能。我们报告了毒性和耐药性的机制以及克服这些挑战的新型工程和药物干预。展望未来,我们将讨论CAR T细胞治疗的新靶点和适应症,预计在未来一到两年内将到达临床。我们还考虑了一些对CAR T细胞治疗的未来有影响的新研究,包括对制造、异基因产品和药物调节性CAR T淋巴细胞的改变。

目录摘要

本综述概述了过去三年来在嵌合抗原受体(CAR)T细胞治疗的疗效和安全性方面取得的主要进展,并展望了将对这种免疫治疗的未来产生影响的新发现。

介绍

经过20年的微调T细胞工程,嵌合抗原受体(CAR)T细胞在白血病和淋巴瘤患者中的巨大临床成功导致该领域的研究呈指数级增长。2017年,美国食品和药物管理局(FDA)批准CAR T细胞,将该领域带入了一个快节奏和创新研究的时代。在这里,我们讨论自这一里程碑以来该领域学到了什么,以及它将如何影响CAR T细胞治疗的未来。我们首先简要回顾了CAR的基本设计,并讨论了近几年来在每个成分对工程细胞信号传递和功能的影响方面所发现的问题。有趣的是,现在看来,CAR的每个成分都对决定其功能很重要,即使是单个氨基酸的变化也会导致抗原结合、耗竭和持久性的信号阈值的改变。我们还描述了CD19 CAR T细胞的一类毒性:细胞因子释放综合征和神经毒性,以及高级临床试验的最新结果。直到最近,由于缺乏足够的动物模型,临床前CAR T细胞研究受到了限制,但最近在更人性化方法方面的进展使系统测试潜在干预措施成为可能,并阐明了潜在毒性的机制。接下来,我们将回顾我们目前对CAR T细胞耐药性的理解,以及如何通过创新的CAR T淋巴细胞设计来克服耐药性。最后,我们讨论了一系列有希望的新靶点和适应症,以及可能对CAR T细胞治疗的未来产生重大影响的制造创新。

CAR工程

第一代CAR包括一个细胞外抗原识别单链可变片段(scFv),该片段由融合到跨膜区域的抗体序列发展而来,细胞内信号结构域由内源性T细胞受体(TCR)的CD3ζ分子衍生而来14然而,这些CAR T细胞在临床试验中几乎没有疗效,因为扩张和持久性失败5第二代CAR包括一个共刺激域,来源于CD28或4-1BB,位于跨膜和CD3信号域之间6,7第二代CD19-靶向CAR T细胞治疗的第一批B细胞白血病患者具有深刻而持久的反应810因此,CAR T细胞疗法彻底改变了血液系统恶性肿瘤的治疗,并因其对CD19的疗效于2017年获得美国食品药品监督管理局的批准+肿瘤11,12(请参见表1主要公布的临床试验结果)。

表1。

CAR T细胞治疗的主要已发表试验

靶抗原疾病(*表示美国FDA批准)汽车临床试验标识符赞助商患者人数中位年龄(年)响应CRS患者神经毒性患者
CD19编号 B-ALL(儿科)*Tisagenlecleucel;4–1BB协同仿真;CTL019型 NCT02435849号 53,199 诺华制药公司75116个月无复发生存率80%77%40%
CD19编号 复发或难治性DLBCL*阿希卡巴坦·齐洛叶;CD28共刺激;KTE-X19型NCT02348216号ZUMA-1号机组52,200,201Kite Pharma(Gilead Sciences公司)1015883%的客观反应;58%完成响应93%67%
CD19编号 难治性B细胞淋巴瘤*Tisagenlecleucel;4–1BB共刺激;CTL019号机组 NCT02030834号 202,203 宾大2858.564%的总体响应;43%完全缓解57%39%
CD19编号 外套细胞淋巴瘤*阿希卡巴坦·齐洛叶;CD28共刺激;KTE-X19型编号:02601313ZUMA-2号机组204,205Kite制药公司6865客观有效率93%;67%完成响应91%63%
CD19编号 B-全部CD28协同模拟 NCT01044069号 206,207 MSKCC公司534483%完全缓解;平均总生存期12.9个月85%44%
CD22型 B-ALL前复发或难治性4–1BB协同仿真 编号02315612 106,208 NCI公司2119高剂量治疗后73%完全缓解76%未报告
BCMA公司 复发或难治性多发性骨髓瘤Idecaptagene Cicleucel;4–1BB协同仿真;英国广播公司2121 NCT02658929号 137,209 赛尔基因3360客观应答率85%;45%的完成响应率76%42%
BCMA公司 多发性骨髓瘤4–1BB协同仿真 NCT02546167号 138,210 宾大255848%总响应率88%32%

急性淋巴细胞白血病;BCMA、B细胞成熟抗原;嵌合抗原受体;细胞因子释放综合征;弥漫性大B细胞淋巴瘤;Sloan Kettering纪念癌症中心MSKCC;NCI,国家癌症研究所;宾夕法尼亚大学UPenn。

CAR零件和组件

CAR的细胞外部分通常来自可变光(VL(左))和可变重(VH(H))针对感兴趣肿瘤靶点的抗体(scFv)区域(图1). 这两个结构域之间的连接体通常来自重复的甘氨酸和丝氨酸残基,但也使用了其他连接体分子(即Whitlow连接体13). 为了克服与scFv相关的结构和聚合问题,一些CAR被设计为使用单域VHH(小时)骆驼抗体、天然配体或人工蛋白结合结构1416铰链(也称为间隔区)将抗原识别胞外结构域连接到跨膜区域。为了让单链抗体结构域结合其同源抗原,这个铰链需要一定的灵活性。CAR设计中使用了多种铰链区域,包括从CD28和CD8开发的域17CAR的跨膜部分跨越细胞膜脂质双层,通常也来自CD28或CD8。据认为,该结构域可以影响CAR之间的分子相互作用,根据原始蛋白质的内源性跨膜结合形成同型二聚体或三聚体18,19。所有当前美国FDA批准的CAR T细胞产品都是具有CD28或4–1BB共刺激域的第二代设计11,12.除CD28外20和4–1BB21,其他常见的共刺激结构域包括OX4022,CD2723和诱导性T细胞共同刺激物(ICOS)24。如果在一个构造中使用两个协同模拟域,则这被视为第三代CAR22CD3ζ细胞质域是CAR最远端的细胞内部分。该分子包含三个免疫受体酪氨酸基激活基序(ITAM),它们在磷酸化时发出信号25一些研究人员将T细胞功能增强的CAR称为“第四代”CAR,特别是当它们产生额外的蛋白质分子,如细胞因子或拥有额外的受体,如共刺激配体时。这些也被称为TRUCK(为通用细胞因子杀伤而重定向的T细胞)或装甲车26,27.

基本第二代CAR T细胞示意图。

嵌合抗原受体(CAR)分子的胞外部分通常由针对目标的单克隆抗体产生。抗体序列中的可变重链(VH)和可变轻链(VL),也称为单链可变片段(scFv),通过连接子连接,形成CAR分子的抗原特异性区域。铰链或间隔区将scFv锚定在穿过细胞膜的跨膜区域。在细胞内,CAR识别和结合肿瘤抗原的scFv部分上的共刺激域和CD3ζ链信号。共刺激信号依赖于使用的共刺激域–CD28依赖于PI3K,而4-1BB需要肿瘤坏死因子(TNF)受体相关因子(TRAFs)和核因子-κB(NF-κB)。CD3ζ链包含三个免疫受体酪氨酸基激活基序(ITAM)域,这些域在磷酸化后通过ζ相关蛋白70kDa(ZAP70)发出信号。下游信号传导导致T细胞效应器功能,包括穿孔素和颗粒酶的释放,导致靶肿瘤细胞的细胞死亡。

此图由Nature Reviews Cancer版权所有,可在以下网址找到:https://www.nature.com/articles/s41568-020-00323-z.

当单链抗体识别抗原时,CAR T细胞被激活,导致CAR分子聚集和固定。CD3ζ链上ITAM结构域的磷酸化通过酪氨酸激酶ζ相关蛋白70 kDa(ZAP70)启动信号传导,类似于TCR信号传导28这会释放T细胞效应器反应,包括增殖、释放细胞因子、代谢改变和细胞毒性。CAR T细胞被认为主要通过分泌颗粒酶和穿孔素发挥细胞毒功能,但有数据表明,死亡受体也被利用,这是基于下游分子的激活,如BH3-相互作用域死亡激动剂(BID)和FAS相关死亡域蛋白(FADD)2931来自共刺激域的信号依赖于所选域的特定功能,并且可以通过典型序列中的特定突变进行调节32,33.

汽车制造

美国FDA批准的CAR T细胞来源于患者自身的细胞(自体),这避免了异基因排斥或移植物抗宿主病(GvHD)的问题,但需要个性化定制制造。值得注意的是,CAR确实包含外源序列,可以被排斥,尽管在准备性化疗方案中使用抗代谢药物氟达拉滨可以部分缓解这种影响,以促进淋巴耗竭34自体CAR T细胞的制造通常始于患者的白细胞分离,尽管一些研究人员使用了未分离的全外周血35T细胞随后被激活体外在细胞因子混合物存在下,分别通过TCR(CD3)和所选配体(通常为CD28)进行刺激和共刺激。刺激性抗体可以以可溶性形式添加,化学结合到小球上,或在人工抗原提呈细胞(aAPC)上表达36,37T细胞通常在白细胞介素-2(IL-2)的存在下生长,但包括IL-7和IL-15在内的其他细胞因子也被用于操纵整体T细胞表型,并获得不同程度的成功3840激活后,通常通过病毒或非病毒载体将CAR结构引入T细胞。逆转录病毒和慢病毒载体都被认为是安全有效的,并且都随机整合到宿主T细胞基因组中41,42用非病毒载体电穿孔细胞是另一种使用成本低得多的方法,但安全性和有效性仍在评估中43一些CAR T细胞制造现在包括通过CRISPR–Cas9或转录激活物样效应核酸酶(TALENs)进行基因编辑44,45,可与腺相关病毒载体结合使用,以将CAR整合到特定位点。最后,CAR T细胞在生物反应器中以天为单位生长,然后送回患者进行输注。通常情况下,CAR T细胞以单剂量给药,或有时在两三天内分裂给药;无论如何,这仍然与大多数癌症药物有很大不同,大多数癌症药物要么每天服用,要么每3-4周服用一次,直到疾病进展。

CAR信号与衰竭

什么是“最好的”CAR T细胞仍然是一个有争议的问题。临床试验中的一个卷积因素是,每个临床批准的CAR T细胞产品都是不同的,因为它是由特定患者的T细胞制成的。临床数据表明,这些反应与CAR T细胞的扩增、持久性和记忆表型相关46因此,避免或延缓T细胞衰竭被认为是一个关键目标。

繁殖能力

在CD19-靶向CAR的临床研究中,患者血液中可检测到的CAR T细胞扩增与反应相关46一项非常特殊的案例研究揭示了CAR T细胞持续增殖有益的进一步证据。一名慢性淋巴细胞白血病(CLL)患者在接受两次CAR T细胞治疗后,最初在骨髓中显示肿瘤进展。然而,第二次输注两个月后,血液中CAR T细胞膨胀达到峰值,相应的肿瘤消退最终导致完全缓解。在进一步研究CAR T细胞扩增后,确定单个CAR T淋巴细胞克隆扩增,导致抗肿瘤反应延迟。该细胞具有tet-甲基胞嘧啶双加氧酶2的双等位基因断裂(TET2测试)该基因是由于慢病毒在一个等位基因中整合,而在另一个基因中发生了低形态突变。这个TET2测试双重敲除导致表观遗传景观的改变,导致细胞增殖增加,并形成更中心的记忆样表型,从而产生强大的抗肿瘤反应47在人类原代T细胞中进行的全基因组CRISPR筛选确定了额外的基因,如果删除这些基因,可能具有类似的效果:细胞因子信号传导抑制剂1(SOCS1系列),转录延伸因子B多肽2(TCEB2型; 亦称为ELOB公司),RAS GTPase激活蛋白2(RASA2公司)、和CBLB公司(编码E3泛素连接酶)。这些基因的破坏在增殖和体外对肿瘤细胞的细胞毒性48对患者CAR T细胞中病毒整合位点的进一步研究表明,应答者丰富了细胞吞噬和染色质修饰途径中编码蛋白质的基因的插入突变,从而促进增殖。基于这些数据,研究人员能够创建一个模型,在该模型中,可以根据载体整合位点预测临床结果49这些研究表明,CAR T细胞在编码影响增殖的蛋白质的基因发生改变后,可能会产生更有效的细胞产物,但这需要与潜在致癌转化的担忧相平衡。

CAR T细胞具有更强的增殖和生存能力,已被证明在多种疾病情况下都是有益的。CD8(CD8)+CLL患者的T细胞受损,其特征是刺激后葡萄糖摄取减少50这些受损的T细胞反应被认为是导致CLL患者对CAR T细胞的反应率低于其他B细胞恶性肿瘤的原因;有趣的是,对CAR T细胞有完全反应的CLL患者的CD8中线粒体生物发生增强+T细胞,与CAR T细胞的扩张和持久性相关50在多发性骨髓瘤中,与复发性或难治性疾病患者相比,早发性疾病患者的T细胞更适合制造CAR T细胞,并可能具有更好的疗效51.

协同仿真中的差异

CAR中具有不同共刺激域的CAR T细胞具有不同的动力学特征,与CD28共刺激域相比,存在4–1BB共刺激域时扩张较慢,持续时间更长,导致快速扩张,但耐久性较差52,53这种差异的分子基础尚不清楚,但以前的研究表明,基于CD28的CAR T细胞表现出更像效应器的记忆表型,糖酵解代谢增强,而基于4–1BB的CAR T细胞具有更中心的记忆表型并依赖脂肪酸代谢5456此外,已经表明细胞毒性CD8+接受4–1BB共刺激的淋巴细胞具有良好的增殖能力,体外扩增为记忆CD8+T细胞,与CD8相比,细胞溶解活性增强+CD28共刺激T细胞57最近对这两种共刺激途径之间差异的研究表明,4–1BB CARs而不是CD28 CARs在配体结合后激活非经典核因子-κB(NF-kB)信号。通过显性阴性突变体(NF-κB诱导激酶(NIK;也称为MAP3K14)的C末端)的过度表达干扰这种信号传导,这是一种广泛使用的阻断非经典NF-kB信号的策略),由于凋亡信号分子BIM(也称为BCL2L11)的表达增加,减少了基于4–1BB的CAR T细胞的增殖和存活58除了NF-κB外,4-1BB信号也依赖肿瘤坏死因子(TNF)受体相关因子(TRAFs),TRAFs影响CAR T细胞的活性、扩增和细胞毒性,部分原因是调节NF-κ的B。TRAFs在基于4–1BB的CAR T细胞中的过度表达增强了其功能594–1BB与CD28之间的另一个比较使用了磷酸化蛋白方法,表明基于CD28的CAR T细胞的效应样表型与快速激活和蛋白质磷酸化程度的较大变化相关。这种信号的强度部分是由于酪氨酸激酶LCK与CD28细胞内CAR结构域的组成性关联。相反,RNA测序表明,激活的4–1BB型CAR T细胞磷酸化程度较低,与CD28型CAR T细胞相比,记忆相关基因表达较高33,60此外,Li等人。61研究表明,通过限制CAR的泛素化(通过突变CAR分子中泛素靶向赖氨酸残基),可以进一步增强基于4–1BB的CAR T细胞的持久性和记忆表型。CAR分子的循环增加而不是其降解,由于内体4–1BB信号增强,从而增强了氧化磷酸化61.

相反,当试图设计监管T(T规则)具有保护组织功能的细胞,诱导理想表型的协同刺激被逆转。汽车T规则细胞受益于CD28结构域,该结构域保留了其抑制活性体内针对期望的目标。这与基于4–1BB的CAR T不同规则细胞,由于协同刺激的作用,其细胞毒性会越来越强62.

CD28和4–1BB以外的各种共刺激域已与CD3ζ信号结合用于CAR T细胞治疗。最近的研究表明,ICOS增加了CAR T细胞的持久性63此外,ICOS结合4–1BB共刺激作为第三代CAR设计,在实体瘤小鼠模型中显示出优于基于4–1PB的第二代CAR的疗效。有趣的是,膜近端细胞内共刺激结构域在第三代CAR T细胞中具有主导作用63.

调谐CAR信号

除了增强CAR T细胞的增殖能力外,限制其耗竭也有利于抗肿瘤反应。T细胞研究表明,T细胞的强烈激活会导致疲劳64,65因此,已经做出了一些努力来调整CAR信号以缓解疲劳。抗原和CAR分子密度都对疗效有很大影响——两者的低表达都会导致有限的抗肿瘤反应66.使用不同的链接器调整CAR信令67,68、铰链和跨膜结构域6971,协同模拟69、ITAM25和启动子(调节CAR分子表达)72所有这些都会根据肿瘤抗原的数量影响CAR功能吗(表2).

表2。

使用每个组件调整CAR信号

CAR组件潜在的变化功能中的潜在影响
链接器长度67,68二聚体导致紧张信号传导能力的差异
铰链和跨膜长度73,74,77,78,类型(例如,CD8α,CD28)69–71免疫突触形成
细胞因子产生与AICD
低密度靶抗原表达的疗效
协同仿真类型(例如,CD28、4–1BB、ICOS)33,57-59,62,63初始扩张
坚持不懈
响应的持久性
记忆表型和细胞命运
信息技术管理功能域数量25,69记忆表型和细胞命运
低密度靶抗原表达的疗效
发起人合成或内源性72CAR表达(每个细胞的分子数)
CAR内部化
主音信号的差异
记忆表型和细胞命运

AICD,活化诱导的细胞死亡;嵌合抗原受体;诱导性T细胞共刺激物ICOS;ITAM,免疫受体酪氨酸基激活基序。

主要是V之间间隔区域的变化L(左)和VH(H)区域和跨膜结构域影响CAR结构的灵活性,从而决定其访问和结合目标抗原表位的能力73,74最近,Singh等人。67表明基于相同单链抗体靶向CD22但具有不同连接子长度(20个氨基酸对5个)的CAR具有不同的临床反应。尽管具有相似的结合亲和力,但带有较长连接体的CAR在溶液中形成单体,而缩短的CAR形成同二聚体,这与增强紧张信号有关。较短的连接子CAR显示出优越的抗肿瘤功能体外体内,导致使用短连接CD22 CAR进行新的临床试验(NCT03620058号75编号0265041476)67.秦等。68还探讨了连接子在设计靶向CD19和CD22的双特异性CAR T细胞中的作用,并表明连接子长度对CAR构建效价有着深刻的影响。

除了连接器长度外,铰链长度也需要优化。靶抗原表位到靶细胞膜的远端(短铰链)或近端(长铰链)如何决定免疫突触的形成73,74,77,78最近,铰链和跨膜结构域也显示出比最初预期的更重要的作用,目前正在进行大量工作,以根据这些明显比结构元件更多的结构元件的适当组合来优化CAR结构70例如,在直接比较具有CD8α铰链和跨膜结构域或CD28铰链和跨薄膜结构域的CAR时,CD8α基CAR的细胞因子生成和激活诱导细胞死亡(AICD)水平较低71此外,Majzner等人。69最近还表明,共刺激分子的差异,曾经被认为是CAR T细胞表型差异的主要驱动因素,可以通过改变CAR T淋巴细胞结构的铰链-跨膜区域,在肿瘤抗原水平较低的情况下进行操纵,使其表现得更相似。

还证明了操纵CAR结构的ITAM域会改变信号。CD28为基础的CAR T细胞的激活可以使用ITAM突变体来校准,以改变ZAP70的结合亲和力。通过这些突变,CAR T细胞可以被导向不同的命运,使ITAM1和ITAM2域突变的基于CD28的CAR T淋巴细胞能够保持长期记忆,但保留有效的抗肿瘤功能25将额外的ITAM结构域构建到基于4–1BB的CAR T细胞中,使其能够识别低抗原密度表达的靶细胞(通常只有基于CD28的CAR T细胞才能达到阈值)69.

另一种方法是模拟内源性TCR的信号传导,TCR已进化为微调内源性T细胞反应。利用CRISPR–Cas9,CAR整合可以靶向内源性TCRα链(TRAC)位点,从而实现由内源性T细胞启动子控制的表达。这导致了CAR的均匀表达,但更重要的是通过避免紧张性CAR信号来增强T细胞的效力。CAR在暴露于抗原后被内化并重新表达,从而延迟T细胞耗竭和最终分化为效应T细胞命运72在一种新的设计中,抗体的单链抗体与TCR的γ链和δ链结合,作为效应域。这些所谓的抗体-TCR(AbTCR)细胞保留基于CD28或4–1BB的CAR T细胞的细胞毒活性,但释放的细胞因子较少,导致耗竭较少79此外,最近有两个研究小组发表文章称,将CD3ε分子插入CAR可以通过调节CAR信号,减少细胞因子的产生,延长持续时间,从而增强抗肿瘤功能80,81.

新出现的毒性机制

与CAR T细胞治疗相关的两个标志性临床毒性是细胞因子释放综合征(CRS)和神经毒性,在临床转化之前,动物模型均未预测到这两种毒性。CRS通常在CAR T细胞治疗的第一周内表现为发热、低血压和血清细胞因子水平较高的呼吸功能不全82,83(图2). 神经毒性表现为暂时性工作记忆丧失、谵妄、癫痫发作和罕见的急性脑水肿84CRS和神经毒性都归因于分泌细胞因子的T细胞的快速激活和扩张。目前的理解是,CAR T细胞分泌的细胞因子和/或配体-受体相互作用会激活髓细胞隔室的额外免疫细胞,进而释放更多的细胞因子,形成一个被称为细胞因子风暴的激活炎症循环。患者体内天然存在的肾上腺素也被证明有助于这种自我放大的生产循环85,86虽然神经毒性在临床上与CRS有关,但其机制似乎有所不同87.

目前对CAR T细胞诱导的细胞因子释放综合征和神经毒性的分子理解和治疗干预。

在识别肿瘤抗原后,嵌合抗原受体(CAR)T细胞下游激活的抗肿瘤反应通过分泌炎性细胞因子如粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)和白细胞介素-1(IL-1)激活固有免疫细胞。这导致巨噬细胞中的自我放大炎症激活环,导致IL-1和IL-6的释放。在这种反应的不同阶段进行治疗干预可以减轻神经毒性和细胞因子释放综合征(CRS)。针对GM-CSF(lenzilumab)、IL-6受体(tocilizumab)和IL-1受体(anakinra)的抗体治疗已用于临床。酪氨酸激酶抑制剂达沙替尼影响T细胞信号传导以降低CRS,而甲酪氨酸抑制巨噬细胞炎症激活以达到类似效果。干扰素γ;TNF、肿瘤坏死因子。

此图由Nature Reviews Cancer版权所有,可在以下网址找到:https://www.nature.com/articles/s41568-020-00323-z.

在某些情况下,神经毒性或CRS相关的多器官衰竭可能是致命的。较高的肿瘤负担和较高的CAR T细胞扩增与较高级别的CRS相关88总的来说,具有4–1BB共刺激结构域的CAR与具有CD28结构域的相比,其神经毒性和CRS似乎更少84在一项对53名接受基于CD28的CD19-靶向CAR T细胞治疗急性淋巴细胞白血病(ALL)的成人患者的研究中,62%的患者出现了神经毒性,其中67%被认为是严重的。在严重神经毒性患者中,72%的患者出现癫痫发作,尽管这些影响是暂时的89在一项类似的研究中,133名患者接受了以4–1BB为基础的CD19-靶向CAR T细胞治疗ALL,40%的患者有神经毒性,其中8%的患者出现癫痫发作。在这种情况下,大多数具有高度神经毒性的患者参与了剂量升级,随后确定其高于最大耐受剂量87患者的严重神经毒性与脑脊液(CSF)中高水平的促炎细胞因子(IL-6、IL-8、CC-趋化因子配体2(CCL2)和CXC-趋化因子配体10(CXCL10))有关89血液证据–脑脊液屏障破坏与神经毒性分级相关,但脑脊液中的白细胞计数或CAR T细胞计数与神经毒性等级无关89尽管有这些观察结果,但神经毒性的机制目前尚不清楚。然而,我们推测,促炎细胞因子的增加可能会激活脑血管系统中的内皮细胞,从而导致通透性增加和毛细血管渗漏(称为血管源性水肿),表现为局部水肿和神经毒性87最近一项研究提出的另一种可能的解释是,脑壁细胞表达CD19,而靶向CAR T细胞对这些细胞的活性会导致神经毒性90临床上,克服CRS的主要治疗方法是通过IL-6受体单克隆抗体tocilizumab治疗来打破细胞因子的反馈回路。皮质类固醇还经常与tocilizumab联合使用,以减少脑部炎症和血管源性水肿。然而,这些干预措施似乎都不能阻止患者CAR T细胞的扩增88.

设计预防或减轻CRS的新策略的挑战之一是小鼠建模中固有的一系列限制。NOD–SCID–IL-2受体γ-空(NSG)小鼠通常用作CAR T细胞治疗的临床前模型,其携带的突变严重影响其免疫室,包括髓细胞。然而,NSG小鼠的优点是,与其他菌株相比,人类肿瘤细胞和人类T细胞可以更有效地植入。为了更好地模拟人类CRS,研究人员已经转向其他小鼠品系、动物物种或人性化小鼠模型。Giavridis等人。91使用SCID-米色小鼠建立了CRS小鼠模型,该模型与人类CRS相似,在注射CAR T细胞后2-3天形成。与NSG小鼠相比,这些小鼠对干扰素-γ(IFNγ)启动的IL-1反应受损较少。在他们的模型中,75%的小鼠在48小时内死于CRS。有趣的是,CAR T细胞细胞因子本身并没有驱动CRS,尽管这可能部分是由于模型依赖于人类T细胞产生的细胞因子和小鼠髓细胞受体之间的交叉反应。尽管交叉反应有限,但小鼠CRS是由小鼠IL-6、IL-1的产生和人类CAR T细胞激活的巨噬细胞产生的一氧化氮驱动的91在高级模型的另一个例子中,Taraseviciute等人。92建立了一种恒河猴神经毒性模型,其中CD20 CAR T细胞引起免疫激活级联反应,导致脑脊液中异常高水平的促炎细胞因子和趋化因子以及CAR的浸润+和CAR-导致脑炎的脑实质中的T细胞。这些动物还表现出CRS的症状特征,包括发烧和C反应蛋白(CRP)水平升高92另一组使用人CD19转基因小鼠,与使用小鼠CD19观察到的CRS缺乏相比,细胞因子水平增加。此外,该模型中IL-6或IFNγ的抗体介导的中和作用减轻了T细胞诱导的体重减轻93另一个潜在的动物模型利用表达人类干细胞因子、粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)和IL-3的三重转基因NSG(SGM3)小鼠来模拟CRS参与的固有免疫成分。然而,该模型仍然依赖一些小鼠细胞因子作为细胞因子反应的一部分,最重要的是IL-686为了改进该CRS模型以更好地模拟人类临床现象,亚致死剂量照射的新生SGM3小鼠可以肝内注射人类造血干细胞和祖细胞(HSPCs)。与非转基因NSG小鼠相比,这可以更快地重建造血,并产生人类B细胞、单核细胞和T细胞。作为这一更先进模型有效性原理的证明,该模型以高热和升高的人类IL-6水平为特征,研究表明,托西利单抗可以预防CRS,但不能防止脑膜炎导致致命的神经毒性94.

在临床前模型和临床试验中,正在研究除IL-6受体阻断外的其他毒性管理干预措施。通过单克隆抗体中和(仑齐鲁单抗)或通过基因改变CAR T细胞以敲除GM-CSF来抑制GM-CSF信号传导,可以限制CRS和神经炎症95Giavridis等人。91和Norelli等人。94已经证明,用一种IL-1受体拮抗剂anakinra破坏IL-1通路可以减轻小鼠的CRS和致命神经毒性91,94Anakina目前正在进行临床试验,以防止CAR T细胞治疗患者的神经毒性96除细胞因子干预外,其他研究表明,用甲状腺素对儿茶酚胺进行药物阻断可以保护小鼠免受CRS的致命并发症86其他研究组试图控制CAR T细胞毒性,而不是通过解决毒性本身,而是通过使用美国FDA批准的酪氨酸激酶抑制剂达沙替尼来控制CAR T细胞的负荷和效力。达沙替尼通过阻止LCK磷酸化和活化T细胞核因子(NFAT)在CAR T细胞参与后的诱导来限制CAR T淋巴细胞的信号传导97不同于自杀开关,自杀开关会不可逆转地影响CAR T细胞的效能98,达沙替尼抑制CAR T细胞的激活和功能,但不会杀死细胞。这可以在出现CRS早期症状的临床环境中实现,通过使用达沙替尼可以暂时关闭CAR T细胞以阻止进一步的细胞因子分泌97,99.

抵抗机制

CAR T细胞治疗后复发的常见机制之一是抗原丢失(图3). 流式细胞术分析来自复发或难治性B-ALL患者的B细胞急性淋巴细胞白血病(B-ALL)细胞,这些患者在基于4–1BB的CD19-靶向CAR T细胞治疗后复发,显示17例患者中有12例进展为CD19阴性疾病。B-ALL细胞基因组测序显示,所有12名患者的CD19均发生突变,使得CAR T细胞无法识别该分子100突变CD19的选择性压力是抗原丢失的最常见机制,现在对许多复发患者进行筛查以确定CD19是否仍然存在。虽然CD19的突变是最常见的,但并不是唯一有文献记载的抗原丢失机制。Ruella等人。101报告一名B-ALL患者在接受CD19 CAR T细胞治疗9个月后复发。通过定量聚合酶链反应(qPCR),确定患者血细胞中仍存在CAR序列,但这与流式细胞术检测到的CAR T细胞扩增无关,流式细胞仪检测到的是CD19阴性白血病细胞的扩增。进一步研究表明,肿瘤细胞来源于一个在制造过程中用CAR转导的白血病B细胞。CAR分子在细胞表面“掩盖”CD19,阻止其被CAR T细胞识别101这被认为是一种罕见的事件,但对制造安全有严重影响。除了CD19完全丢失外,Hamieh等人还报告了第三种抗原丢失机制。102这解释了抗原缺失肿瘤是如何逃逸的。通过一个称为吞噬作用的过程,CAR从肿瘤细胞中去除目标抗原并将其内化,导致肿瘤细胞上的抗原密度降低。这会影响CD28和4–1BB基CAR T细胞,但由于CD28基CAR对抗原密度降低不太敏感,因此会产生不同的后果102.

抗原依赖性和抗原非依赖性耐药性。

嵌合抗原受体(CAR)T细胞治疗的耐药性可根据抗原丢失或保留的情况进行分类。抗原丢失最常见的原因是编码抗原本身的基因发生突变。然而,也有因肿瘤细胞意外转导导致肿瘤抗原“CAR掩蔽”而导致抗原丢失的病例,导致复发。此外,肿瘤抗原水平降低会导致复发,可能是由于T细胞上的CAR分子从表面去除肿瘤抗原,将其内化,并开始表达肿瘤抗原本身的吞噬作用。抗原依赖性抵抗是由于T细胞耗竭所致。这可能是由于具有末端效应器表型的次优输注产品、肿瘤细胞上死亡受体信号的丢失使其对CAR T细胞杀伤产生抵抗,以及由于调节性T(T规则)细胞和髓源性抑制细胞(MDSC)及其各自的可溶性因子。IL-10、IL-10;前列腺素E2,前列腺素E2; 转化生长因子β。

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抗原丢失可以解释一些复发,但并非所有复发的患者都有抗原阴性疾病103这表明可能还有其他因素导致耐药性,例如CAR T细胞耗竭。对慢性淋巴细胞白血病中CD19-靶向CAR T细胞有应答者和无应答者(具有原发性耐药)的研究表明,在无应答患者中,输注产品中的T细胞具有更像效应器的特征,包括分化、糖酵解、衰竭和凋亡。相反,反应患者输注产品中的T细胞上调了IL-6、信号转导子和转录激活子3(STAT3)特征。记忆样T细胞(CD27)的频率升高+CD45RO-CD8(CD8)+)CAR T细胞生成前也与持续缓解相关46ALL细胞系的全基因组功能丧失筛查已确定受损的死亡受体途径是CD19-靶向CAR治疗耐药的另一种机制。肿瘤细胞中FADD、BID和肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体2(TRAIL2)的缺失使其对CD19-靶向CAR T细胞的疗效更具抵抗力体外体内由于CAR的细胞毒性和增殖较低29,30此外,缺乏这些死亡受体分子之一的ALL细胞对CAR的长时间刺激会导致T细胞衰竭29,46.

CAR T细胞治疗领域的大多数经验都是在血液系统恶性肿瘤的背景下,肿瘤微环境(TME)被认为在反应中发挥的作用要小得多。然而,随着研究领域从CD19-靶向CAR T细胞转向实体肿瘤,抑制性TME也可能对CAR T淋巴细胞治疗产生耐药性。对于难以穿透、高度免疫抑制的实体恶性肿瘤,如胶质母细胞瘤或胰腺癌,这尤其令人担忧。缺乏趋化因子来吸引CAR T细胞,一种异常的血管系统,以及产生ECM的癌症相关成纤维细胞(CAFs),这些都会使CAR T细胞甚至难以进入肿瘤。一旦出现,免疫抑制细胞和细胞因子,包括T规则细胞、髓源性抑制细胞(MDSC)、转化生长因子β(TGFβ)、IL-6、IL-10和前列腺素E2(PGE2),抑制CAR T增殖和效应器功能104.

克服阻力

克服抗原丢失

防止抗原逃逸的最直接方法是开发针对其他抗原的CAR,这些CAR可以串联或串联使用。以CD20和CD22为靶点的CAR T细胞正在以独立和串联scFv形式进行临床开发105,106另一组利用了天然CD40–CD40配体(CD40L)的细胞毒性:通过CD40L的组成性表达,CAR T细胞能够在CD40和CD40上结合CD40+肿瘤细胞(直接参与细胞毒性)以及肿瘤邻近抗原呈递细胞(APC)。活化的APC随后增加共刺激分子和主要组织相容性复合物II类(MHC-II)的表达,以招募额外的效应细胞,如内源性T细胞,这些细胞可以通过其内源性TCR协助肿瘤杀伤,即使在没有CAR抗原的肿瘤细胞表达的情况下也是如此107另一种方法是增加靶细胞上的抗原表达。研究表明,小分子γ-分泌酶抑制剂通过破坏表面表达的BCMA的裂解,增加了骨髓瘤细胞上B细胞成熟蛋白(BCMA;也称为TNFRSF17)的表达。这种与BCMA靶向CAR T细胞的联合治疗目前正在临床试验中(NCT03502577号108). 类似地,在临床前模型中,Bryostatin 1已被证明上调CD22并提高CD22靶向CAR T细胞治疗的疗效,尽管这种上调CD22的机制尚待阐明109此外,单链抗体亲和力可以调节到肿瘤的表达模式。Liu等人。110研究表明,当将类似设计的CAR与相同抗原进行比较时,具有不同亲和力的高亲和力单链抗体能够识别低表达水平的抗原,甚至是流式细胞术检测不到的水平的抗原。

克服疲劳

随着免疫检查点阻断技术的发展,癌症免疫治疗领域发生了革命性的变化。程序性细胞死亡蛋白1(PD1)激活后在T细胞上上调,并结合其天然配体PD1配体1(PDL1),以抑制T细胞的增殖和效应功能反应111研究表明,阻断PD1–PDL1轴可以克服肿瘤中PDL1表达导致的T细胞抑制112这转化为美国食品药品监督管理局批准了针对PD1和PDL1的单克隆抗体,这两种抗体在肿瘤学领域取得了巨大的临床成功113通过免疫检查点阻断克服T细胞耗竭所学到的知识,目前正在应用于CAR T细胞,包括组合治疗、CAR T淋巴细胞自分泌抗免疫检查点分子、CAR T细胞自身免疫检查点基因的遗传扰动。例如,Cherkassky等人。114研究表明,用PD1抗体对CAR T细胞进行组合治疗,可以在小鼠模型中恢复CD28为基础的CAR T淋巴细胞效应器功能,在这些小鼠模型中,细胞通常会耗尽。目前有许多正在进行的临床试验评估了CD19-靶向CAR T细胞组合免疫检查点阻断(靶向PD1或PDL1)的效果(NCT02650999号115,NCT02706405号116,NCT02926833号117,NCT03310619号118). 早期结果表明,联合治疗是安全的,毒性低。一份病例报告甚至证明了联合治疗的益处:一名进行CD19-靶向CAR T细胞治疗的弥漫性大B细胞淋巴瘤(DLBCL)患者在输血后第26天接受了抗PD1治疗。到第45天,观察到明显的肿瘤消退,到PD1阻断三周后,患者能够恢复工作119为了避免需要两种不同的治疗方法,研究人员还测试了CAR T细胞在临床前模型中对免疫检查点分子(包括抗PD1和抗PDL1)的抗体的固有分泌120,121观察到与联合治疗类似的益处,包括延长T细胞功能和限制衰竭。局部分泌针对免疫检查点分子的抗体的额外好处是可以限制全身毒性122另一种方法是将CAR T细胞设计为对PDL1具有抗性。一项研究表明,通过将带有PD1显性负受体的CAR T细胞转化为汇来减少PD1通过内源性受体的信号传递,可以限制衰竭114另一种方法是使用CRISPR–Cas9敲除CAR T细胞中编码PD1的基因。这可以提高抗肿瘤免疫力体外和内部体内存在PDL1的模型+肿瘤123这种基因敲除方法在临床上也被证明是可以耐受的,PD1敲除T细胞在患者体内持续存在长达9个月45.

还利用了其他非直接针对免疫检查站的方法来克服疲劳。与CAR一起表达构成性信号IL-7受体有利于在抗原暴露后增强CAR T细胞,但避免刺激旁观者细胞(与分泌细胞因子的CAR T淋巴细胞不同)。具体而言,该受体与CAR的共同表达增加了T细胞的增殖、持久性和抗肿瘤反应,而没有T细胞功能障碍124在CAR紧张信号传导的小鼠模型中,研究了限制疲劳的另一种方法。疲劳与激活蛋白1(AP1)转录因子基序的可及性增加有关,这导致T细胞的终末分化。典型AP1因子JUN的过度表达可对抗衰竭,从而提高CAR T细胞的功能能力和抗肿瘤效力125.

克服免疫抑制肿瘤微环境

此外,还正在开发创新方法,以增加TME中抗炎细胞因子和细胞的贩运并限制其抑制。一种策略是通过分泌促炎性可溶性因子增加CAR T细胞反应。CAR T细胞中IL-7和CCL19的过度表达是淋巴器官中T细胞区形成所必需的,增加了炎症前树突状细胞和T细胞向实体肿瘤组织的浸润,并增强了小鼠模型中肿瘤的消退126装甲CAR构建物过度表达促炎细胞因子,如IL-12和IL-18,也被证明能激活更多的促炎内源性免疫细胞并增强抗肿瘤反应127,128或者,表达IL-12b p40亚单位的CAR在T细胞激活时产生IL-23,激活STAT3信号以促进增殖。这些CAR在异种移植和同种实体瘤小鼠模型中具有优越的疗效。此外,与产生IL-18的CAR相比,它们的副作用更少,这可能是由于IL-23以自分泌为主的方式工作,因此减少了旁观者细胞的激活129.

另一个策略是重定向或绕过抑制性TME。在前列腺癌中,在与前列腺特异性膜抗原(PSMA)靶向CAR相同的载体中,将显性阴性TGFβ受体(TGFβR)作为第二个转基因进行转导,作为肿瘤中TGFβ高定位水平的汇点,以限制其免疫抑制作用130这种特殊的CAR结构目前正在进行一期临床试验(NCT03089203号)131类似地,CRIPSR–Cas9介导的内源性TGFβRII在CAR T细胞中的敲除导致CAR T淋巴细胞表现出更高的疗效,较少转化为T细胞规则异种实体瘤模型中的细胞和较少耗竭132.克服T的另一种方法规则细胞介导的免疫抑制是改变T细胞的活性规则细胞本身。这个想法来源于一项针对表皮生长因子受体III类变异体(EGFRvIII)的胶质母细胞瘤CAR T细胞临床试验,该变异体显示肿瘤内高T规则CAR T细胞输注后细胞浸润133在一项后续研究中,研究人员开发了一种EGFR-异特异性T细胞结合物(BiTE),该结合物由EGFRvIII靶向CAR T细胞分泌,并重定向常规T细胞和T细胞规则发挥细胞毒性作用对抗肿瘤的细胞134这是利用CAR T细胞协同TME中的免疫抑制细胞以促进抗肿瘤反应的一种新方法。在类似的方法中,结合CAR T细胞治疗,使用溶瘤腺病毒将基因编码的BiTE传递给肿瘤细胞。当与溶瘤病毒BiTE联合治疗时,胰腺和结肠两种不同癌症类型的实体肿瘤模型显示CAR T细胞疗效显著提高135另一组通过利用两亲性CAR T配体的疫苗接种结合CAR T细胞治疗产生了增强的抗肿瘤反应。该策略依赖于注入的两亲性配体向淋巴结转移,并向APC呈递,以启动CAR T细胞,从而导致大规模扩张136.

有希望的新目标和指标

多发性骨髓瘤

多发性骨髓瘤的主要靶点是BCMA(NCT02658929号137,NCT02546167号138). 然而,正如CD19靶向CAR T细胞治疗后CD19阴性复发一样,BCMA阴性复发也可能发生139,140两个小组提出了替代性的、基于配体的CAR T细胞,其靶向BCMA和多发性骨髓瘤细胞上表达的另一种分子、跨膜激活物和CAML相互作用物(TACI;也称为TNFRSF13B)。这些CAR基于一种截短形式的分子-增殖诱导配体(APRIL),它结合表面BCMA和TACI,通常由骨髓中的髓细胞分泌。Lee等人。14在具有CD28和OX40共刺激结构域的第三代设计中使用了一个单一的截短的(防止可切割分泌和与蛋白聚糖的氨基末端相互作用)APRIL分子14该设计在临床试验AUTO2中(NCT03287804号141)但随后因缺乏初步疗效而终止。Schmidts等人。19基于三个重复截短的APRIL分子,设计了具有4–1BB共刺激的第二代CAR,以模拟蛋白的三聚体可溶性分泌形式,该蛋白结合表面BCMA和TACI以促进骨髓瘤生长19在多发性骨髓瘤异种移植物临床前模型中,三聚体形式比单一APRIL CAR设计的疗效更高14,19.

Smith等人。142已经确定了多发性骨髓瘤的另一个靶点,G蛋白偶联受体,C类第5组成员D(GPRC5D),其在CD138上具有表达模式+不依赖BCMA表达的多发性骨髓瘤细胞。利用噬菌体展示系统产生scFv,作者使用Nur77报告系统筛选了42个构建体(Nur77是TCR信号的早期指示物),以基于间隔区长度和低张力信号确定最佳的第二代CAR。在正常组织中,GPRC5D蛋白仅在毛囊中表达142为了解决对靶向毒性的担忧,Smith等人使用小鼠和非人类灵长类食蟹猴模型来证明当靶向GPRC5D时,没有脱发。靶向GPRC5D的CAR T细胞能够清除BCMA阳性和阴性多发性骨髓瘤细胞的混合物,而靶向BCMA的CAR T细胞治疗的小鼠则死于该疾病142多发性骨髓瘤的其他几个靶点也在开发中,包括CD38、CD138和SLAM家族成员7(SLAMF7)143.

实体瘤:泛癌

CAR T细胞治疗领域的一个主要关注点是其在血液恶性肿瘤之外的适用性。许多因素阻碍了为实体肿瘤制造有效的CAR T细胞,包括但不限于缺乏肿瘤特异性抗原和免疫抑制性TME。该领域的许多领导者认为,除了CD19之外,还有不到十几个可行的CAR T细胞靶点,而确定在肿瘤中具有高、同质表达但在健康组织中没有表达的靶点(以限制靶向和非肿瘤毒性)已被证明是困难的。

B7-H3(也称为CD276)免疫检查点分子在过去几年中一直是一种流行的免疫治疗靶点,有一些很有前景的临床试验是以单克隆抗体为靶点的分子(NCT02982941号144,145,NCT02381314号146,147,NCT03406949号148,149,NCT02628535号150,151,NCT03729596号152,153). 然而,提出以B7-H3为靶点的CAR T细胞产品的一个主要问题是,由于在正常组织中的低表达导致靶向毒性154Majzner等人。154基于这种特异性单链抗体设计了一种CAR T细胞,以限制低水平B7-H3表达的健康组织的靶向毒性。他们表明,在高抗原密度的情况下,包括髓母细胞瘤、骨肉瘤和尤因肉瘤在内的几种儿童癌症,B7-H3靶向的CAR T细胞是有效的体外体内然而,当抗原密度低时,B7-H3靶向的CAR T细胞具有低得多的活性,这表明在临床上可能存在有效、无毒的B7-H3靶向的CAR T细胞治疗的治疗窗口154.

He等人。155设计了一种所谓的237CART,可以识别多种癌症特异性抗原。237CART细胞基于一种最初用于识别Tn-糖基化足蛋白(Tn-PDPN)的抗体。237CART细胞对肿瘤特异性识别的基础是肿瘤细胞功能缺失突变的结果中远集团,编码一种分子伴侣,被认为是表达活性T合成酶所必需的,而活性T合合成酶是粘蛋白型O-聚糖生物合成过程中唯一一种半乳糖基化Tn抗原的酶。这种由COSMC突变导致的Tn半乳糖基化的差异模式已被证明发生在卵巢癌、白血病、乳腺癌、肉瘤和神经母细胞瘤中。由于这种泛癌识别,237CAR T细胞特别有趣。此外,He等人已经证明237CART细胞可以识别许多Tn-糖肽,而不仅仅是Tn-PDPN。这对237CART细胞治疗的有效性是有希望的,因为可以避免抗原逃逸155.

近年来,针对间皮素的CAR T细胞被用于多种适应症,包括胰腺癌、肺癌和卵巢癌。临床前模型前景看好,目前正在进行一些临床试验156初步结果表明,以间皮素为靶点的CAR T细胞是安全的,并且有抗肿瘤活性的证据,这对CAR T淋巴细胞用于实体肿瘤的未来很有希望157,158其他临床研究正在评估是否可以通过联合免疫检查点阻断来增强间皮素靶向CAR T细胞治疗,以增强T细胞反应157最近,早期阶段I结果(NCT03907852号)使用基于间皮素靶向T细胞受体融合构建物(TRuC)的CAR宣布159该CAR的scFv与TCR亚单位融合,缺乏传统的共刺激域。这些CAR保持其细胞毒性,但与传统的CAR T细胞相比,细胞因子释放更低,功效更高160.

实体瘤:脑

脑瘤对免疫疗法的浪潮仍然相对无效,免疫疗法取得了令人难以置信的成功,并在其他癌症类型中产生了反应。然而,由于大脑独特的生态位,CAR T细胞疗法有潜力用于治疗脑肿瘤——与大分子不同,由于血脑屏障,大分子很难接触到脑肿瘤,T细胞和T细胞疗法可以在静脉输液后渗透大脑133CAR T细胞治疗胶质母细胞瘤的初步临床试验靶向EGFRvIII、IL-13受体α2(IL-13Rα2)和人表皮受体2(HER2),不幸的是,由于靶抗原的丢失,疗效很低133,161,162.

为了克服胶质母细胞瘤中常见的靶抗原表达的异质性,Wang等人。163设计了一种基于氯毒素(CLTX)肽的CAR T细胞,该肽即使在缺乏其他胶质母细胞瘤相关抗原的情况下也具有强大的抗肿瘤活性。患者源性胶质母细胞瘤细胞的流式细胞术CLTX肽染色显示,与IL-13Rα2和HER2的异质表达相比,未知表面配体的高均匀表达。他们的研究表明,CLTX肽靶向CAR T细胞的疗效取决于金属蛋白酶-2的表面表达(表明未知抗原表位依赖于该蛋白酶被CAR T淋巴细胞识别),并且对包括外周血单个核细胞(PBMC)在内的正常组织无毒,诱导多能干细胞(iPSCs)和永生化胎脑源性神经干细胞系。这项研究表明,通过CAR T细胞疗法靶向氯毒素肽可能是有希望的,因为它可能与以前的靶点相比,不存在抗原异质性问题163.

以前在临床试验中,以神经母细胞瘤为靶点的二钙神经节苷脂GD2靶向CAR T细胞耐受性良好164Mount等人。165另外,他们认为GD2靶向的CAR T细胞可能对组蛋白H3 K27M(H3-K27M)突变的弥漫性中线胶质瘤有效,这是一种普遍致命的儿童癌症。虽然该小组在患者原位异种移植模型中证明了其有效性,但他们也观察到肿瘤周围神经炎症,这导致一些动物出现致命性脑积水。本研究表明,通过谨慎的方法和积极的神经重症监护管理,GD2 CAR T细胞治疗可能对H3-K27M有益+弥漫性中线胶质瘤165最近,一项新的临床试验(NCT03294954号166)已经使用用靶向GD2的表达IL-15的CAR转导的Vα24不变自然杀伤T(NKT)细胞启动。中期分析显示,三名患者对GD2靶向CAR-NKT细胞耐受性良好。一名患者的骨转移灶复发,取得了客观疗效167.

Bosse等人。168使用基于RNA测序的管道识别神经母细胞瘤的新靶点,细胞表面硫酸乙酰肝素蛋白聚糖GPC2。GPC2在神经母细胞瘤组织中高表达,但在正常儿童组织中不表达。Bosse等人使用基于吡咯苯并二氮杂卓(PBD)细胞毒性的抗体-药物结合物,在患者衍生的神经母细胞瘤异种移植模型中通过靶向GPC2显示肿瘤生长减少168GPC2也可能被证明是有效的CAR T细胞靶点。

制造业创新

基因转移

基因重编程T细胞疗法的一个局限性是使用具有昂贵且长生产时间的病毒载体用于临床169此外,病毒载体对可编码的DNA长度有有限的大小限制(腺相关病毒约为4kb,腺病毒约为8.5kb,慢病毒约为10kb)。在过去的十年中,转座被作为一种非病毒手段来产生CAR T细胞,因为这种基因转移方法比基于病毒的方法更经济。基于Sleeping Beauty转座子的系统已被用于制造CD19-靶向CAR T细胞,以治疗异基因造血干细胞移植后复发的淋巴瘤和白血病患者(NCT00968760型170,NCT01497184号171,NCT03389035型172)43,173类似地,piggyBac转座子系统在过去几年中被用作另一种生成CAR T细胞的方法。一家生物技术公司目前正在进行两项使用基于piggyBac的CAR T细胞的临床试验174,175Roth等人。176利用CRISPR–Cas9电穿孔和双链DNA,开发了一种新的非病毒方法,将DNA序列(>1 kb)传递到原代人类T细胞基因组中的特定位置。使用这种方法,将转基因、癌症特异性TCR导入TCRα基因座,从而使TCR工程化T细胞能够产生抗肿瘤反应体外体内176对其设计的进一步改进包括同时原位替换内源性TCRα和β位点,这避免了内源性和转基因TCR链的错位(这可以在典型的转基因TCR制造中竞争)。因此,它们能够重建接近生理的T细胞功能177然而,值得注意的是,目前这项技术仍局限于较大的遗传负荷(如大型CAR构建),尤其是临床应用。除了改变遗传物质的传递方式外,改良CAR T细胞的制造还涉及T细胞的培养方式体外40。各小组已致力于确定最佳生长条件下细胞因子的适当混合物,现在其他小组也加入了这项工作,并引入了模拟细胞因子,这可能会进一步加强生产过程178.

改善效应细胞类型

目前的制造工作使用来自患者的异质性T细胞(CD4除外+T细胞和CD8+在某些情况下,T细胞分离)。然而,有证据表明某些T细胞亚群可能比其他亚群更有效。已使用中央记忆T细胞进行临床试验,以制造基于CD28的CD19-靶向CAR T细胞(NCT01318317号179,NCT01815749号180). 初步结果表明,与批量生产的CD19-靶向CAR T细胞相比,这些细胞是有效的,但不一定具有更强的持久性。然而,有人认为共刺激结构域对持久性的影响比T细胞表型更强181虽然有兴趣从其他更罕见的亚群(如T记忆干细胞(T供应链管理)),商业化成为一个困难,因为需要大规模生产具有良好生产规范(GMP)质量的细胞分选试剂182.CD26高的CAR T细胞也已被研究,因为它们在实体肿瘤模型中具有优越的功能,这是由于细胞因子(IL-17A、IFNγ、IL-2、肿瘤坏死因子(TNF)和IL-22)、记忆、干样特性(β-连环蛋白和淋巴增强因子1(LEF1)增加所致表达)和贩运(CCR2和CCR5表达升高)183γδT细胞是另一个潜在的优势亚群。绝大多数(95-99%)典型的CAR T细胞输注产品是αβT细胞184两种亚群表现出同等水平的细胞毒性;然而,γδCAR T细胞不太容易衰竭,激活后T细胞免疫球蛋白粘蛋白受体3(TIM3)和PD1表达水平较低。此外,γδCAR T细胞表达共刺激和抗原呈递分子(CD86和人类白细胞抗原-DR(HLA-DR)),并被证明在TME中向其他T细胞交叉呈递肿瘤抗原185也许最令人信服的是,肿瘤中γδT细胞的浸润与良好的预后相关186.

有几种方法可以使CAR T细胞产品更像“一刀切”的药物(图4). 其中一种方法仍然需要自体细胞产品,但利用一种载体实现多种抗原特异性,这就是带有“zip”系统的分裂、通用和可编程(SUPRA)CAR,以调节T细胞反应。CAR T细胞在细胞外表达一部分“拉链”蛋白,带有细胞内信号结构域。然后,可以使用附着在相应搭档拉链上的各种蛋白质疗法来改变CAR的靶点和信号强度。还有一种组合方法,其中使用了两种不同的zip系统,一种具有CD3ζ信令域,另一种具有协同模拟187其他潜在的通用CAR包括基于生物素结合免疫受体的二聚体系统188和带有新epitope标签的交换机模块189,190这些CAR针对特定标签,如异硫氰酸荧光素(FITC)或生物素。然后,该系统依赖于针对目标肿瘤抗原的第二抗体治疗;该抗体与标签结合,使抗抗原CAR识别它并对标记的肿瘤激活。

提高疗效的CAR T细胞亚群和具有可互换靶点的通用CAR。

与传统的CAR T细胞相比,CD26高嵌合抗原受体(CAR)T细胞增加了细胞因子的产生,具有更多的干样表型,并增加了细胞贩运。与传统的CAR T细胞产物相比,具有内源性γδT细胞受体(TCRs)的CAR T细胞减少了耗竭,增加了协同刺激,其中95%具有αβTCRs。近年来,已经出版了几个版本的通用CAR。分体式、通用型和可编程(SUPRA)CAR使用“拉链”系统来互换地影响CAR。单链可变片段(scFvs)可以一次转换为靶向新抗原或多个抗原,拉链结合亲和力可以改变,以调节CAR信号的强度以获得适当的响应。门控策略也可以通过在单独的分子上具有CD3ζ信号结构域和共刺激结构域来使用,以便两种相应的抗原都必须存在才能完全激活CAR。其他人则通过用与异硫氰酸荧光素(FITC)或生物素等标记物偶联的抗体(这些抗体是暂时的,可以不断改变)标记肿瘤细胞,然后针对标记物开发CAR T细胞,以激活其细胞毒功能,从而实现通用CAR。CCR、CC-趋化因子受体;HLA-DR、人类白细胞抗原-DR;干扰素γ;白细胞介素;LEF1,淋巴增强因子结合因子1;PD1,程序性细胞死亡蛋白1;TIM3,T细胞免疫球蛋白粘蛋白受体3.框1。

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异基因CAR

备受追捧的第三方“现成”异基因CAR T细胞疗法主要是为了提高产品的标准化、患者等待时间和物流,以协调生产与患者的紧迫性和成本191使用异基因T细胞治疗的两个主要障碍是导致GvHD的风险,这是一个重要的安全问题,以及产品的排斥风险,这也是一个疗效问题。2017年发表了异基因基因编辑T细胞的首次临床结果,其中两名患有B-ALL的婴儿接受了TALEN编辑的TCRα阴性、CD52阴性的4–1BB基CD19-靶向CAR T细胞治疗。这两名患者在最低GvHD的情况下均获得了完全缓解,并进行了异基因干细胞移植,这是该病缓解时的标准护理192在儿童和成人ALL中使用该CAR的I/II期临床试验正在进行中(NCT02746952号193,NCT02808442号194). 其他异基因CAR T细胞产品涉及通过CRISPR–Cas9技术进行多重基因组编辑。该方法使用慢病毒传递CD19-靶向CAR和电穿孔Cas9以及靶向内源性TCR、β2微球蛋白和PD1基因座的单导向RNA,目的是分别降低GvHD、排斥和衰竭的风险195最近,Liu等人。196还利用了脐带血来源的自然杀伤细胞,并用基于CD28的CD19靶向CAR逆转录病毒载体转导这些细胞(方框1). 脐血的优点是含有更大比例的NK细胞(淋巴细胞占30%,而外周血占10%),从而降低了污染T细胞导致GvHD的风险。为了提高NK细胞的持久性,研究人员还在构建物中加入了IL-15的转基因;他们首次临床试验的结果显示淋巴瘤患者的反应和持续缓解,这些产品目前正在临床开发中取得进展197Daher等人。198进一步改进了IL-15的设计,脐血来源的CAR NK细胞具有CISH公司靶向细胞因子诱导的含有SH2的蛋白的缺失,该蛋白负调控IL-15信号传导。因此,这些CAR增加了有氧糖酵解,增强了体内清除淋巴瘤异种移植物的功效。

方框1。

超越传统的CAR T细胞:CAR NK细胞、CAR巨噬细胞和CAR T规则细胞

自然杀伤(NK)细胞由于其固有的抗肿瘤活性,一直被视为开发异基因产品的基础。当人类白细胞抗原(HLA)表达下调时,NK细胞治疗具有细胞毒性的优点,这是一种相对常见的肿瘤逃逸机制。此外,已观察到异基因NK细胞比自体NK细胞具有更好的疗效211,212一种新的方法包括从脐带血中获得NK细胞,并用抗CD19嵌合抗原受体(CAR)载体转导它们,该载体已被工程化以异位产生白细胞介素-15(IL-15)以增加扩增和效力。这些脐血CAR-NK在体外具有细胞毒性,在体内具有持久性和抗肿瘤作用。就毒性而言,这些CAR NK细胞具有化学诱导的caspase 9自杀基因,可以通过体内治疗消除196从造血干细胞中制备CAR细胞的尝试表明,在早期淋巴发育过程中CAR表达抑制BCL11B公司从而抑制T细胞相关基因。因此,CAR细胞具有NK细胞样特性,包括NK细胞受体表达。这些细胞被称为CAR-induced killer(CARiK)细胞,需要具有协同刺激的第二代CAR设计才能具有强大的抗白血病作用。在异种移植白血病模型中,尽管主要组织相容性复合体(MHC)不匹配,但异基因CARiK细胞在没有观察到移植物抗宿主病(GvHD)的情况下仍显示出较高的存活率213.

Klichinsky等人。214最近发表了第一个CAR巨噬细胞(CAR-M)的描述,该描述在体外证明了抗原特异性吞噬作用和促炎性M1极化。CAR-M还能够交叉呈现抗原并激活T细胞。CAR-Ms治疗的异种小鼠肺转移和腹腔内癌病模型降低了肿瘤负担。在人源化小鼠中,CAR-Ms增强了T细胞抗肿瘤反应,单细胞RNA测序显示诱导了促炎性肿瘤微环境214.

CAR也被用于重定向免疫抑制调节性T(T规则)细胞作为自身免疫性疾病和器官移植的潜在治疗药物。几个小组已经证明使用CAR T可以预防同种异体皮肤排斥反应规则体内细胞62,215,216其他人使用了CAR T规则改善结肠炎的细胞217然而,CAR T的制造规则由于难以从常规T细胞中提纯这种细胞亚群,细胞仍然是未来临床应用的关注点。目前正在探索包括基于滴管的分类在内的新方法218CAR T的首次临床试验规则2019年,细胞被启动用于预防HLA-A2不匹配肾移植后终末期肾病患者的排斥反应。219,220CTLA4,细胞毒性T淋巴细胞相关抗原4;干扰素γ、干扰素-γ;转化生长因子β;TNF、肿瘤坏死因子。

结束语

CAR T细胞研究已迅速进入临床,现在又回到了试验台上,试验结果揭示了疗效、毒性和耐药性的新机制,并促进了新靶点的搜索、信号机制的阐明和新技术的应用。CAR设计、转导方法和最佳细胞类型选择方面的创新势必会导致反应改善,并改变许多不同癌症类型患者的治疗。

致谢

M.V.M由NIH R01 CA238268、R01 CA252940、白血病和淋巴瘤学会、抗癌协会和Damon Runyon癌症研究基金会资助。R.C.L.由NIH T32 GM007306资助,目前由NIH T22 AI007529资助。

词汇表术语:

骆驼抗体骆驼科哺乳动物产生的抗体具有两条相同的重链,与典型的抗体相比要小得多(15kDa比150kDa),并且缺乏轻链
移植物抗宿主病(GvHD)异基因移植后可能发生的一种情况,因为供体细胞将宿主识别为外来物,导致供体细胞攻击宿主白血病:将白细胞从血液中分离出来,使剩余细胞返回循环的过程
人工抗原提呈细胞(aAPC)激活免疫细胞的APC的合成版本;在CAR T细胞的背景下,利用T细胞受体刺激和共刺激分子设计aAPC,以体外扩增T细胞
转录激活物样效应核酸酶(TALENs)DNA结合域与非特异性DNA裂解核酸酶融合以靶向特定序列进行基因改变
最大耐受剂量不会产生无法忍受的副作用的最高剂量治疗
自杀开关包含在CAR载体中的基因编码分子,可靶向诱导CAR T细胞死亡
低形态突变基因改变导致基因产物的表达和/或活性降低
张力信号CAR的配体依赖性本构信号
滋养细胞增多症淋巴细胞从抗原呈递细胞中提取配体并在自身表面表达的过程
双特异性T细胞接合器(BiTE)由两个单链可变片段(scFvs)组成的人工双特异性抗体,一个识别特定抗原,另一个结合T细胞上的CD3,引发激活反应
转座子可通过DNA转座酶在基因组中从一个位置转移到另一个位置的遗传片段
激活诱导细胞死亡(AICD)作为激活负调节因子的T细胞反复刺激引起的程序性细胞死亡
两亲的描述了同时包含疏水和亲水区域的分子

脚注

竞争性利益

M.V.M.和R.C.L.对某些CAR T细胞和抗体拥有知识产权(尚未获得许可)。M.V.M.从几个营销CAR T细胞疗法的行业赞助商那里获得咨询收入;M.V.M.在多个科学咨询委员会任职,并拥有TCR2和世纪疗法的股权。

突出显示的参考

1.弗雷埃塔,J.A。等。TET2的破坏促进CD19-靶向T细胞的治疗效果。自然 558,307–312,doi:10.1038/s41586–018-0178-z(2018)。单个CAR T细胞能够产生持久的抗肿瘤反应。

2.亚历山大·索尔特(Alexander I.Salter)、R.G.I.、雅各布·肯尼迪(Jacob J.Kennedy)、瓦伦丁·沃利特(Valentin Voillet)、阿努莎·拉詹(Anusha Rajan)、伊娃·J·奥尔德曼(Eva J.Alderman)、尤利安娜·沃托维奇(Uliana J.Voytovich)、林晨伟(Chenwei Lin)、丹尼尔·索默迈耶(Daniel Sommer。嵌合抗原受体信号转导的磷蛋白组学分析揭示了影响细胞功能的动力学和定量差异。科学信号(2018).基于CD28和4–1BB的CAR T细胞在激活时利用类似的信号分子。然而,与具有更多记忆样表型的基于4–1BB的CAR T细胞的持续存在相比,基于CD28的CAR T细胞具有更大的磷酸化程度,这可能有助于AICD和早期衰竭。

3.沃克,A.J。等。肿瘤抗原和受体密度调节嵌合抗原受体靶向无定形淋巴瘤激酶的功效。分子治疗 25,2189–2201,doi:10.1016/j.ymthe.2017.06.008(2017)靶细胞上的抗原密度在CAR T细胞疗效中起着重要作用。

4.新泽西州辛格。等。单链可变片段连接子长度调节CAR生物学和T细胞功效。血液 134,247–247,doi:10.1182/血液-2019–131024(2019)。连接子长度本身会影响CAR T细胞的疗效。

5.贾夫里迪斯,T。等。CAR T细胞诱导的细胞因子释放综合征由巨噬细胞介导,并通过IL-1阻断而减轻。自然·医学 24,731-738,doi:10.1038/s41591-018-0041-7(2018)。干扰IL-1信号可以产生很大的影响,缓解CRS和神经毒性。

6.桑托马索,B.D。等。B细胞急性淋巴细胞白血病患者CAR T细胞治疗相关神经毒性的临床和生物学相关性。癌症发现 8,958–971,doi:10.1158/2159–8290。CD-17–1319(2018)。神经毒性与脑脊液中促炎细胞因子的水平相关。

7.新泽西州奥兰多。等。急性淋巴细胞白血病CAR19治疗中靶抗原丢失的遗传机制。自然·医学 24,1504–1506,doi:10.1038/s41591–018-0146-z(2018)。突变和选择性压力可导致肿瘤靶抗原丢失,导致抗原阴性复发。

8.弗雷埃塔,J.A。等。慢性淋巴细胞白血病对CD19嵌合抗原受体(CAR)T细胞治疗反应和耐药性的决定因素。自然·医学 24,563–571,doi:10.1038/s41591–018-0010–1(2018)。具有较少耗竭表型的CAR T细胞产物具有更有利的临床结果。

9.M·鲁拉。等。通过单个白血病B细胞的转导诱导对嵌合抗原受体T细胞治疗的耐药性。自然·医学 24,1499–1503,doi:10.1038/s41591–018-0201–9(2018)制造过程中的肿瘤细胞污染可能会因CAR的意外转导而导致复发,从而掩盖细胞表面抗原。

10.切尔卡斯基。等。具有细胞内PD-1检查点阻滞的人CAR T细胞能够抵抗肿瘤介导的抑制。临床研究杂志 126,3130–3144,doi:10.1172/JCI83092(2016)。耗尽的CAR T细胞可能通过检查点封锁而复活。

工具书类

1斯坦考夫斯基一世等人。使用嵌合单链Fv受体将T淋巴细胞靶向表达Neu/HER2的细胞。免疫学杂志 151, 6577–6582 (1993). [公共医学][谷歌学者]
2Eshhar Z等人。T体方法:癌症免疫治疗的潜力。斯普林格免疫病理学研讨会 18,199-209,10.1007/BF00820666(1996)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
三。Hwu P等人。用由抗体可变区和Fc受体γ链组成的嵌合基因重定向的人淋巴细胞裂解卵巢癌细胞。实验医学杂志 178,361–366,10.1084/jem.178.1.361(1993)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
4.Hwu P等人。嵌合抗体/T细胞受体基因导向的T细胞体内抗肿瘤活性。癌症研究 55, 3369–3373 (1995). [公共医学][谷歌学者]
5Kershaw MH等人。卵巢癌基因修饰T细胞过继免疫治疗的I期研究。临床癌症研究 12,6106–6115,10.1158/1078-0432.Ccr-06-1183(2006)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
6Krause A等人。抗原依赖性CD28信号选择性增强转基因活化人原代T淋巴细胞的存活和增殖。实验医学杂志 188619–626,10.1084/jem.188.4.619(1998)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
7Vandenberghe P等人。抗体和B7/BB1介导的CD28受体结扎诱导人类T细胞中的酪氨酸磷酸化。实验医学杂志 175,951–960,10.1084/jem.175.4.951(1992)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
8Porter DL、Levine BL、Kalos M、Bagg A和June CH慢性淋巴细胞白血病中嵌合抗原受体修饰的T细胞。 N英格兰J医学 365,725–733,10.1056/NEJMoa1103849(2011)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
9Brentjens RJ等人。复发性或化疗难治性B细胞白血病患者过继转移自体CD19-靶向T细胞的安全性和持久性。血液 118,4817–4828,10.1182/bloud-2011-04-348540(2011)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
10Kalos M等人。带有嵌合抗原受体的T细胞具有强大的抗肿瘤作用,并能在晚期白血病患者中建立记忆。科学转化医学 ,95ra73–95ra73,10.1126/scitranslmed.3002842(2011)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
11Brentjens RJ等人。CD19-靶向T细胞在成人化疗难治性急性淋巴细胞白血病患者中快速诱导分子缓解。科学转化医学 5,177ra138,10.1126/scitranslmed.3005930(2013)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
12穆拉德AFDA批准首次CAR T治疗。自然评论药物发现 16,669–669,10.1038/nrd.2017.196(2017)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
13.Whitlow M等人。一种改进的单链Fv连接物,其聚集性降低,蛋白水解稳定性增强。蛋白质工程 6,989–995,10.1093/蛋白质/6.8.989(1993)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
14Lee L等人。一种基于APRIL的嵌合抗原受体,用于多发性骨髓瘤中BCMA和TACI的双重靶向。血液 131,746–758,10.1182/血液-2017-05-781351(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
15.Rajabzadeh A、Rahbarizadeh F、Ahmadvand D、Kabir Salmani M和Hamidieh AA一种基于VHH的抗MUC1嵌合抗原受体,用于将人类原代T细胞特异性重定位到MUC1阳性癌细胞。 单元格J 22,502–513,10.22074/cellj.2021.6917(2021)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
16Balakrishnan A等人。合成锚蛋白重复序列嵌合抗原受体的多特异性靶向性。临床癌症研究 25,7506–7516,10.1158/1078-0432.Ccr-19-1479(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
17Brudno JN等人。B细胞淋巴瘤患者中具有全人类结合域的抗CD19 CAR T细胞的安全性和可行性。自然·医学 26,270–280,10.1038/s41591-019-0737-3(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
18Bridgeman J等人。嵌合体抗原受体穿透CD3跨膜结构域的最佳抗原反应取决于受体掺入内源性TCR/CD3复合物。免疫学杂志(马里兰州巴尔的摩:1950) 184,6938–6949,10.4049/jimmunol.0901766(2010)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
19Schmidts A等人。合理设计基于三聚体APRIL的CAR-binding结构域可以有效靶向多发性骨髓瘤。血液先进性 ,3248–3260,10.1182/血液进展2019000703(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
20Maher J、Brentjens RJ、Gunset G、Rivière I和Sadelain M单个嵌合TCRζ/CD28受体诱导的人T淋巴细胞细胞毒性和增殖。 自然生物技术 20,70–75,10.1038/nbt0102-70(2002)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
21Imai C等人。具有4-1BB信号传导能力的嵌合受体对急性淋巴细胞白血病具有强大的细胞毒性。白血病 18,676–684,10.1038/sj.leu.2403302(2004)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
22PulèMA等人。一种嵌合T细胞抗原受体,增强细胞因子释放并支持原代人类T细胞的克隆扩增。分子治疗 12,933–941,10.1016/j.ymthe.2005.04.016(2005)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
23Song D-G等人。CD27共刺激增强体内重定向人类T细胞的存活率和抗肿瘤活性。血液 119,696–706,10.1182/bloud-2011-03-344275(2012)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
24Guedan S等人。基于ICOS的嵌合抗原受体编程双极性TH17/TH1细胞。血液 124,1070–1080,10.1182/血液-2013-10-535245(2014)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
25Feucht J等人。CAR激活潜能的校准指导了替代性T细胞命运和治疗效力。自然·医学 25,82–88,10.1038/s41591-018-0290-5(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
26Yeku OO和Brentjens RJ铠装CAR T细胞:利用细胞因子和促炎配体增强CAR T淋巴细胞抗肿瘤疗效。 生物化学Soc Trans 44,412–418,10.1042/BST20150291(2016)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
27.Chmielewski M&Abken H公司CAR T细胞转化为卡车:嵌合抗原受体-重新定向的T细胞,用于传递可诱导的IL-12,调节肿瘤基质以抗癌。 癌症免疫学、免疫治疗 611269–1277,10.1007/s00262-012-1202-z(2012)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
28Ramello MC等人。一种用于表征CAR相互作用体和信号体的免疫蛋白质组学方法。科学信号 12,eaap9777,10.1126/scisional.aap9777(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
29Singh N等人。白血病中死亡受体信号受损通过诱导CAR T细胞功能障碍引起抗原依赖性抵抗。癌症发现,10.1158/159-8290.CD-19-0813(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考]
30Olli Dufva JK、Maliniemi Pilvi、Ianevski Aleksandr、Klievink Jay、Leitner Judith、Polonen Petri、Hohtari Helena、Saeed Khalid、Hannenne Tiina、Ellonen Pekka、Steinberger Peter、Kankainen Matti、Aittokalio Tero、Keranen Miko A.I.、Korhonen Matti和Mustjoki Satu。综合药物分析和CRISPR筛选确定了CAR T细胞细胞毒性的基本途径。血液(2020).[PMC免费文章][公共医学]
31Benmebarek MR等人。嵌合抗原受体(CAR)T细胞的杀伤机制。国际分子科学杂志 20,10.3390/ijms20061283(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
32Guedan S等人。CD28刺激的CAR-T细胞中的单一残基限制了其长期持久性和抗肿瘤耐久性。临床研究杂志,10.1172/jci133215(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考]
33Salter Alexander I、R.G.I、Kennedy Jacob J、Voillet Valentin、Rajan Anusha、Alderman Eva J、Voytovich Uliana J、Lin Chenwei、Sommermeyer Daniel、Liu Lingfeng、Whiteaker Jeffrey R、Gottardo Raphael、Paulovich Amanda G、Riddell Stanley R。嵌合抗原受体信号传导的磷酸蛋白质组学分析揭示了影响细胞功能的动力学和定量差异。科学信号(2018).[PMC免费文章][公共医学]
34Turtle CJ等人。CD8+和CD4+CD19-特异性嵌合抗原受体修饰T细胞比例明确的非霍奇金淋巴瘤免疫治疗。科学转化医学 8,355ra116-355ra116,10.1126/scitranslmed.aaf8621(2016)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
35Enblad G等人。使用CD19-靶向第三代CAR T细胞治疗淋巴瘤和白血病的I/IIa期试验。临床癌症研究 24,6185–6194,10.1158/1078-0432.Ccr-18-0426(2018)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
36Levine BL等人。在没有外源性饲养细胞的情况下,CD28共刺激对CD4+T细胞长期增殖的影响。免疫学杂志 159, 59215930 (1997). [公共医学][谷歌学者]
37Maus MV等人。通过表达T细胞受体CD28和4-1BB配体的人工APC体外扩增多克隆和抗原特异性细胞毒性T淋巴细胞。Nat生物技术 20,143–148,10.1038/nbt0202-143(2002)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
38Rubinstein MP等人。IL-7和IL-15在免疫反应收缩期间对CD8+T细胞亚群进行差异性调节。血液 112,3704–3712,10.1182/血液-2008-06-160945(2008)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
39龚W等人。产生NY-ESO-1特异性T细胞的IL-2与IL-7/IL-15的比较。癌症免疫疗法 68,1195-1209,10.1007/s00262-019-02354-4(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
40Alizadeh D等人。IL15通过降低mTORC1活性并保持其干细胞记忆表型来增强CAR-T细胞抗肿瘤活性。癌症免疫学研究 7,759–772,10.1158/2326-6066.Cir-18-0466(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
41Mitchell RS等人。逆转录病毒DNA整合:ASLV、HIV和MLV表现出不同的靶点偏好。公共科学图书馆生物 2,E234–E234,10.1371/journal.pbio.0020234(2004)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
42Schröder ARW等人。HIV-1在人类基因组中的整合有利于活性基因和局部热点。单元格 110,521–529,10.1016/S0092-8674(02)00864-4(2002)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
43Kebriaei P等人。使用睡美人产生CD19-特异性CAR T细胞的第一阶段试验。临床研究杂志 126,3363–3376,10.1172/jci86721(2016)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
44Benjamin R等人。在高危CD19+复发/难治性B细胞急性淋巴细胞白血病的成人和儿童患者中,异基因抗CD19 CAR T细胞产物UCART19的安全性、细胞动力学和抗白血病活性的初步数据。血液 132,896–896,10.1182/血液-2018-99-111356(2018)。[交叉参考][谷歌学者]
45Stadtmauer EA等人。CRISPR工程化T细胞在难治性癌症患者中的应用。科学类 367,10.1126/science.aba7365(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
46Fraietta JA等人。慢性淋巴细胞白血病对CD19嵌合抗原受体(CAR)T细胞治疗反应和耐药性的决定因素。自然·医学 24,563–571,10.1038/s41591-018-0010-1(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
47Fraietta JA等人。TET2的破坏促进CD19-靶向T细胞的治疗效果。自然 558、307–312、10.1038/s41586-018-0178-z(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
48Shifrut E等人。人类原代T细胞的全基因组CRISPR筛查揭示了免疫功能的关键调节因子。单元格 1751958–1971.e1915,10.1016/j.cell.2018.10.024(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
49.Nobles CL等人。CD19-靶向CAR T细胞免疫治疗结果与载体整合的基因组修饰相关。临床研究杂志 130,673–685,10.1172/JCI130144(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
50van Bruggen Jacob A.C.、A.W.J.M.、Fraietta Joseph A.、Hofland Tom、Tonino Sanne H.、Eldering Eric、Levin Mark David、Siska Peter J.、Endstra Sanne、Rathmell Jeffrey C.、June Carl H.、Porter David L.、Melenhorst J.Joseph、Kater Arnon P.和van der Windt Gerritje J.W。慢性淋巴细胞白血病细胞损害CD8+T细胞的线粒体适合性并阻碍CAR T细胞的疗效。血液(2019).[PMC免费文章][公共医学]
51Garfall AL等人。诱导后与复发性多发性骨髓瘤中与有效CAR T细胞治疗相关的T细胞表型。血液先进性 ,2812–2815,10.1182/血液进展2019000600(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
52.Neelapu SS等人。Axicabtagene Ciloleucel CAR T细胞治疗难治性大B细胞淋巴瘤。N英格兰J医学 377,2531–2544,10.1056/NEJMoa1707447(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
53Maude SL等人。儿童和青年B细胞淋巴细胞白血病患者的硫粒亮氨酸。N英格兰J医学 378,439–448,10.1056/NEJMoa1709866(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
54van der Stegen SJC、Hamieh M&Sadelain M第二代嵌合抗原受体的药理学。 Nat Rev药物发现 14,499–509,10.1038/nrd4597(2015)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
55Porter DL等人。嵌合抗原受体T细胞在复发难治性慢性淋巴细胞白血病中持续存在并诱导持续缓解。科学转化医学 7,303ra139,10.1126/scitranslmed.aac5415(2015)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
56Kawalekar OU等人。共受体的独特信号调节特定的代谢途径并影响CAR T细胞的记忆发育。免疫 44,712,10.1016/j.immuni.2016.02.023(2016)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
57Zhang H等人。4–1BB在产生CD8+细胞毒性淋巴细胞用于过继免疫治疗方面优于CD28共刺激。免疫学杂志 179,4910–4918,10.4049/jimmunol.179.7.4910(2007)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
58Philipson BI等人。4–1BB共刺激通过非经典NF-κB信号传导促进CAR T细胞存活。科学信号 13,eaay8248,10.1126/scisional.aay8248(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
59Li G等人。4–1BB增强CAR T功能需要NF-kappaB和TRAF。JCI洞察力 ,10.1172/jci.insight.121322(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
60Boroughs AC等人。scRNA序列揭示的携带4-1BB信号结构域的人类CAR T细胞的独特转录程序。分子治疗,2016年10月10日/j.ymthe.2020.07.023(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考]
61Li W等人。设计用于防止泛素化和下调的嵌合抗原受体显示出持久的抗肿瘤功效。免疫 53,456–470.e456,10.1016/j.immuni.2020.07.011(2020)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
62Boroughs AC等人。嵌合抗原受体共刺激结构域调节人类调节性T细胞功能。JCI洞察力 5,10.1172/jci.insight.126194(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
63Guedan S等人。通过ICOS和4-1BB协同刺激增强CAR T细胞的持久性。JCI洞察力 ,10.1172/jci.insight.96976(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
64Youngblood B、Davis CW和Ahmed R制造持续一生的记忆:自我更新记忆CD8 T细胞的遗传功能。 国际免疫学 22,797–803,10.1093/intimm/dxq437(2010)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
65Wherry EJ和Kurachi MT细胞衰竭的分子和细胞见解。 Nat Rev免疫学 15,486–499,10.1038/nri3862(2015)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
66Walker AJ等人。肿瘤抗原和受体密度调节靶向间变性淋巴瘤激酶的嵌合抗原受体的效力。分子治疗 25,2189–2201,10.1016/j.ymthe.2017.06.008(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
67Singh N等人。单链可变片段连接子长度调节CAR生物学和T细胞功效。血液 134,247–247,10.1182/血液-2019-131024(2019)。[交叉参考][谷歌学者]
68秦H等人。靶向CD19和CD22的双价嵌合抗原受体的临床前研究。分子疗法-抗肿瘤药 11,127–137,10.1016/j.omto.2018.10.006(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
69Majzner RG等人。调整CAR T细胞活性的抗原密度要求。癌症发现,10.1158/2159-8290.CD-19-0945(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考]
70.Stoiber S等人。癌症治疗嵌合抗原受体设计的局限性。细胞 8,472,10.3390/cells8050472(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
71Alabanza L等人。具有人类可变区域的新型抗CD19嵌合抗原受体的功能受铰链和跨膜结构域的影响。分子治疗 25,2452–2465,10.1016/j.ymthe.2017.07.013(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
72.Eyquem J等人。用CRISPR/Cas9将CAR靶向TRAC基因座可增强肿瘤排斥反应。自然 543,113-11710.1038/nature21405(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
73Hudecek M等人。受体亲和力和胞外结构域修饰影响ROR1特异性嵌合抗原受体T细胞对肿瘤的识别。临床癌症研究 19,3153–3164,10.1158/1078-0432.Ccr-13-0330(2013)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
74Hudecek M等人。嵌合抗原受体的非信号细胞外间隔区对体内抗肿瘤活性具有决定性作用。癌症免疫研究 ,125–135,10.1158/2326-6066.Cir-14-0127(2015)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
75美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT03620058(2018).
76美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02650414(2016).
77Guest RD等人。细胞外间隔区在嵌合体免疫受体优化设计中的作用:四种不同单链抗体和抗原的评估。免疫治疗杂志 28,203–211,10.1097/01.cji.0000161397.96582.59(2005)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
78James SE等人。CD22-特异性嵌合TCR的抗原敏感性受靶表位与细胞膜距离的调节。免疫学杂志 180,7028–7038,10.4049/jimmunol.180.10.7028(2008)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
79Xu Y等人。一种新的抗体TCR(AbTCR)平台将基于Fab的抗原识别与γ/δTCR信号传导相结合,以促进低细胞因子释放的T细胞毒性。细胞迪斯科 4第62页,第10.1038/s41421-018-0066-6页(2018年)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
80Wu W等人。CD3ε的多重信号作用及其在CAR-T细胞治疗中的应用。单元格 182,855–871.e823,10.1016/j.cell.2020.07.018(2020)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
81.Hartl FA等人。Lck与CD3ε的非规范结合促进TCR信号和CAR功能。自然免疫 21,902–913,10.1038/s41590-020-0732-3(2020)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
82Neelapu SS等人。嵌合抗原受体T细胞治疗-毒性评估和管理。Nat Rev Clin Oncol公司 15,47–62,10.1038/nrclonnc.2017.148(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
83Hay KA等人。CD19嵌合抗原受体修饰T细胞治疗后严重细胞因子释放综合征的动力学和生物标志物。血液 130,2295–2306,10.1182/血液-2017-06-793141(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
84阵风J、Taraseviciute A和海龟CJ与CD19-靶向CAR-T细胞治疗相关的神经毒性。 中枢神经系统药物 32,1091–1101,10.1007/s40263-018-0582-9(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
85RIDDELL SR公司肾上腺素引发细胞因子风暴。自然(2018). [公共医学]
86Staedtke V等人。破坏自我放大的儿茶酚胺环可减少细胞因子释放综合征。自然 564,273–277,10.1038/s41586-018-0774-y(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
87Gust J等人。CD19 CAR-T细胞过继免疫治疗后神经毒性中的内皮激活和血脑屏障破坏。癌症发现 7,1404–1419,10.1158/2159-8290.CD-17-0698(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
88Mueller KT等人。替沙芬亮蓝治疗B细胞急性淋巴细胞白血病的临床药理学。临床癌症研究 24,6175–6184,10.1158/1078-0432.CCR-18-0758(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
89Santomasso BD等人。B细胞急性淋巴细胞白血病患者CAR T细胞治疗相关神经毒性的临床和生物学相关性。癌症发现 8,958–971,10.1158/2159-8290.CD-17-1319(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
90Parker KR等人。单细胞分析确定表达CD19的脑细胞作为CAR-T免疫治疗的潜在非肿瘤靶点。单元格 183,126–142.e117,10.1016/j.cell.2020.08.022(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
91Giavridis T等人。CAR T细胞诱导的细胞因子释放综合征由巨噬细胞介导,并通过IL-1阻断而减轻。自然·医学 24,731-738,10.1038/s41591-018-0041-7(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
92Tarasevicute A等人。嵌合抗原受体T细胞介导的非人灵长类动物神经毒性。癌症发现 8,750–763,10.1158/2159-8290.CD-17-1368(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
93Pennell CA等人。人CD19靶向小鼠T细胞在人CD19转基因小鼠中诱导B细胞再生障碍和毒性。分子治疗 26,1423-1434,10.1016/j.ymthe.2018.04.006(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
94.Norelli M等人。单核细胞衍生IL-1和IL-6在CAR T细胞引起的细胞因子释放综合征和神经毒性中有不同的需要。自然·医学 24,739–748,10.1038/s41591-018-0036-4(2018)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
95Sterner RM等人。抑制GM-CSF可减少细胞因子释放综合征和神经炎症,但可增强异种移植物中的CAR-T细胞功能。血液 133,697–709,10.1182/血液-2018-10-881722(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
96美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT04150913(2019).
97凯特琳·梅斯特曼(Katrin Mestermann TG)、韦伯·朱斯塔斯(Weber Justus)、瑞泽克·朱利安(Rydzek Julian)、弗兰兹·西尔克(Frenz Silke)、内雷特·托马斯(Nerreter Thomas)、马德斯·安德烈亚斯(Mades Andreas)、萨德莱恩·米歇尔。酪氨酸激酶抑制剂达沙替尼作为CAR T细胞的药物开关。科学转化医学(2019).[PMC免费文章][公共医学]
98Casucci M等人。细胞外NGFR间隔区可有效追踪和富集共表达自杀基因的全功能CAR-T细胞。前部免疫 9,507,10.3389/fimmu.2018.00507(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
99.Weber Evan W.、R.C.L.、Sotillo Elena、Lattin John、Xu Peng和Mackall Crystal L。达沙替尼对CAR-T细胞功能的药理学控制。血液进展,doi:10.1182/©(2019)。[PMC免费文章][公共医学]
100Orlando EJ等人。急性淋巴细胞白血病CAR19治疗中靶抗原丢失的遗传机制。自然·医学 24,1504–1506,10.1038/s41591-018-018-0146-z(2018)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
101Ruella M等人。通过单个白血病B细胞的转导诱导对嵌合抗原受体T细胞治疗的耐药性。自然·医学 24,1499–1503,10.1038/s41591-018-0201-9(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
102Hamieh M等人。CAR T细胞吞噬和协同杀伤调节肿瘤抗原逃逸。自然 568第112–116页,第10.1038/s41586-019-1054-1页(2019年)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
103.Maude SL等人。嵌合抗原受体T细胞在白血病持续缓解中的作用。新英格兰医学杂志 3711507-1517,10.1056/NEJMoa1407222(2014)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
104Bagley SJ、Desai AS、Linette GP、June CH和O'Rourke DM胶质母细胞瘤的CAR T细胞治疗:近期临床进展和未来挑战。 神经肿瘤学 20,1429–1438,10.1093/neuonc/noy032(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
105Zhang W.y.等人。CD20定向嵌合抗原受体修饰T细胞治疗复发或难治性B细胞非霍奇金淋巴瘤:一项早期IIa期试验报告。信号转导与靶向治疗 1,16002,10.1038/sigtrans.2016.2(2016)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
106Fry TJ等人。CD22-靶向CAR T细胞可诱导B-ALL缓解,而B-ALL对CD19-靶向的CAR免疫治疗无效或耐药。自然·医学 24,20–28,10.1038/nm.4441(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
107Kuhn NF等人。CD40配体修饰嵌合抗原受体T细胞通过激发内源性抗肿瘤反应增强抗肿瘤功能。癌细胞 35,473–488e476,10.1016/j.cell.2019.02.006(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
108Pont MJ等人。γ-分泌酶抑制可提高BCMA特异性嵌合抗原受体T细胞在多发性骨髓瘤中的疗效。血液 134,1585-1597,10.1182/血.2019000050(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
109Ramakrishna S等人。调节靶抗原密度可提高CAR T细胞功能和持久性。临床癌症研究 25,5329–5341,10.1158/1078-0432.Ccr-18-3784(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
110Liu X等人。亲和调节ErbB2或EGFR嵌合抗原受体T细胞对小鼠肿瘤的治疗指数增加。癌症研究 75,3596–3607,10.1158/0008-5472.CAN-15-0159(2015)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
111.夏普AH&普肯KEPD1抑制途径的多种功能。 Nat Rev免疫学 18,153–167,10.1038/编号2017.108(2018)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
112Topalian SL、Drake CG和Pardoll DM针对PD-1/B7-H1(PD-L1)通路激活抗肿瘤免疫。 免疫学新观点 24,207–212,10.1016/j.coi.2011.12.009(2012)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
113Topalian SL等人。癌症中抗PD-1抗体的安全性、活性和免疫相关性。N英格兰J医学 366,2443–2454,10.1056/NEJMoa1200690(2012)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
114Cherkassky L等人。具有细胞内PD-1检查点阻滞的人CAR T细胞能够抵抗肿瘤介导的抑制。临床研究杂志 126,3130–3144,10.1172/JCI83092(2016)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
115.Chong EA等人。复发或难治性B细胞非霍奇金淋巴瘤患者的序贯抗CD19定向嵌合抗原受体修饰T细胞治疗(CART19)和彭布罗单抗PD-1阻断。血液 1324198–4198,10.1182/血液-2018-99-119502(2018)。[交叉参考][谷歌学者]
116平山AV等人。JCAR014联合Durvalumab治疗复发/难治性侵袭性B细胞非霍奇金淋巴瘤的疗效和毒性。血液 1321680-1680,10.1182/血液-2018-99-116745(2018)。[交叉参考][谷歌学者]
117Jacobson CA等人。Zuma-6的第1阶段结束结果:阿昔卡巴坦-西洛勒克尔(Axi-Cel)联合阿托利珠单抗治疗难治性弥漫性大B细胞淋巴瘤。血液和骨髓移植生物学 25,S1732016年10月10日/j.bbmt.2018.12.314(2019)。[交叉参考][谷歌学者]
118美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT03310619(2017).
119Chong EA等人。PD-1阻断剂调节嵌合抗原受体(CAR)修饰的T细胞:为CAR加油。血液 129,1039–1041,10.1182/血液-2016-09-738245(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
120Suarez ER等人。在人源化小鼠模型中,分泌抗PD-L1抗体的嵌合抗原受体T细胞能更有效地逆转肾细胞癌。Oncotarget公司 7,34341–34355,10.18632/目标9114(2016)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
121Rafiq S等人。CAR-T细胞靶向传递PD-1-阻断单链抗体可增强体内抗肿瘤疗效。Nat生物技术 36,847–856,10.1038/nbt.4195(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
122Postow文学硕士、Sidlow R&Hellmann医学博士与免疫检查点阻断相关的免疫相关不良事件。 新英格兰医学杂志 378,158–168,10.1056/NEJMra1703481(2018)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
123Rupp LJ等人。CRISPR/Cas9介导的PD-1破坏增强了人类嵌合抗原受体T细胞的抗肿瘤功效。科学代表 7,737,10.1038/s41598-017-00462-8(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
124Shum T等人。来自工程IL7受体的组分信号促进肿瘤导向T细胞持久消除肿瘤。癌症发现 7,1238–1247,10.1158/2159-8290.Cd-17-0538(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
125Lynn RC等人。CAR T细胞中c-Jun过度表达诱导衰竭抵抗。自然 576,293–300,10.1038/s41586-019-1805-z(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
126Adachi K等人。CAR-T细胞中IL-7和CCL19的表达可提高肿瘤中免疫细胞的浸润和CAR-T的存活率。自然生物技术 36,346–351,10.1038/nbt.4086(2018)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
127Yeku OO、Purdon TJ、Koneru M、Spriggs D和Brentjens RJ装甲CAR T细胞增强抗肿瘤疗效并克服肿瘤微环境。 科学报告 7,10541,10.1038/s41598-017-10940-8(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
128Avanzi MP等人。工程肿瘤靶向T细胞直接或通过激活内源性免疫系统介导增强的抗肿瘤疗效。单元格代表 23,2130–2141,10.1016/j.celrep.2018.04.051(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
129Ma X等人。白细胞介素-23工程改善实体瘤CAR T细胞功能。自然生物技术 38,448–459,10.1038/s41587-019-0398-2(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
130Kloss CC等人。显性负性TGF-β受体增强PSMA靶向的人CAR T细胞增殖并促进前列腺癌的根除。分子治疗 26,1855–1866,10.1016/j.ymthe.2018.05.003(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
131Narayan V等人。PSMA导向/TGFβ不敏感CAR-T细胞治疗转移性去势抵抗前列腺癌的I期临床试验。临床肿瘤学杂志 38,TPS269–TPS269,10.1200/JCO.2020.38.6_供应TPS269(2020)。[交叉参考][谷歌学者]
132Tang N等人。通过CRISPR抑制TGF-β可促进CAR T细胞对实体瘤的长期疗效。JCI洞察力 5,10.1172/jci.insight.133977(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
133O'Rourke DM等人。在复发性胶质母细胞瘤患者中,单剂量外周注射EGFRvIII定向CAR T细胞可介导抗原丢失并诱导适应性抵抗。科学转化医学 9,10.1126/scitranslmed.aaa0984(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
134.Choi BD等人。分泌BiTEs的CAR-T细胞绕过抗原逃逸而无明显毒性。Nat生物技术 37,1049–1058,10.1038/s41587-019-0192-1(2019)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
135Wing A等人。用溶瘤病毒驱动产生双特异性T细胞接合器改善实体瘤的CART细胞治疗。癌症免疫研究 6,605–616,10.1158/2326-6066.CIR-17-0314(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
136Ma L等人。通过嵌合受体增强疫苗,增强CAR–T细胞对抗实体瘤的活性。科学类 365,162–168,10.1126/science.aav8692(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
137Raje N等人。抗BCMA CAR T细胞治疗复发或难治性多发性骨髓瘤bb2121。N英格兰J医学 380,1726–1737,10.1056/NEJMoa1817226(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
138Cohen AD等人。B细胞成熟抗原特异性CAR T细胞在多发性骨髓瘤中具有临床活性。临床研究杂志 129,2210–2221,10.1172/JCI126397(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
139Ali SA等人。表达抗B细胞成熟抗原嵌合抗原受体的T细胞可缓解多发性骨髓瘤。血液 1281688–1700,10.1182/血液-2016-04-711903(2016)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
140Ma T、Shi J和Liu H针对B细胞成熟抗原的嵌合抗原受体T细胞免疫治疗有望治疗多发性骨髓瘤。 Ann Hematol公司 98,813–822,10.1007/s00277-018-03592-9(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
141美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT03287804(2017).
142.Smith Eric L.,K.H.,Staehr Mette,Masakayan Reed,Jones Jon,Long Thomas J.,Ng Khong Y.,Ghoddusi Majid,Purdon Terence J.,Wang 5 Xiuyan,Do Trevor,Pham Minh Thu,Brown Jessica M.,De Larrea Carlos Fernandez,Olson Eric,Peguero Elizabeth,Wang Pei,Liu Hong,Xu Yiyang,Garrett-Thomson Sarah C.,Almo Steven C.,Wendel Hans-Gu,Riviere Isabelle、Liu Cheng、Sather Blythe、Brentjens Renier J。GPRC5D是利用合理设计的CAR T细胞进行多发性骨髓瘤免疫治疗的靶点。科学转化医学(2019).[PMC免费文章][公共医学]
143Gagelmann N等人。CAR-T细胞治疗多发性骨髓瘤的研究进展。白血病,10.1038/s41375-020-0930-x(2020)。[公共医学] [交叉参考]
144美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02982941(2016).
145Desantes K等人。依诺必单抗(MGA271)治疗B7-H3表达的复发性或难治性实体瘤患儿的1期开放式剂量递增研究。临床肿瘤学杂志 35,TPS2596-TPS2596,doi:10.1200/JCO.2017。10.1200/JCO.2017。35.15_供应TPS259635.15_供应TPS2596(2017)。[谷歌学者]
146美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02381314(2015).
147Urba W等人。MGA271联合依普利单抗治疗B7-H3阳性黑色素瘤、头颈部鳞状细胞癌或非小细胞肺癌患者的一期开放性剂量递增研究。癌症免疫治疗杂志 ,P176–P176,10.1186/2051-1426-3-S2-P176(2015)。[交叉参考][谷歌学者]
148美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT03406949(2018).
149Shankar S等人。MGD009(一种人源化B7-H3 x CD3 DART蛋白)与MGA012(一种抗PD-1抗体)联合用于复发性或难治性B7-H3-表达肿瘤患者的一期开放式剂量递增研究。临床肿瘤学杂志 36,TPS2601–TPS260110.1200/JCO.2018.36.15_suppl.TPS2601(2018)。[交叉参考][谷歌学者]
150.美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02628535(2015).
151Tolcher AW等人。MGD009是一种人源化B7-H3 x CD3双亲和力再靶向(DART)蛋白,在表达B7-H3的肿瘤或表达B7-H3的肿瘤血管系统患者中的人源化B7-H3 x CD3双亲和力再靶向(DART)蛋白。临床肿瘤学杂志 34,TPS3105–TPS3105,10.1200/JCO.2016.34.15_suppl.TPS3105(2016)。[交叉参考][谷歌学者]
152美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT03729596(2018).
153Scribner Juniper A.,J.G.B.,Sharma Sharad,Li Hua,Chiechi Michael,Li Pam,Son Thomas,Anushka De Costa Yan Chen,Chen Francine,Barat Bhaswati,Huang Ling,&Wolff Christina,J.H.,Hotaling Tim E.,Gaynutdinov Timur,Ciccarone Valentina,Tamura James,Koenig Scott,Johnson Syd,Moore Paul A.,Bonvini Ezio,Loo DerykMGC018的临床前开发,一种以双卡霉素为基础的针对B7-H3的实体癌抗体药物结合物。 美国癌症研究协会年会2018年。(2018年4月14日至18日提交)。[公共医学]
154Majzner RG等人。靶向泛癌抗原B7-H3的CAR T细胞显示出对儿童实体瘤和脑肿瘤的有效临床前活性。临床癌症研究 25,2560–2574,10.1158/1078-0432.CCR-18-0432(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
155He Y等人。多个癌症特异性抗原由单个癌细胞上的嵌合抗原受体靶向。JCI洞察力 4,10.1172/jci.insight.135306(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
156Morello A、Sadelain M和Adusumilli PS间皮素靶向CARs:驱动T细胞进入实体瘤。 癌症发现 6,133–146,10.1158/2159-8290.Cd-15-0583(2016)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
157Adusumilli PS,Z.M.,Rusch V等人。区域性输送自体间皮素靶向CAR-T细胞治疗恶性胸膜疾病的一期临床试验。2019年AACR年会摘要CT036。(2019年3月31日发布。)。
158哈斯AR慢病毒转导嵌合抗原受体修饰T细胞识别晚期实体癌间皮素的I期研究。分子治疗 27,1919年至1929年,10.1016/j.ymthe.2019.07.015(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
159美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT03907852(2019).
160Baeuerle PA等人。合成的TRuC受体与完整的T细胞受体结合以产生有效的抗肿瘤反应。国家公社 10第2087页,第10.1038/s41467-019-10097-0页(2019年)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
161Brown CE等人。IL13Rα2-定向嵌合抗原受体CD8+T细胞在复发性胶质母细胞瘤患者中的生物活性和安全性。临床癌症研究 21,4062–4072,10.1158/1078-0432.Ccr-15-0428(2015)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
162Ahmed N等人。HER2特异性嵌合抗原受体-改良病毒特异性T细胞治疗进展性胶质母细胞瘤:一项1期剂量递增试验。JAMA肿瘤学 ,1094–1101,10.1001/jamancol.2017.0184(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
163王东瑞(音译)、钟昌文(Chang Wen Chung)、阿吉拉尔·布伦达(Aguilar Brenda)、阿里扎德·达里亚(Alizadeh Darya。氯毒素导向的CAR T细胞用于胶质母细胞瘤的特异性和有效靶向性。科学转化医学(2020).[PMC免费文章][公共医学]
164Richards RM,Sotillo E&Majzner RG公司神经母细胞瘤的CAR T细胞治疗。 前部免疫 9,238010.3389/fimmu.2018.02380(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
165Mount CW等人。抗GD2 CAR T细胞对H3-K27M(+)弥漫性中线胶质瘤的有效抗肿瘤作用。自然·医学 24,572-579,10.1038/s41591-018-0006-x(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
166美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT03294954(2017).
167Heczey A等人。复发或难治性神经母细胞瘤患者的抗GD2 CAR-NKT细胞:一项中期分析。自然医学,10.1038/s41591-020-1074-2(2020)。[公共医学] [交叉参考]
168Bosse KR等人。高风险神经母细胞瘤中GPC2作为肿瘤蛋白和候选免疫治疗靶点的鉴定。癌细胞 32,295–309e212,10.1016/j.cell.2017.08.003(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
169麦当劳G细胞和基因治疗。PMLiVE公司(2019).
170.美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT00968760(2009).
171美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT01497184(2011).
172美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT03389035(2018).
173Magnani CF等人。睡美人工程CAR T细胞具有抗白血病活性,无严重毒性。临床研究杂志,10.1172/JCI138473(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考]
174Barnett BE等人。piggyBacTM-产生的CAR-T细胞表现出干细胞记忆表型。血液 128,2167–2167,10.1182/血液。V128.22.2167.2167(2016)。[交叉参考][谷歌学者]
175波塞迪亚治疗学。管道, <https://poseida.com/pipeline/> (2020).
176.罗斯TL用非病毒基因组靶向重新编程人类T细胞功能和特异性。自然 559,405-409,10.1038/s41586-018-0326-5(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
177Schober K等人。原位替换T细胞受体α链和β链,保留近生理T细胞功能。国家生物工程 ,974–984,10.1038/s41551-019-0409-0(2019)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
178Silva DA等人。IL-2和IL-15的强选择性模拟物的从头设计。自然 565,186–191,10.1038/s41586-018-0830-7(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
179美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT01318317(2011).
180美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT01815749(2013).
181Wang X等人。B细胞非霍奇金淋巴瘤患者自体HSCT后中枢记忆衍生CD19 CAR T细胞治疗的第一阶段研究。血液 127,2980–2990,10.1182/血液-2015-12-686725(2016)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
182Murray C、Pao E、Jann A、Park DE和Di Carlo D用磁棘轮细胞术连续定量纯化细胞治疗制造用T细胞亚群。 SLAS技术:转化生命科学创新 23, 326–337, 10.1177/2472630317748655 (2018).[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
183Bailey SR等人。人类CD26(高)T细胞通过增强迁移和持久性诱导肿瘤免疫对抗多种恶性肿瘤。国家公社 81961年至1961年,10.1038/s41467-017-01867-9(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
184Deniger DC等人。表达内源性γδT细胞受体多克隆库的双特异性T细胞和引入CD19-特异性嵌合抗原受体。分子治疗 21,638–647,10.1038/mt.2012.267(2013)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
185Capsomidis A等人。嵌合抗原受体工程人类γ-德尔塔T细胞:保留交叉呈递增强细胞毒性。分子治疗 26,354–365,10.1016/j.ymthe.2017.12.001(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
186Gentles AJ等人。人类癌症中基因和免疫细胞浸润的预后前景。自然医学 21,938–945,10.1038/nm.3909(2015)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
187Cho JH、Collins JJ和Wong WW通用嵌合抗原受体用于T细胞反应的多重和逻辑控制。 单元格 173,1426–1438.e1411,10.1016/j.cell.2018.03.038(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
188.Lohmueller JJ、Ham JD、Kvorjak M&Finn OJ公司mSA2亲和增强型生物素结合CAR T细胞用于通用肿瘤靶向。 肿瘤免疫学 7,e1368604,10.1080/2162402X.2017.1368604(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
189Ma JSY等人。控制工程化T细胞特异性和活性的通用策略。美国国家科学院院刊 113,E450–E458,10.1073/pnas.1524193113(2016)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
190Cartellieri M等人。开启和关闭CAR T细胞:一种新的模块化平台,用于将T细胞重新定位为AML冲击波。血癌杂志 6,e458–e458,10.1038/bcj.2016.61(2016)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
191Depil S、Duchateau P、Grupp SA、Mufti G和Poirot L“离体”异基因CAR T细胞:发展与挑战。 自然评论药物发现 19,185–199,10.1038/s41573-019-0051-2(2020)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
192卡西姆W输注通用TALEN基因检测的CAR T细胞后婴儿B-ALL的分子缓解。科学转化医学 9,10.1126/scitranslmed.aaj2013(2017)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
193美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02746952(2016).
194.美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02808442临床试验(2016).
195Ren J等人。多重基因组编辑以产生抗PD1抑制的通用CAR T细胞。临床癌症研究 23,2255–2266,10.1158/1078-0432.CCR-16-1300(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
196Liu E等人。表达IL-15和CD19-靶向CAR的脐血NK细胞表现出长期持久性和强大的抗肿瘤活性。白血病 32,520–531,10.1038/leu.2017.226(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
197Liu E等人。CAR-转导的自然杀伤细胞在CD19-阳性淋巴瘤中的应用。新英格兰医学杂志 382,545–553,10.1056/NEJMoa1910607(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
198Daher M等人。以细胞因子检查点为靶点可增强装甲脐血CAR-NK细胞的适应性。血液,10.1182/血液.2020007748(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考]
199美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02435849(2015).
200Locke FL等人。阿昔卡宾-西罗叶醇治疗难治性大B细胞淋巴瘤(ZUMA-1)的长期安全性和活性:一项单臂、多中心、1-2期试验。柳叶刀肿瘤学 202016年10月31日至42日/s1470-2045(18)30864-7(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
201美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02348216(2015).
202Schuster SJ等人。难治性B细胞淋巴瘤中的嵌合抗原受体T细胞。N英格兰J医学 377,2545–2554,10.1056/NEJMoa1708566(2017)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
203美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02030834临床试验(2014).
204Wang M等人。KTE-X19 CAR T细胞治疗复发或难治性套细胞淋巴瘤。N英格兰J医学 382,1331–1342,10.1056/NEJMoa1914347(2020)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
205美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02601313(2015).
206Park JH等人。CD19 CAR治疗急性淋巴细胞白血病的长期随访。N英格兰J医学 378,449–459,10.1056/NEJMoa1709919(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
207.美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT01044069(2010).
208美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02315612(2014).
209美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02658929临床试验(2016).
210美国国家医学图书馆。临床试验.gov,https://ClinicalTrials.gov/show/NCT02546167(2015).
211Iliopoulou EG等人。在晚期非小细胞肺癌患者中过继转移异基因自然杀伤细胞的I期试验。癌症免疫学、免疫治疗 591781年至1789年,2007年10月10日/s00262-010-0904-3(2010年)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
212Mehta RS&Rezvani K公司表达天然杀伤细胞的嵌合抗原受体用于肿瘤免疫治疗。 免疫学前沿 9,10.3389/fimmu.2018.00283(2018)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
213Maluski M等人。嵌合抗原受体诱导的BCL11B抑制可促进NK样细胞的发育。临床研究杂志 129,5108–5122,10.1172/JCI126350(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
214Klichinsky M等人。人类嵌合抗原受体巨噬细胞用于癌症免疫治疗。自然生物技术,10.1038/s41587-020-0462-y(2020年)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考]
215Noyan F等人。通过使用具有MHC特异性嵌合抗原受体的调节性T细胞预防同种异体移植物排斥反应。美国移植杂志 17917–930,10.1111/ajt.14175(2017)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
216Boardman DA等人。供体HLAⅠ类特异性嵌合抗原受体的表达增强了人类调节性T细胞在预防人类皮肤移植排斥反应中的作用。美国移植杂志 17,931-943,10.1111/ajt.14185(2017)。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
217.布拉特·D、齐格蒙德·E、阿尔特贝尔·Z、瓦克斯·T和埃什哈尔·Z癌胚抗原特异性调节性T细胞对小鼠结肠炎及其相关癌症的抑制作用。 分子治疗 22,1018–1028,10.1038/mt.2014.41(2014)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]
218Fritsche E、Volk H-D、Reinke P和Abou-El-Nein M实现CAR-Treg细胞治疗临床生产的优化流程。 生物技术趋势,2016年10月10日/j.tibtech.2019.12.009。[公共医学] [交叉参考]
219Dawson NAJ等人。调节性T细胞中同种抗原特异性嵌合抗原受体的系统测试和特异性定位。JCI洞察力 4,10.1172/jci.insight.123672(2019)。[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者]